REVIEW ARTICLE

Fabrication of scaffolds in tissue engineering: A review

  • Peng ZHAO 1 ,
  • Haibing GU 1 ,
  • Haoyang MI 2 ,
  • Chengchen RAO 1 ,
  • Jianzhong FU 1 ,
  • Lih-sheng TURNG , 2
Expand
  • 1. State Key Laboratory of Fluid Power and Mechatronic Systems, Hangzhou University, Zhejiang 310027, China; Key Laboratory of 3D Printing Process and Equipment of Zhejiang Province, Zhejiang University, Hangzhou 310027, China
  • 2. Wisconsin Institute for Discovery, University of Wisconsin-Madison, Madison, WI 53715, USA

Received date: 27 Jun 2017

Accepted date: 27 Sep 2017

Published date: 23 Jan 2018

Copyright

2018 Higher Education Press and Springer-Verlag GmbH Germany, part of Springer Nature

Abstract

Tissue engineering (TE) is an integrated discipline that involves engineering and natural science in the development of biological materials to replace, repair, and improve the function of diseased or missing tissues. Traditional medical and surgical treatments have been reported to have side effects on patients caused by organ necrosis and tissue loss. However, engineered tissues and organs provide a new way to cure specific diseases. Scaffold fabrication is an important step in the TE process. This paper summarizes and reviews the widely used scaffold fabrication methods, including conventional methods, electrospinning, three-dimensional printing, and a combination of molding techniques. Furthermore, the differences among the properties of tissues, such as pore size and distribution, porosity, structure, and mechanical properties, are elucidated and critically reviewed. Some studies that combine two or more methods are also reviewed. Finally, this paper provides some guidance and suggestions for the future of scaffold fabrication.

Cite this article

Peng ZHAO , Haibing GU , Haoyang MI , Chengchen RAO , Jianzhong FU , Lih-sheng TURNG . Fabrication of scaffolds in tissue engineering: A review[J]. Frontiers of Mechanical Engineering, 2018 , 13(1) : 107 -119 . DOI: 10.1007/s11465-018-0496-8

Acknowledgements

The authors would like to acknowledge the financial support of the Zhejiang Provincial Natural Science Foundation of China (Grant No. LZ18E050002), the Science Fund for Creative Research Groups of the National Natural Science Foundation of China (Grant No. 51521064), the National Natural Science Foundation Council of China (Grant Nos. 51475420 and 51635006), and the Fundamental Research Funds for the Central Universities of China (Grant No. 2017QNA4003).
1
Khorshidi S, Solouk  A, Mirzadeh H, A review of key challenges of electrospun scaffolds for tissue-engineering applications. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine, 2015, 10(9): 715–738

DOI

2
Guo B, Sun  Y, Finne-Wistrand A, Electroactive porous tubular scaffolds with degradability and non-cytotoxicity for neural tissue regeneration. Acta Biomaterialia, 2012, 8(1): 144–153 

DOI

3
Zhang Y S, Xia  Y. Multiple facets for extracellular matrix mimicking in regenerative medicine. Nanomedicine (London), 2015, 10(5): 689–692

DOI

4
Rustad K C, Sorkin  M, Levi B, Strategies for organ level tissue engineering. Organogenesis, 2010, 6(3): 151–157 

DOI

5
Khademhosseini A, Vacanti  J P, Langer  R. Progress in tissue engineering. Scientific American, 2009, 300(5): 64–71

DOI

6
Kadler K. Matrix loading: Assembly of extracellular matrix collagen fibrils during embryogenesis. Birth Defects Research. Part C, Embryo Today, 2004, 72(1): 1–11

DOI

7
Cukierman E, Pankov  R, Stevens D R, Taking cell-matrix adhesions to the third dimension. Science, 2001, 294(5547): 1708–1712

DOI

8
Abbott A. Cell culture: Biology’s new dimension. Nature, 2003, 424(6951): 870–872

DOI

9
Lee G Y, Kenny  P A, Lee  E H, Three-dimensional culture models of normal and malignant breast epithelial cells. Nature Methods, 2007, 4(4): 359–365 

DOI

10
Scaffaro R, Lopresti  F, Botta L, Preparation of three-layered porous PLA/PEG scaffold: Relationship between morphology, mechanical behavior and cell permeability. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials, 2016, 54: 8–20

DOI

11
Scaffaro R, Lopresti  F, Botta L, Melt processed PCL/PEG scaffold with discrete pore size gradient for selective cellular infiltration. Macromolecular Materials and Engineering, 2016, 301(2): 182–190

DOI

12
Scaffaro R, Lopresti  F, Botta L, Integration of PCL and PLA in a monolithic porous scaffold for interface tissue engineering. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials, 2016, 63: 303–313

DOI

13
Lo Re G, Lopresti  F, Petrucci G, A facile method to determine pore size distribution in porous scaffold by using image processing. Micron (Oxford, England), 2015, 76: 37–45 

DOI

14
Odedra D, Chiu  L, Reis L, Cardiac tissue engineering. In: Burdick J A, Mauck R L, eds. Biomaterials for Tissue Engineering Applications. Vienna: Springer, 2011, 421–456 

DOI

15
Hollister S J. Porous scaffold design for tissue engineering. Nature Materials, 2005, 4(7): 518–524 

DOI

16
Scaffaro R, Lopresti  F, Maio A, Development of polymeric functionally graded scaffolds: A brief review. Journal of Applied Biomaterials & Functional Materials, 2017, 15(2): e107–e121

DOI

17
Scaffaro R, Lopresti  F, Botta L, A facile and eco-friendly route to fabricate poly(lactic acid) scaffolds with graded pore size. Journal of Visualized Experiments Jove, 2016, 2016(116): e54595 

DOI

18
Yousefi A M, Hoque  M E, Prasad  R G, Current strategies in multiphasic scaffold design for osteochondral tissue engineering: A review. Journal of Biomedical Materials Research. Part A, 2015, 103(7): 2460–2481

DOI

19
Fong E L, Watson  B M, Kasper  F K, Building bridges: Leveraging interdisciplinary collaborations in the development of biomaterials to meet clinical needs. Advanced Materials, 2012, 24(36): 4995–5013

DOI

20
Lee K W, Wang  S, Dadsetan M, Enhanced cell ingrowth and proliferation through three-dimensional nanocomposite scaffolds with controlled pore structures. Biomacromolecules, 2010, 11(3): 682–689 

DOI

21
Hollister S J,  Maddox R,  Taboas J M. Optimal design and fabrication of scaffolds to mimic tissue properties and satisfy biological constraints. Biomaterials, 2002, 23(20): 4095–4103 

DOI

22
Butler D L, Goldstein  S A, Guilak  F. Functional tissue engineering: The role of biomechanics. Journal of Biomechanical Engineering, 2000, 122(6): 570–575 

DOI

23
Chan B, Leong  K. Scaffolding in tissue engineering: General approaches and tissue-specific considerations. European Spine Journal, 2008, 17(S4): 467–479 

DOI

24
Dutta R C, Dey  M, Dutta A K, Competent processing techniques for scaffolds in tissue engineering. Biotechnology Advances, 2017, 35(2): 240–250 

DOI

25
Sultana N, Wang  M. Fabrication of HA/PHBV composite scaffolds through the emulsion freezing/freeze-drying process and characterisation of the scaffolds. Journal of Materials Science. Materials in Medicine, 2008, 19(7): 2555–2561

DOI

26
Sachlos E, Czernuszka  J. Making tissue engineering scaffolds work. Review: The application of solid freeform fabrication technology to the production of tissue engineering scaffolds. European Cells & Materials, 2003, 5: 29–40 

DOI

27
Scaffaro R, Sutera  F, Lopresti F. Using Taguchi method for the optimization of processing variables to prepare porous scaffolds by combined melt mixing/particulate leaching. 2017 (in press) 

DOI

28
Mi H Y, Jing  X, Turng L S. Fabrication of porous synthetic polymer scaffolds for tissue engineering. Journal of Cellular Plastics, 2015, 51(2): 165–196 

DOI

29
Holzwarth J M,  Ma P X. Biomimetic nanofibrous scaffolds for bone tissue engineering. Biomaterials, 2011, 32(36): 9622–9629 

DOI

30
Lee K Y, Mooney  D J. Hydrogels for tissue engineering. Chemical Reviews, 2001, 101(7): 1869–1880 

DOI

31
Fallahiarezoudar E,  Ahmadipourroudposht M,  Idris A, A review of: Application of synthetic scaffold in tissue engineering heart valves. Materials Science and Engineering C, 2015, 48: 556–565 

DOI

32
Mikos A G, Thorsen  A J, Czerwonka  L A, Preparation and characterization of poly(L-lactic acid) foams. Polymer, 1994, 35(5): 1068–1077 

DOI

33
Lanza R P, Langer  R, Chick W L, Principles of tissue engineering. Nature, 1997, 389(6650): 453 

DOI

34
Nam Y S, Park  T G. Porous biodegradable polymeric scaffolds prepared by thermally induced phase separation. Journal of Biomedical Materials Research, 1999, 47(1): 8–17 

DOI

35
Nam Y S, Park  T G. Biodegradable polymeric microcellular foams by modified thermally induced phase separation method. Biomaterials, 1999, 20(19): 1783–1790

DOI

36
Aram E, Mehdipour-Ataei  S. A review on the micro-and nanoporous polymeric foams: Preparation and properties. International Journal of Polymeric Materials and Polymeric Biomaterials, 2016, 65(7): 358–375 

DOI

37
Mosadegh-Sedghi S, Rodrigue  D, Brisson J, Highly hydrophobic microporous low-density polyethylene hollow fiber membranes by melt‐extrusion coupled with salt-leaching technique. Polymers for Advanced Technologies, 2013, 24(6): 584–592 

DOI

38
Reignier J, Huneault  M A. Preparation of interconnected poly(-caprolactone) porous scaffolds by a combination of polymer and salt particulate leaching. Polymer, 2006, 47(13): 4703–4717

DOI

39
Biswas D, Tran  P, Tallon C, Combining mechanical foaming and thermally induced phase separation to generate chitosan scaffolds for soft tissue engineering. Journal of Biomaterials Science. Polymer Edition, 2017, 28(2): 207–226

DOI

40
Mi H Y, Jing  X, McNulty J, Approaches to fabricating multiple-layered vascular scaffolds using hybrid electrospinning and thermally induced phase separation methods. Industrial & Engineering Chemistry Research, 2016, 55(4): 882–892

DOI

41
Li D, Xia  Y N. Electrospinning of nanofibers: Reinventing the wheel? Advanced Materials, 2004, 16(14): 1151–1170 

DOI

42
Gañán -Calvo A M,  Davila J,  Barrero A. Current and droplet size in the electrospraying of liquids. Scaling laws. Journal of Aerosol Science, 1997, 28(2): 249–275 

DOI

43
Seidlits S K, Lee  J Y, Schmidt  C E. Nanostructured scaffolds for neural applications. Nanomedicine (London), 2008, 3(2): 183–199 

DOI

44
Zhang R, Ma  P X. Synthetic nano-fibrillar extracellular matrices with predesigned macroporous architectures. Journal of Biomedical Materials Research. Part A, 2000, 52(2): 430–438 

DOI

45
Doshi J, Reneker  D H. Electrospinning process and applications of electrospun fibers. Journal of Electrostatics, 1995, 35(2–3): 151–160

DOI

46
Lee H, Yeo  M, Ahn S, Designed hybrid scaffolds consisting of polycaprolactone microstrands and electrospun collagen-nanofibers for bone tissue regeneration. Journal of Biomedical Materials Research. Part B, Applied Biomaterials, 2011, 97B(2): 263–270

DOI

47
Lee S J, Oh  S H, Liu  J, The use of thermal treatments to enhance the mechanical properties of electrospun poly(ϵ-caprolactone) scaffolds. Biomaterials, 2008, 29(10): 1422–1430 

DOI

48
Ramakrishna S, Fujihara  K, Teo W E, An Introduction to Electrospinning and Nanofibers. Singapore: World Scientific, 2005

49
Jenness N J, Wu  Y, Clark R L. Fabrication of three-dimensional electrospun microstructures using phase modulated femtosecond laser pulses. Materials Letters, 2012, 66(1): 360–363 

DOI

50
McClure M J, Wolfe  P S, Simpson  D G, The use of air-flow impedance to control fiber deposition patterns during electrospinning. Biomaterials, 2012, 33(3): 771–779 

DOI

51
Yan G D, Yu  J, Qiu Y J, Self-assembly of electrospun polymer nanofibers: A general phenomenon generating honeycomb-patterned nanofibrous structures. Langmuir, 2011, 27(8): 4285–4289 

DOI

52
Badrossamay M R,  McIlwee H A,  Goss J A, Nanofiber assembly by rotary jet-spinning. Nano Letters, 2010, 10(6): 2257–2261 

DOI

53
Blakeney B A, Tambralli  A, Anderson J M, Cell infiltration and growth in a low density, uncompressed three-dimensional electrospun nanofibrous scaffold. Biomaterials, 2011, 32(6): 1583–1590

DOI

54
Hong S, Kim  G. Fabrication of size-controlled three-dimensional structures consisting of electrohydrodynamically produced polycaprolactone micro/nanofibers. Applied Physics A, 2011, 103: 1009–1014 

DOI

55
Subramanian A, Krishnan  U M, Sethuraman  S. Fabrication of uniaxially aligned 3D electrospun scaffolds for neural regeneration. Biomedical Materials (Bristol, England), 2011, 6(2): 025004 

DOI

56
Uttayarat P, Perets  A, Li M Y, Micropatterning of three-dimensional electrospun polyurethane vascular grafts. Acta Biomaterialia, 2010, 6(11): 4229–4237 

DOI

57
Wang S D, Zhang  Y Z, Wang  H W, Fabrication and properties of the electrospun polylactide/silk fibroin-gelatin composite tubular scaffold. Biomacromolecules, 2009, 10(8): 2240–2244 

DOI

58
Wu H J, Fan  J T, Chu  C C, Electrospinning of small diameter 3-D nanofibrous tubular scaffolds with controllable nanofiber orientations for vascular grafts. Journal of Materials Science. Materials in Medicine, 2010, 21(12): 3207–3215 

DOI

59
Zhou J, Cao  C B, Ma  X L. A novel three-dimensional tubular scaffold prepared from silk fibroin by electrospinning. International Journal of Biological Macromolecules, 2009, 45(5): 504–510 

DOI

60
Akturk O, Kismet  K, Yasti A C, Wet electrospun silk fibroin/gold nanoparticle 3D matrices for wound healing applications. RSC Advances, 2016, 6(16): 13234–13250 

DOI

61
Heo J, Nam  H, Hwang D, Enhanced cellular distribution and infiltration in a wet electrospun three-dimensional fibrous scaffold using eccentric rotation-based hydrodynamic conditions. Sensors and Actuators. B, Chemical, 2016, 226: 357–363 

DOI

62
Kasuga T, Obata  A, Maeda H, Siloxane-poly(lactic acid)-vaterite composites with 3D cotton-like structure. Journal of Materials Science. Materials in Medicine, 2012, 23(10): 2349–2357

DOI

63
Yokoyama Y, Hattori  S, Yoshikawa C, Novel wet electrospinning system for fabrication of spongiform nanofiber 3-dimensional fabric. Materials Letters, 2009, 63(9–10): 754–756 

DOI

64
Cai Y Z, Zhang  G R, Wang  L L, Novel biodegradable three-dimensional macroporous scaffold using aligned electrospun nanofibrous yarns for bone tissue engineering. Journal of Biomedical Materials Research. Part A, 2012, 100A(5): 1187–1194

DOI

65
Lee B L P,  Jeon H, Wang  A, Femtosecond laser ablation enhances cell infiltration into three-dimensional electrospun scaffolds. Acta Biomaterialia, 2012, 8(7): 2648–2658

DOI

66
Shim I K, Jung  M R, Kim  K H, Novel three-dimensional scaffolds of poly((L)-lactic acid) microfibers using electrospinning and mechanical expansion: fabrication and bone regeneration. Journal of Biomedical Materials Research. Part B, Applied Biomaterials, 2010, 95B(1): 150–160

DOI

67
Walser J, Stok  K S, Caversaccio  M D, Direct electrospinning of 3D auricle-shaped scaffolds for tissue engineering applications. Biofabrication, 2016, 8(2): 025007 

DOI

68
Chen Z, Song  Y, Zhang J, Laminated electrospun nHA/PHB-composite scaffolds mimicking bone extracellular matrix for bone tissue engineering. Materials Science and Engineering C, 2017, 72: 341–351 

DOI

69
Joshi M K, Tiwari  A P, Pant  H R, In situ generation of cellulose nanocrystals in polycaprolactone nanofibers: Effects on crystallinity, mechanical strength, biocompatibility, and biomimetic mineralization. ACS Applied Materials & Interfaces, 2015, 7(35): 19672–19683 

DOI

70
Scaffaro R, Maio  A, Lopresti F, Nanocarbons in electrospun polymeric nanomats for tissue engineering: A review. Polymers, 2017, 9(2): 76 

DOI

71
Ghorbani F M, Kaffashi  B, Shokrollahi P, PCL/chitosan/Zn-doped nHA electrospun nanocomposite scaffold promotes adipose derived stem cells adhesion and proliferation. Carbohydrate Polymers, 2015, 118: 133–142 

DOI

72
Scaffaro R, Lopresti  F, Maio A, Electrospun PCL/GO-g-PEG structures: Processing-morphology-properties relationships. Composites. Part A, Applied Science and Manufacturing, 2017, 92: 97–107

DOI

73
Shao W, He  J, Sang F, Enhanced bone formation in electrospun poly(l-lactic-co-glycolic acid)-tussah silk fibroin ultrafine nanofiber scaffolds incorporated with graphene oxide. Materials Science and Engineering C, 2016, 62: 823–834 

DOI

74
Roy R, Kohles  S S, Zaporojan  V, Analysis of bending behavior of native and engineered auricular and costal cartilage. Journal of Biomedical Materials Research. Part A, 2004, 68A(4): 597–602 

DOI

75
Hejazi F, Mirzadeh  H, Contessi N, Novel class of collector in electrospinning device for the fabrication of 3D nanofibrous structure for large defect load-bearing tissue engineering application. Journal of Biomedical Materials Research. Part A, 2017, 105(5): 1535–1548 

DOI

76
Stocco T, Rodrigues  B, Marciano F, Design of a novel electrospinning setup for the fabrication of biomimetic scaffolds for meniscus tissue engineering applications. Materials Letters, 2017, 196: 221–224 

DOI

77
Hejazi F, Mirzadeh  H. Novel 3D scaffold with enhanced physical and cell response properties for bone tissue regeneration, fabricated by patterned electrospinning/electrospraying. Journal of Materials Science. Materials in Medicine, 2016, 27(9): 143 

DOI

78
Joshi M K, Pant  H R, Tiwari  A P, Multi-layered macroporous three-dimensional nanofibrous scaffold via a novel gas foaming technique. Chemical Engineering Journal, 2015, 275: 79–88 

DOI

79
Jiang J, Carlson  M A, Teusink  M J, Expanding two-dimensional electrospun nanofiber membranes in the third dimension by a modified gas-foaming technique. ACS Biomaterials Science & Engineering, 2015, 1(10): 991–1001 

DOI

80
Ng R, Zang  R, Yang K K, Three-dimensional fibrous scaffolds with microstructures and nanotextures for tissue engineering. RSC Advances, 2012, 2(27): 10110–10124 

DOI

81
Wang X, Salick  M R, Wang  X, Poly(-caprolactone) nanofibers with a self-induced nanohybrid shish-kebab structure mimicking collagen fibrils. Biomacromolecules, 2013, 14(10): 3557–3569

DOI

82
Jing X, Mi  H Y, Wang  X C, Shish-kebab-structured poly(-caprolactone) nanofibers hierarchically decorated with chitosan-poly(-caprolactone) copolymers for bone tissue engineering. ACS Applied Materials & Interfaces, 2015, 7(12): 6955–6965 

DOI

83
Levy G N, Schindel  R, Kruth J P. Rapid manufacturing and rapid tooling with layer manufacturing (LM) technologies, state of the art and future perspectives. CIRP Annals-Manufacturing Technology, 2003, 52(2): 589–609 

DOI

84
Hull C W. US Patent, US4575330 A, 1986-08-08

85
Zhao S C, Zhu  M, Zhang J H, Three dimensionally printed mesoporous bioactive glass and poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyhexanoate) composite scaffolds for bone regeneration. Journal of Materials Chemistry. B, Materials for Biology and Medicine, 2014, 2(36): 6106–6118

DOI

86
Gbureck U, Hölzel  T, Klammert U, Resorbable dicalcium phosphate bone substitutes prepared by 3D powder printing. Advanced Functional Materials, 2007, 17(18): 3940–3945 

DOI

87
Klammert U, Vorndran  E, Reuther T, Low temperature fabrication of magnesium phosphate cement scaffolds by 3D powder printing. Journal of Materials Science. Materials in Medicine, 2010, 21(11): 2947–2953 

DOI

88
Wang J L, Yang  M Y, Zhu  Y, Phage nanofibers induce vascularized osteogenesis in 3D printed bone scaffolds. Advanced Materials, 2014, 26(29): 4961–4966 

DOI

89
Zein I, Hutmacher  D W, Tan  K C, Fused deposition modeling of novel scaffold architectures for tissue engineering applications. Biomaterials, 2002, 23(4): 1169–1185 

DOI

90
Guo T, Lembong  J, Zhang L G, Three-dimensional printing articular cartilage: Recapitulating the complexity of native tissue. Tissue Engineering. Part B, Reviews, 2017, 23(3): 225–236 

DOI

91
Mota C, Wang  S Y, Puppi  D, Additive manufacturing of poly[(R)-3-hydroxybutyrate-co-(R)-3-hydroxyhexanoate] scaffolds for engineered bone development. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine, 2017, 11(1): 175–186 

DOI

92
Sears N A, Seshadri  D R, Dhavalikar  P S, A review of three-dimensional printing in tissue engineering. Tissue Engineering. Part B, Reviews, 2016, 22(4): 298–310 

DOI

93
Ma X, Qu  X, Zhu W, Deterministically patterned biomimetic human iPSC-derived hepatic model via rapid 3D bioprinting. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2016, 113(8): 2206–2211 

DOI

94
Fong  E L S,  Lamhamedi-Cherradi S E,  Burdett E, Modeling Ewing sarcoma tumors in vitro with 3D scaffolds. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2013, 110(16): 6500–6505 

DOI

95
Brama P A J,  Holopainen J,  van Weeren P R,  Effect of loading on the organization of the collagen fibril network in juvenile equine articular cartilage. Journal of Orthopaedic Research, 2009, 27(9): 1226–1234

DOI

96
Mandrycky C, Wang  Z, Kim K, 3D bioprinting for engineering complex tissues. Biotechnology Advances, 2016, 34(4): 422–434 

DOI

97
Mohammed M I, Badwal  P S, Gibson  I. Design and fabrication considerations for three dimensional scaffold structures. KnE Engineering, 2017, 2(2): 120–126 

DOI

98
Habib F N, Nikzad  M, Masood S H, Design and development of scaffolds for tissue engineering using three-dimensional printing for bio-based applications. 3D Printing and Additive Manufacturing, 2016, 3: 119–127

99
Mohanty S, Sanger  K, Heiskanen A, Fabrication of scalable tissue engineering scaffolds with dual-pore microarchitecture by combining 3D printing and particle leaching. Materials Science and Engineering C, 2016, 61: 180–189 

DOI

100
Reed S, Lau  G, Delattre B, Macro- and micro-designed chitosan-alginate scaffold architecture by three-dimensional printing and directional freezing. Biofabrication, 2016, 8(1): 015003 

DOI

101
Seleznev V, Prinz  V Y. Hybrid 3D-2D printing for bone scaffolds fabrication. Nanotechnology, 2017, 28(6): 064004

DOI

102
Mancuso E, Alharbi  N, Bretcanu O A, Three-dimensional printing of porous load-bearing bioceramic scaffolds. Proceedings of the Institution of Mechanical Engineers. Part H, Journal of Engineering in Medicine, 2017, 231(6): 575–585 

DOI

103
Yang G H, Mun  F, Kim G. Direct electrospinning writing for producing 3D hybrid constructs consisting of microfibers and macro-struts for tissue engineering. Chemical Engineering Journal, 2016, 288: 648–658

DOI

104
Chen C, Zhao  M, Zhang R, Collagen/heparin sulfate scaffolds fabricated by a 3D bioprinter improved mechanical properties and neurological function after spinal cord injury in rats. Journal of Biomedical Materials Research. Part A, 2017, 105(5): 1324–1332 

DOI

105
Zhang H F, Mao  X Y, Du  Z J, Three dimensional printed macroporous polylactic acid/hydroxyapatite composite scaffolds for promoting bone formation in a critical-size rat calvarial defect model. Science and Technology of Advanced Materials, 2016, 17(1): 136–148 

DOI

106
Yang C, Wang  X, Ma B, 3D-printed bioactive Ca3SiO5 bone cement scaffolds with nano surface structure for bone regeneration. ACS Applied Materials & Interfaces, 2017, 9(7): 5757–5767

DOI

107
Zhang J H, Zhao  S C, Zhu  Y F, Three-dimensional printing of strontium-containing mesoporous bioactive glass scaffolds for bone regeneration. Acta Biomaterialia, 2014, 10(5): 2269–2281 

DOI

108
Jakus A E, Secor  E B, Rutz  A L, Three-dimensional printing of high-content graphene scaffolds for electronic and biomedical applications. ACS Nano, 2015, 9(4): 4636–4648

DOI

109
Shao H, Yang  X, He Y, Bioactive glass-reinforced bioceramic ink writing scaffolds: Sintering, microstructure and mechanical behavior. Biofabrication, 2015, 7(3): 035010 

DOI

110
Murphy S V, Atala  A. 3D bioprinting of tissues and organs. Nature Biotechnology, 2014, 32(8): 773–785 

DOI

111
Wüst S, Müller  R, Hofmann S. Controlled positioning of cells in biomaterials—Approaches towards 3D tissue printing. Journal of Functional Biomaterials, 2011, 2(4): 119–154

DOI

112
Zhao P, Wang  S, Ying J, Non-destructive measurement of cavity pressure during injection molding process based on ultrasonic technology and Gaussian process. Polymer Testing, 2013, 32(8): 1436–1444

DOI

113
Agrawal C M, Ray  R B. Biodegradable polymeric scaffolds for musculoskeletal tissue engineering. Journal of Biomedical Materials Research, 2001, 55(2): 141–150

DOI

114
Gomes M E, Ribeiro  A S, Malafaya  P B, A new approach based on injection moulding to produce biodegradable starch-based polymeric scaffolds: Morphology, mechanical and degradation behaviour. Biomaterials, 2001, 22(9): 883–889 

DOI

115
Limongi T, Lizzul  L, Giugni A, Laboratory injection molder for the fabrication of polymeric porous poly-epsilon-caprolactone scaffolds for preliminary mesenchymal stem cells tissue engineering applications. Microelectronic Engineering, 2017, 175: 12–16

DOI

116
Kramschuster A, Turng  L S. An injection molding process for manufacturing highly porous and interconnected biodegradable polymer matrices for use as tissue engineering scaffolds. Journal of Biomedical Materials Research. Part B, Applied Biomaterials, 2010, 92B: 366–376

117
Yin G Z, Zhang  L W, Li  Q F. A convenient method to fabricate porous cross-linked PCL membrane by using dual pore-forming agents. Materials Letters, 2016, 181: 208–211 

DOI

118
Yin H M, Qian  J, Zhang J, Engineering porous poly(lactic acid) scaffolds with high mechanical performance via a solid state extrusion/porogen leaching approach. Polymers, 2016, 8(6): 213

DOI

119
Peng X F, Mi  H Y, Jing  X, Preparation of highly porous interconnected poly(lactic acid) scaffolds based on a novel dynamic elongational flow procedure. Materials & Design, 2016, 101: 285–293 

DOI

120
Wang X, Salick  M R, Gao  Y, Interconnected porous poly(ϵ-caprolactone) tissue engineering scaffolds fabricated by microcellular injection molding. Journal of Cellular Plastics, 2016, 1–11 (in press) 

DOI

121
Mahdieh Z, Bagheri  R, Eslami M, Thermoplastic starch/ethylene vinyl alcohol/forsterite nanocomposite as a candidate material for bone tissue engineering. Materials Science and Engineering C, 2016, 69: 301–310

DOI

122
Kuang T R, Chen  F, Chang L Q, Facile preparation of open-cellular porous poly(L-lactic acid) scaffold by supercritical carbon dioxide foaming for potential tissue engineering applications. Chemical Engineering Journal, 2017, 307: 1017–1025 

DOI

123
Moghadam M Z, Hassanajili  S, Esmaeilzadeh F, Formation of porous HPCL/LPCL/HA scaffolds with supercritical CO2 gas foaming method. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials, 2017, 69: 115–127

DOI

124
Fanovich M, Ivanovic  J, Zizovic I, Functionalization of polycaprolactone/hydroxyapatite scaffolds with Usnea lethariiformis extract by using supercritical CO2. Materials Science and Engineering C, 2016, 58: 204–212 

DOI

125
Zhang J, Liu  H, Ding J X, High-pressure compression-molded porous resorbable polymer/hydroxyapatite composite scaffold for cranial bone regeneration. ACS Biomaterials Science & Engineering, 2016, 2(9): 1471–1482

DOI

126
Scaffaro R, Lopresti  F, Botta L, Mechanical behavior of polylactic acid/polycaprolactone porous layered functional composites. Composites. Part B, Engineering, 2016, 98: 70–77

DOI

Outlines

/