REVIEW ARTICLE

Cationic and amphipathic cell-penetrating peptides (CPPs): Their structures and in vivo studies in drug delivery

  • Jennica L. Zaro ,
  • Wei-Chiang Shen
Expand
  • Department of Pharmacology and Pharmaceutical Science, University of Southern California, Los Angeles, CA 90033, USA

Received date: 10 Jul 2015

Accepted date: 11 Aug 2015

Published date: 26 Nov 2015

Copyright

2014 Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

Abstract

Over the past few decades, cell penetrating peptides (CPPs) have become an important class of drug carriers for small molecules, proteins, genes and nanoparticle systems. CPPs represent a very diverse set of short peptide sequences (10‒30 amino acids), generally classified as cationic or amphipathic, with various mechanisms in cellular internalization. In this review, a more comprehensive assessment of the chemical structural characteristics, including net cationic charge, hydrophobicity and helicity was assembled for a large set of commonly used CPPs, and compared to results from numerous in vivo drug delivery studies. This detailed information can aid in the design and selection of effective CPPs for use as transport carriers in the delivery of different types of drug for therapeutic applications.

Cite this article

Jennica L. Zaro , Wei-Chiang Shen . Cationic and amphipathic cell-penetrating peptides (CPPs): Their structures and in vivo studies in drug delivery[J]. Frontiers of Chemical Science and Engineering, 2015 , 9(4) : 407 -427 . DOI: 10.1007/s11705-015-1538-y

1
Green M, Loewenstein P M. Autonomous functional domains of chemically synthesized human immunodeficiency virus tat trans-activator protein. Cell, 1988, 55(6): 1179–1188

DOI

2
Frankel A D, Pabo C O. Cellular uptake of the tat protein from human immunodeficiency virus. Cell, 1988, 55(6): 1189–1193

DOI

3
Patel L N, Zaro J L, Shen W C. Cell penetrating peptides: Intracellular pathways and pharmaceutical perspectives. Pharmaceutical Research, 2007, 24(11): 1977–1992

DOI

4
Vasconcelos L, Madani F, Arukuusk P, Parnaste L, Graslund A, Langel U. Effects of cargo molecules on membrane perturbation caused by transportan10 based cell-penetrating peptides. Biochimica et Biophysica Acta, 2014, 1838(12): 3118–3129

DOI

5
Grdisa M. The delivery of biologically active (therapeutic) peptides and proteins into cells. Current Medicinal Chemistry, 2011, 18(9): 1373–1379

DOI

6
Dietz G P, Bahr M. Delivery of bioactive molecules into the cell: The Trojan horse approach. Molecular and Cellular Neurosciences, 2004, 27(2): 85–131

DOI

7
Copolovici D M, Langel K, Eriste E, Langel U. Cell-penetrating peptides: Design, synthesis, and applications. ACS Nano, 2014, 8(3): 1972–1994

DOI

8
Bechinger B, Aisenbrey C. The polymorphic nature of membrane-active peptides from biophysical and structural investigations. Current Protein & Peptide Science, 2012, 13(7): 602–610

DOI

9
El-Andaloussi S, Holm T, Langel U. Cell-penetrating peptides: Mechanisms and applications. Current Pharmaceutical Design, 2005, 11(28): 3597–3611

DOI

10
Walrant A, Bechara C, Alves I D, Sagan S. Molecular partners for interaction and cell internalization of cell-penetrating peptides: How identical are they? Nanomedicine (London), 2012, 7(1): 133–143

DOI

11
Lewis H D, Husain A, Donnelly R J, Barlos D, Riaz S, Ginjupalli K, Shodeinde A, Barton B E. Creation of a novel peptide with enhanced nuclear localization in prostate and pancreatic cancer cell lines. BMC Biotechnology, 2010, 10(1): 79

DOI

12
Ragin A D, Morgan R A, Chmielewski J. Cellular import mediated by nuclear localization signal peptide sequences. Chemistry & Biology, 2002, 9(8): 943–948

DOI

13
Sadler K, Eom K D, Yang J L, Dimitrova Y, Tam J P. Translocating proline-rich peptides from the antimicrobial peptide bactenecin 7. Biochemistry, 2002, 41(48): 14150–14157

DOI

14
Jha D, Mishra R, Gottschalk S, Wiesmuller K H, Ugurbil K, Maier M E, Engelmann J. CyLoP-1: A novel cysteine-rich cell-penetrating peptide for cytosolic delivery of cargoes. Bioconjugate Chemistry, 2011, 22(3): 319–328

DOI

15
De Coupade C, Fittipaldi A, Chagnas V, Michel M, Carlier S, Tasciotti E, Darmon A, Ravel D, Kearsey J, Giacca M, Cailler F. Novel human-derived cell-penetrating peptides for specific subcellular delivery of therapeutic biomolecules. Biochemical Journal, 2005, 390(2): 407–418

DOI

16
Futaki S, Suzuki T, Ohashi W, Yagami T, Tanaka S, Ueda K, Sugiura Y. Arginine-rich peptides. An abundant source of membrane-permeable peptides having potential as carriers for intracellular protein delivery. Journal of Biological Chemistry, 2001, 276(8): 5836–5858

DOI

17
Nakase I, Hirose H, Tanaka G, Tadokoro A, Kobayashi S, Takeuchi T, Futaki S. Cell-surface accumulation of flock house virus-derived peptide leads to efficient internalization via macropinocytosis. Molecular Therapy, 2009, 17(11): 1868–1876

DOI

18
Langedijk J P, Olijhoek T, Schut D, Autar R, Meloen R H. New transport peptides broaden the horizon of applications for peptidic pharmaceuticals. Molecular Diversity, 2004, 8(2): 101–111

DOI

19
Bong D T, Steinem C, Janshoff A, Johnson J E, Reza Ghadiri M. A highly membrane-active peptide in Flock House virus: Implications for the mechanism of nodavirus infection. Chemistry & Biology, 1999, 6(7): 473–481

DOI

20
Bertrand J R, Malvy C, Auguste T, Toth G K, Kiss-Ivankovits O, Illyes E, Hollosi M, Bottka S, Laczko I. Synthesis and studies on cell-penetrating peptides. Bioconjugate Chemistry, 2009, 20(7): 1307–1314

DOI

21
Trehin R, Krauss U, Beck-Sickinger A G, Merkle H P, Nielsen H M. Cellular uptake but low permeation of human calcitonin-derived cell penetrating peptides and Tat(47-57) through well-differentiated epithelial models. Pharmaceutical Research, 2004, 21(7): 1248–1256

DOI

22
Cascales L, Henriques S T, Kerr M C, Huang Y H, Sweet M J, Daly N L, Craik D J. Identification and characterization of a new family of cell-penetrating peptides: Cyclic cell-penetrating peptides. Journal of Biological Chemistry, 2011, 286(42): 36932–36943

DOI

23
Thoren P E, Persson D, Isakson P, Goksor M, Onfelt A, Norden B. Uptake of analogs of penetratin, Tat(48-60) and oligoarginine in live cells. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2003, 307(1): 100–107

DOI

24
Fischer P M, Zhelev N Z, Wang S, Melville J E, Fahraeus R, Lane D P. Structure-activity relationship of truncated and substituted analogues of the intracellular delivery vector Penetratin. Journal of Peptide Research, 2000, 55(2): 163–172

DOI

25
Derossi D, Calvet S, Trembleau A, Brunissen A, Chassaing G, Prochiantz A. Cell internalization of the third helix of the Antennapedia homeodomain is receptor-independent. Journal of Biological Chemistry, 1996, 271(30): 18188–18193

DOI

26
El-Andaloussi S, Johansson H J, Holm T, Langel U. A novel cell-penetrating peptide, M918, for efficient delivery of proteins and peptide nucleic acids. Molecular Therapy, 2007, 15(10): 1820–1826

DOI

27
Duchardt F, Ruttekolk I R, Verdurmen W P, Lortat-Jacob H, Burck J, Hufnagel H, Fischer R, van den Heuvel M, Lowik D W, Vuister G W, Ulrich A, de Waard M, Brock R. A cell-penetrating peptide derived from human lactoferrin with conformation-dependent uptake efficiency. Journal of Biological Chemistry, 2009, 284(52): 36099–36108

DOI

28
Scheller A, Oehlke J, Wiesner B, Dathe M, Krause E, Beyermann M, Melzig M, Bienert M. Structural requirements for cellular uptake of alpha-helical amphipathic peptides. Journal of Peptide Science, 1999, 5(4): 185–194

DOI

29
Jones S W, Christison R, Bundell K, Voyce C J, Brockbank S M, Newham P, Lindsay M A. Characterisation of cell-penetrating peptide-mediated peptide delivery. British Journal of Pharmacology, 2005, 145(8): 1093–1102

DOI

30
Verdurmen W P, Bovee-Geurts P H, Wadhwani P, Ulrich A S, Hallbrink M, van Kuppevelt T H, Brock R. Preferential uptake of L-versus D-amino acid cell-penetrating peptides in a cell type-dependent manner. Chemistry & Biology, 2011, 18(8): 1000–1010

DOI

31
Drin G, Cottin S, Blanc E, Rees A R, Temsamani J. Studies on the internalization mechanism of cationic cell-penetrating peptides. Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(33): 31192–31201

DOI

32
Kilk K, Magzoub M, Pooga M, Eriksson L E, Langel U, Graslund A. Cellular internalization of a cargo complex with a novel peptide derived from the third helix of the islet-1 homeodomain. Comparison with the penetratin peptide. Bioconjugate Chemistry, 2001, 12(6): 911–916

DOI

33
Han K, Jeon M J, Kim K A, Park J, Choi S Y. Efficient intracellular delivery of GFP by homeodomains of Drosophila Fushi-tarazu and Engrailed proteins. Molecules and Cells, 2000, 10(6): 728–732

DOI

34
Elmquist A, Hansen M, Langel U. Structure-activity relationship study of the cell-penetrating peptide pVEC. Biochimica et Biophysica Acta, 2006, 1758(6): 721–729

DOI

35
Wender P A, Mitchell D J, Pattabiraman K, Pelkey E T, Steinman L, Rothbard J B. The design, synthesis, and evaluation of molecules that enable or enhance cellular uptake: Peptoid molecular transporters. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2000, 97(24): 13003–13008

DOI

36
Kamide K, Nakakubo H, Uno S, Fukamizu A. Isolation of novel cell-penetrating peptides from a random peptide library using in vitro virus and their modifications. International Journal of Molecular Medicine, 2010, 25(1): 41–51

37
Takeshima K, Chikushi A, Lee K K, Yonehara S, Matsuzaki K. Translocation of analogues of the antimicrobial peptides magainin and buforin across human cell membranes. Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(2): 1310–1315

DOI

38
Richard J P, Melikov K, Vives E, Ramos C, Verbeure B, Gait M J, Chernomordik L V, Lebleu B. Cell-penetrating peptides. A reevaluation of the mechanism of cellular uptake. Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(1): 585–590

DOI

39
Vives E, Brodin P, Lebleu B. A truncated HIV-1 Tat protein basic domain rapidly translocates through the plasma membrane and accumulates in the cell nucleus. Journal of Biological Chemistry, 1997, 272(25): 16010–16017

DOI

40
Hariton-Gazal E, Feder R, Mor A, Graessmann A, Brack-Werner R, Jans D, Gilon C, Loyter A. Targeting of nonkaryophilic cell-permeable peptides into the nuclei of intact cells by covalently attached nuclear localization signals. Biochemistry, 2002, 41(29): 9208–9214

DOI

41
Patel L N, Wang J, Kim K J, Borok Z, Crandall E D, Shen W C. Conjugation with cationic cell-penetrating peptide increases pulmonary absorption of insulin. Molecular Pharmaceutics, 2009, 6(2): 492–503

DOI

42
Zaro J L, Shen W C. Quantitative comparison of membrane transduction and endocytosis of oligopeptides. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2003, 307(2): 241–247

DOI

43
Zaro J L, Shen W C. Evidence that membrane transduction of oligoarginine does not require vesicle formation. Experimental Cell Research, 2005, 307(1): 164–173

DOI

44
Park Y J, Chang L C, Liang J F, Moon C, Chung C P, Yang V C. Nontoxic membrane translocation peptide from protamine, low molecular weight protamine (LMWP), for enhanced intracellular protein delivery: in vitro and in vivo study. FASEB Journal, 2005, 19(11): 1555–1557

45
Wu F L, Yeh T H, Chen Y L, Chiu Y C, Cheng J C, Wei M F, Shen L J. Intracellular delivery of recombinant arginine deiminase (rADI) by heparin-binding hemagglutinin adhesion peptide restores sensitivity in rADI-resistant cancer cells. Molecular Pharmaceutics, 2014, 11(8): 2777–2786

DOI

46
Yang Z, Jiang Z, Cao Z, Zhang C, Gao D, Luo X, Zhang X, Luo H, Jiang Q, Liu J. Multifunctional non-viral gene vectors with enhanced stability, improved cellular and nuclear uptake capability, and increased transfection efficiency. Nanoscale, 2014, 6(17): 10193–10206

DOI

47
Morris M C, Depollier J, Mery J, Heitz F, Divita G. A peptide carrier for the delivery of biologically active proteins into mammalian cells. Nature Biotechnology, 2001, 19(12): 1173–1176

DOI

48
Kurzawa L, Pellerano M, Morris M C. PEP and CADY-mediated delivery of fluorescent peptides and proteins into living cells. Biochimica et Biophysica Acta, 2010, 1798(12): 2274–2285

DOI

49
Lin Y Z, Yao S Y, Veach R A, Torgerson T R, Hawiger J. Inhibition of nuclear translocation of transcription factor NF-kappa B by a synthetic peptide containing a cell membrane-permeable motif and nuclear localization sequence. Journal of Biological Chemistry, 1995, 270(24): 14255–14258

DOI

50
Soomets U, Lindgren M, Gallet X, Hallbrink M, Elmquist A, Balaspiri L, Zorko M, Pooga M, Brasseur R, Langel U. Deletion analogues of transportan. Biochimica et Biophysica Acta, 2000, 1467(1): 165–176

DOI

51
Kobayashi S, Nakase I, Kawabata N, Yu H H, Pujals S, Imanishi M, Giralt E, Futaki S. Cytosolic targeting of macromolecules using a pH-dependent fusogenic peptide in combination with cationic liposomes. Bioconjugate Chemistry, 2009, 20(5): 953–959

DOI

52
El-Sayed A, Futaki S, Harashima H. Delivery of macromolecules using arginine-rich cell-penetrating peptides: Ways to overcome endosomal entrapment. AAPS Journal, 2009, 11(1): 13–22

DOI

53
Wyman T B, Nicol F, Zelphati O, Scaria P V, Plank C, Szoka F C J. Design, synthesis, and characterization of a cationic peptide that binds to nucleic acids and permeabilizes bilayers. Biochemistry, 1997, 36(10): 3008–3017

DOI

54
Wada S, Tsuda H, Okada T, Urata H. Cellular uptake of aib-containing amphipathic helix peptide. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters, 2011, 21(19): 5688–5691

DOI

55
Zaro J L, Vekich J E, Tran T, Shen W C. Nuclear localization of cell-penetrating peptides is dependent on endocytosis rather than cytosolic delivery in CHO cells. Molecular Pharmaceutics, 2009, 6(2): 337–344

DOI

56
Gomez J A, Chen J, Ngo J, Hajkova D, Yeh I J, Gama V, Miyagi M, Matsuyama S. Cell-penetrating penta-peptides (CPP5s): Measurement of cell entry and protein-transduction activity. Pharmaceuticals (Basel, Switzerland), 2010, 3(12): 3594–3613

DOI

57
Fretz M M, Penning N A, Al-Taei S, Futaki S, Takeuchi T, Nakase I, Storm G, Jones A T. Temperature, concentration- and cholesterol-dependent translocation of L- and D-octa-arginine across the plasma and nuclear membrane of CD34+ leukaemia cells. Biochemical Journal, 2007, 403(2): 335–342

DOI

58
Zaro J L, Rajapaksa T E, Okamoto C T, Shen W C. Membrane transduction of oligoarginine in HeLa cells is not mediated by macropinocytosis. Molecular Pharmaceutics, 2006, 3(2): 181–186

DOI

59
Cohen-Avrahami M, Libster D, Aserin A, Garti N. Sodium diclofenac and cell-penetrating peptides embedded in H(II) mesophases: Physical characterization and delivery. Journal of Physical Chemistry B, 2011, 115(34): 10189–10197

DOI

60
Sheng J, Oyler G, Zhou B, Janda K, Shoemaker C B. Identification and characterization of a novel cell-penetrating peptide. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2009, 382(2): 236–240

DOI

61
Shen W C, Ryser H J. Conjugation of poly-L-lysine to albumin and horseradish peroxidase: A novel method of enhancing the cellular uptake of proteins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1978, 75(4): 1872–1876

DOI

62
Ryser H J, Shen W C, Merk F B. Membrane transport of macromolecules: New carrier functions of proteins and poly(amino acids). Life Sciences, 1978, 22(13–15): 1253–1260

DOI

63
Pardridge W M, Buciak J L, Kang Y S, Boado R J. Protamine-mediated transport of albumin into brain and other organs of the rat. Binding and endocytosis of protamine-albumin complex by microvascular endothelium. Journal of Clinical Investigation, 1993, 92(5): 2224–2229

DOI

64
Wu G Y, Wu C H. Evidence for targeted gene delivery to Hep G2 hepatoma cells in vitro. Biochemistry, 1988, 27(3): 887–892

DOI

65
Cotten M, Langle-Rouault F, Kirlappos H, Wagner E, Mechtler K, Zenke M, Beug H, Birnstiel M L. Transferrin-polycation-mediated introduction of DNA into human leukemic cells: Stimulation by agents that affect the survival of transfected DNA or modulate transferrin receptor levels. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1990, 87(11): 4033–4037

DOI

66
Ryser H J, Shen W C. Conjugation of methotrexate to poly(L-lysine) increases drug transport and overcomes drug resistance in cultured cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1978, 75(8): 3867–3870

DOI

67
Shen W C, Ryser H J. Poly (L-lysine) and poly (D-lysine) conjugates of methotrexate: Different inhibitory effect on drug resistant cells. Molecular Pharmacology, 1979, 16(2): 614–622

68
Ryser H J, Shen W C. Conjugation of methotrexate to poly (L-lysine) as a potential way to overcome drug resistance. Cancer, 1980, 45(5 Suppl): 1207–1211

DOI

69
Han K, Jeon M J, Kim S H, Ki D, Bahn J H, Lee K S, Park J, Choi S Y. Efficient intracellular delivery of an exogenous protein GFP with genetically fused basic oligopeptides. Molecules and Cells, 2001, 12(2): 267–271

70
Rothbard J B, Jessop T C, Lewis R S, Murray B A, Wender P A. Role of membrane potential and hydrogen bonding in the mechanism of translocation of guanidinium-rich peptides into cells. Journal of the American Chemical Society, 2004, 126(31): 9506–9507

DOI

71
Goncalves E, Kitas E, Seelig J. Binding of oligoarginine to membrane lipids and heparan sulfate: Structural and thermodynamic characterization of a cell-penetrating peptide. Biochemistry, 2005, 44(7): 2692–2702

DOI

72
Gelman R A, Glaser D N, Blackwell J. Interaction between chondroitin-6-sulfate and poly-L-arginine in aqueous solution. Biopolymers, 1973, 12(6): 1223–1232

DOI

73
Richard J P, Melikov K, Brooks H, Prevot P, Lebleu B, Chernomordik L V. Cellular uptake of unconjugated TAT peptide involves clathrin-dependent endocytosis and heparan sulfate receptors. Journal of Biological Chemistry, 2005, 280(15): 15300–15306

DOI

74
Jiao C Y, Delaroche D, Burlina F, Alves I D, Chassaing G, Sagan S. Translocation and endocytosis for cell-penetrating peptide internalization. Journal of Biological Chemistry, 2009, 284(49): 33957–33965

DOI

75
Zaro J L, Shen W C. Cytosolic delivery of a p16-peptide oligoarginine conjugate for inhibiting proliferation of MCF7 cells. Journal of Controlled Release, 2005, 108(2–3): 409–417

DOI

76
Fei L, Ren L, Zaro J L, Shen W C. The influence of net charge and charge distribution on cellular uptake and cytosolic localization of arginine-rich peptides. Journal of Drug Targeting, 2011, 19(8): 675–680

DOI

77
Law M, Jafari M, Chen P. Physicochemical characterization of siRNA-peptide complexes. Biotechnology Progress, 2008, 24(4): 957–963

DOI

78
Pace C N, Scholtz J M. A helix propensity scale based on experimental studies of peptides and proteins. Biophysical Journal, 1998, 75(1): 422–442, 7

DOI

79
Hong M, Su Y. Structure and dynamics of cationic membrane peptides and proteins: Insights from solid-state NMR. Protein Science, 2011, 20(4): 641–655

DOI

80
Di Pisa M, Chassaing G, Swiecicki J M. Translocation mechanism(s) of cell-penetrating peptides: Biophysical studies using artificial membrane bilayers. Biochemistry, 2015, 54(2): 194–207

DOI

81
Gelman R A, Blackwell J. Heparin-polypeptide interactions in aqueous solution. Archives of Biochemistry and Biophysics, 1973, 159(1): 427–433

DOI

82
Shen W C, Ryser H J. Poly(L-lysine) has different membrane transport and drug-carrier properties when complexed with heparin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1981, 78(12): 7589–7593

DOI

83
Su Y, Doherty T, Waring A J, Ruchala P, Hong M. Roles of arginine and lysine residues in the translocation of a cell-penetrating peptide from (13)C, (31)P, and (19)F solid-state NMR. Biochemistry, 2009, 48(21): 4587–4595

DOI

84
Clark K S, Svetlovics J, McKeown A N, Huskins L, Almeida P F. What determines the activity of antimicrobial and cytolytic peptides in model membranes. Biochemistry, 2011, 50(37): 7919–7932

DOI

85
Alves I D, Goasdoue N, Correia I, Aubry S, Galanth C, Sagan S, Lavielle S, Chassaing G. Membrane interaction and perturbation mechanisms induced by two cationic cell penetrating peptides with distinct charge distribution. Biochimica et Biophysica Acta, 2008, 1780(7–8): 948–959

DOI

86
Derossi D, Joliot A H, Chassaing G, Prochiantz A. The third helix of the Antennapedia homeodomain translocates through biological membranes. Journal of Biological Chemistry, 1994, 269(14): 10444–10450

87
Kaplan I M, Wadia J S, Dowdy S F. Cationic TAT peptide transduction domain enters cells by macropinocytosis. Journal of Controlled Release, 2005, 102(1): 247–253

DOI

88
Wadia J S, Stan R V, Dowdy S F. Transducible TAT-HA fusogenic peptide enhances escape of TAT-fusion proteins after lipid raft macropinocytosis. Nature Medicine, 2004, 10(3): 310–315

DOI

89
Yesylevskyy S, Marrink S J, Mark A E. Alternative mechanisms for the interaction of the cell-penetrating peptides penetratin and the TAT peptide with lipid bilayers. Biophysical Journal, 2009, 97(1): 40–49

DOI

90
Fittipaldi A, Ferrari A, Zoppe M, Arcangeli C, Pellegrini V, Beltram F, Giacca M. Cell membrane lipid rafts mediate caveolar endocytosis of HIV-1 Tat fusion proteins. Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(36): 34141–34149

DOI

91
Ferrari M E, Nguyen C M, Zelphati O, Tsai Y, Felgner P L. Analytical methods for the characterization of cationic lipid-nucleic acid complexes. Human Gene Therapy, 1998, 9(3): 341–351

DOI

92
Qian Z, LaRochelle J R, Jiang B, Lian W, Hard R L, Selner N G, Luechapanichkul R, Barrios A M, Pei D. Early endosomal escape of a cyclic cell-penetrating peptide allows effective cytosolic cargo delivery. Biochemistry, 2014, 53(24): 4034–4046

DOI

93
Lundberg P, El-Andaloussi S, Sutlu T, Johansson H, Langel U. Delivery of short interfering RNA using endosomolytic cell-penetrating peptides. FASEB Journal, 2007, 21(11): 2664–2671

DOI

94
Yang S T, Zaitseva E, Chernomordik L V, Melikov K. Cell-penetrating peptide induces leaky fusion of liposomes containing late endosome-specific anionic lipid. Biophysical Journal, 2010, 99(8): 2525–2533

DOI

95
Deshayes S, Plenat T, Charnet P, Divita G, Molle G, Heitz F. Formation of transmembrane ionic channels of primary amphipathic cell-penetrating peptides. Consequences on the mechanism of cell penetration. Biochimica et Biophysica Acta, 2006, 1758(11): 1846–1851

DOI

96
Kenien R, Shen W C, Zaro J L. Vesicle-to-cytosol transport of disulfide-linked cargo mediated by an amphipathic cell-penetrating peptide. Journal of Drug Targeting, 2012, 20(9): 793–800

DOI

97
Kenien R, Zaro J L, Shen W C. MAP-mediated nuclear delivery of a cargo protein. Journal of Drug Targeting, 2012, 20(4): 329–337

DOI

98
Shai Y. Mechanism of the binding, insertion and destabilization of phospholipid bilayer membranes by α-helical antimicrobial and cell non-selective membrane-lytic peptides. Biochimica et Biophysica Acta, 1999, 1462(1–2): 55–70

DOI

99
Matsuzaki K, Sugishita K, Miyajima K. Interactions of an antimicrobial peptide, magainin 2, with lipopolysaccharide-containing liposomes as a model for outer membranes of gram-negative bacteria. FEBS Letters, 1999, 449(2–3): 221–224

DOI

100
Yang L, Harroun T A, Weiss T M, Ding L, Huang H W. Barrel-stave model or toroidal model? A case study on melittin pores. Biophysical Journal, 2001, 81(3): 1475–1485

DOI

101
Berlose J P, Convert O, Derossi D, Brunissen A, Chassaing G. Conformational and associative behaviours of the third helix of antennapedia homeodomain in membrane-mimetic environments. European Journal of Biochemistry, 1996, 242(2): 372–386

DOI

102
Mor A, Nguyen V H, Delfour A, Migliore-Samour D, Nicolas P. Isolation, amino acid sequence, and synthesis of dermaseptin, a novel antimicrobial peptide of amphibian skin. Biochemistry, 1991, 30(36): 8824–8830

DOI

103
Matsuzaki K, Murase O, Fujii N, Miyajima K. An antimicrobial peptide, magainin 2, induced rapid flip-flop of phospholipids coupled with pore formation and peptide translocation. Biochemistry, 1996, 35(35): 11361–11368

DOI

104
Matsuzaki K, Murase O, Fujii N, Miyajima K. Translocation of a channel-forming antimicrobial peptide, magainin 2, across lipid bilayers by forming a pore. Biochemistry, 1995, 34(19): 6521–6526

DOI

105
Ludtke S J, He K, Heller W T, Harroun T A, Yang L, Huang H W. Membrane pores induced by magainin. Biochemistry, 1996, 35(43): 13723–13728

DOI

106
Brauner J W, Mendelsohn R, Prendergast F G. Attenuated total reflectance Fourier transform infrared studies of the interaction of melittin, two fragments of melittin, and δ-hemolysin with phosphatidylcholines. Biochemistry, 1987, 26(25): 8151–8158

DOI

107
Frey S, Tamm L K. Orientation of melittin in phospholipid bilayers. A polarized attenuated total reflection infrared study. Biophysical Journal, 1991, 60(4): 922–930

DOI

108
Mueller J, Kretzschmar I, Volkmer R, Boisguerin P. Comparison of cellular uptake using 22 CPPs in 4 different cell lines. Bioconjugate Chemistry, 2008, 19(12): 2363–2374

DOI

109
Saar K, Lindgren M, Hansen M, Eiriksdottir E, Jiang Y, Rosenthal-Aizman K, Sassian M, Langel U. Cell-penetrating peptides: A comparative membrane toxicity study. Analytical Biochemistry, 2005, 345(1): 55–65

DOI

110
El-Andaloussi S, Jarver P, Johansson H J, Langel U. Cargo-dependent cytotoxicity and delivery efficacy of cell-penetrating peptides: A comparative study. Biochemical Journal, 2007, 407(2): 285–292

DOI

111
Rothbard J B, Jessop T C, Lewis R S, Murray B A, Wender P A. Role of membrane potential and hydrogen bonding in the mechanism of translocation of guanidinium-rich peptides into cells. Journal of the American Chemical Society, 2004, 126(31): 9506–9507

DOI

112
Zaro J L, Shen W C. Quantitative comparison of membrane transduction and endocytosis of oligopeptides. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2003, 307(2): 241–247

DOI

113
Zaro J L, Shen W C. Evidence that membrane transduction of oligoarginine does not require vesicle formation. Experimental Cell Research, 2005, 307(1): 164–173

DOI

114
Patel L N, Zaro J L, Shen W C. Cell penetrating peptides: Intracellular pathways and pharmaceutical perspectives. Pharmaceutical Research, 2007, 24(11): 1977–1992

DOI

115
Sawant R, Torchilin V. Intracellular transduction using cell-penetrating peptides. Molecular BioSystems, 2010, 6(4): 628–640

DOI

116
Schmidt N, Mishra A, Lai G H, Wong G C L. Arginine-rich cell-penetrating peptides. FEBS Letters, 2010, 584(9): 1806–1813

DOI

117
Wender P A, Galliher W C, Goun E A, Jones L R, Pillow T H. The design of guanidinium-rich transporters and their internalization mechanisms. Advanced Drug Delivery Reviews, 2008, 60(4–5): 452–472

DOI

118
Ziegler A. Thermodynamic studies and binding mechanisms of cell-penetrating peptides with lipids and glycosaminoglycans. Advanced Drug Delivery Reviews, 2008, 60(4–5): 580–597

DOI

119
Jiao C Y, Delaroche D, Burlina F, Alves I D, Chassaing G, Sagan S. Translocation and endocytosis for cell-penetrating peptideinternalization. Journal of Biological Chemistry, 2009, 284(49): 33957–33965

DOI

120
Herbig M E, Weller K M, Merkle H P. Reviewing biophysical and cell biological methodologies in cell-penetrating peptide (CPP) research. Critical Reviews in Therapeutic Drug Carrier Systems, 2007, 24(3): 203–255

DOI

121
Shen W C. Acid-sensitive dissociation between poly(lysine) and histamine-modified poly(glutamate) as a model for drug-releasing from carriers in endosomes. Biochimica et Biophysica Acta, 1990, 1034(1): 122–124

DOI

122
Fei L, Yap L P, Conti P S, Shen W C, Zaro J L. Tumor targeting of a cell penetrating peptide by fusing with a pH-sensitive histidine-glutamate co-oligopeptide. Biomaterials, 2014, 35(13): 4082–4087

DOI

123
Sun C, Shen W C, Tu J, Zaro J L. Interaction between cell-penetrating peptides and acid-sensitive anionic oligopeptides as a model for the design of targeted drug carriers. Molecular Pharmaceutics, 2014, 11(5): 1583–1590

DOI

124
Olson E S, Aguilera T A, Jiang T, Ellies L G, Nguyen Q T, Wong E H, Gross L A, Tsien R Y. In vivo characterization of activatable cell penetrating peptides for targeting protease activity in cancer. Integrative Biology: Quantitative Biosciences from Nano to Macro, 2009, 1(5–6): 382–393

DOI

125
Savariar E N, Felsen C N, Nashi N, Jiang T, Ellies L G, Steinbach P, Tsien R Y, Nguyen Q T. Real-time in vivo molecular detection of primary tumors and metastases with ratiometric activatable cell-penetrating peptides. Cancer Research, 2013, 73(2): 855–864

DOI

126
Weinstain R, Savariar E N, Felsen C N, Tsien R Y. In vivo targeting of hydrogen peroxide by activatable cell-penetrating peptides. Journal of the American Chemical Society, 2014, 136(3): 874–877

DOI

127
Lee S H, Castagner B, Leroux J C. Is there a future for cell-penetrating peptides in oligonucleotide delivery? European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics, 2013, 85(1): 5–11

DOI

128
Crombez L, Aldrian-Herrada G, Konate K, Nguyen Q N, McMaster G K, Brasseur R, Heitz F, Divita G. A new potent secondary amphipathic cell-penetrating peptide for siRNA delivery into mammalian cells. Molecular Therapy, 2009, 17(1): 95–103

DOI

129
Dubikovskaya E A, Thorne S H, Pillow T H, Contag C H, Wender P A. Overcoming multidrug resistance of small-molecule therapeutics through conjugation with releasable octaarginine transporters. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2008, 105(34): 12128–12133

DOI

130
Liu H, Zhang W, Ma L, Fan L, Gao F, Ni J, Wang R. The improved blood-brain barrier permeability of endomorphin-1 using the cell-penetrating peptide synB3 with three different linkages. International Journal of Pharmaceutics, 2014, 476(1–2): 1–8

DOI

131
Hauff S J, Raju S C, Orosco R K, Gross A M, Diaz-Perez J A, Savariar E, Nashi N, Hasselman J, Whitney M, Myers J N, Lippman S M, Tsien R Y, Ideker T, Nguyen Q T. Matrix-metalloproteinases in head and neck carcinoma-cancer genome atlas analysis and fluorescence imaging in mice. Otolaryngology- Head and Neck Surgery, 2014, 151(4): 612–618

DOI

132
Gotanda Y, Wei F Y, Harada H, Ohta K, Nakamura K, Tomizawa K, Ushijima K. Efficient transduction of 11 poly-arginine peptide in an ischemic lesion of mouse brain. Journal of Stroke and Cerebrovascular Diseases, 2014, 23(8): 2023–2030

DOI

133
van Duijnhoven S M, Robillard M S, Hermann S, Kuhlmann M T, Schafers M, Nicolay K, Grull H. Imaging of MMP activity in postischemic cardiac remodeling using radiolabeled MMP-2/9 activatable peptide probes. Molecular Pharmaceutics, 2014, 11(5): 1415–1423

DOI

134
Neundorf I, Rennert R, Franke J, Kozle I, Bergmann R. Detailed analysis concerning the biodistribution and metabolism of human calcitonin-derived cell-penetrating peptides. Bioconjugate Chemistry, 2008, 19(8): 1596–1603

DOI

135
Weiss H M, Wirz B, Schweitzer A, Amstutz R, Rodriguez Perez M I, Andres H, Metz Y, Gardiner J, Seebach D. ADME investigations of unnatural peptides: Distribution of a 14C-labeled β 3-octaarginine in rats. Chemistry & Biodiversity, 2007, 4(7): 1413–1437

DOI

136
Sehgal I, Sibrian-Vazquez M, Vicente M G. Photoinduced cytotoxicity and biodistribution of prostate cancer cell-targeted porphyrins. Journal of Medicinal Chemistry, 2008, 51(19): 6014–6020

DOI

137
Felsen C N, Savariar E N, Whitney M, Tsien R Y. Detection and monitoring of localized matrix metalloproteinase upregulation in a murine model of asthma. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology, 2014, 306(8): L764–L774

DOI

138
Michiue H, Sakurai Y, Kondo N, Kitamatsu M, Bin F, Nakajima K, Hirota Y, Kawabata S, Nishiki T, Ohmori I, Tomizawa K, Miyatake S, Ono K, Matsui H. The acceleration of boron neutron capture therapy using multi-linked mercaptoundecahydrododecaborate (BSH) fused cell-penetrating peptide. Biomaterials, 2014, 35(10): 3396–3405

DOI

139
Temming R P, Eggermont L, van Eldijk M B, van Hest J C, van Delft F L. N-Terminal dual protein functionalization by strain-promoted alkyne-nitrone cycloaddition. Organic & Biomolecular Chemistry, 2013, 11(17): 2772–2779

DOI

140
Shen W C, Ryser H J. Cis-Aconityl spacer between daunomycin and macromolecular carriers: A model of pH-sensitive linkage releasing drug from a lysosomotropic conjugate. Biochemical and Biophysical Research Communications, 1981, 102(3): 1048–1054

DOI

141
Walker L, Perkins E, Kratz F, Raucher D. Cell penetrating peptides fused to a thermally targeted biopolymer drug carrier improve the delivery and antitumor efficacy of an acid-sensitive doxorubicin derivative. International Journal of Pharmaceutics, 2012, 436(1–2): 825–832

DOI

142
Nakase I, Konishi Y, Ueda M, Saji H, Futaki S. Accumulation of arginine-rich cell-penetrating peptides in tumors and the potential for anticancer drug delivery in vivo. Journal of Controlled Release, 2012, 159(2): 181–188

DOI

143
Vives E. Present and future of cell-penetrating peptide mediated delivery systems: Is the Trojan horse too wild to go only to Troy? Journal of Controlled Release, 2005, 109(1–3): 77–85

DOI

144
Vives E, Schmidt J, Pelegrin A. Cell-penetrating and cell-targeting peptides in drug delivery. Biochimica et Biophysica Acta, 2008, 1786(2): 126–138

145
Heitz F, Morris M C, Divita G. Twenty years of cell-penetrating peptides: from molecular mechanisms to therapeutics. British Journal of Pharmacology, 2009, 157(2): 195–206

DOI

146
Sarko D, Beijer B, Garcia B R, Nothelfer E M, Leotta K, Eisenhut M, Altmann A, Haberkorn U, Mier W. The pharmacokinetics of cell-penetrating peptides. Molecular Pharmaceutics, 2010, 7(6): 2224–2231

DOI

147
Hamann P R, Hinman L M, Beyer C F, Lindh D, Upeslacis J, Flowers D A, Bernstein I. An anti-CD33 antibody-calicheamicin conjugate for treatment of acute myeloid leukemia. Choice of linker. Bioconjugate Chemistry, 2002, 13(1): 40–46

DOI

148
Anderson D C, Nichols E, Manger R, Woodle D, Barry M, Fritzberg A R. Tumor cell retention of antibody Fab fragments is enhanced by an attached HIV TAT protein-derived peptide. Biochemical and Biophysical Research Communications, 1993, 194(2): 876–884

DOI

149
Trudel D, Fradet Y, Meyer F, Harel F, Tetu B. Significance of MMP-2 expression in prostate cancer: An immunohistochemical study. Cancer Research, 2003, 63(23): 8511–8515

150
Turpeenniemi-Hujanen T. Gelatinases (MMP-2 and-9) and their natural inhibitors as prognostic indicators in solid cancers. Biochimie, 2005, 87(3–4): 287–297

DOI

151
Gerweck L E, Seetharaman K. Cellular pH gradient in tumor versus normal tissue: Potential exploitation for the treatment of cancer. Cancer Research, 1996, 56(6): 1194–1198

152
Getzenberg R H, Coffey D S, DeWeese T L. Hyperthermic biology and cancer therapies a hypothesis for the “Lance Armstrong effect”. Journal of the American Medical Association, 2006, 296(4): 445–448

DOI

153
Denko N, Cairns R, Papandreou I. Overcoming physiologic barriers to cancer treatment by molecularly targeting the tumor microenvironment. Molecular Cancer Research, 2006, 4(2): 61–70

DOI

154
Crisp J L, Savariar E N, Glasgow H L, Ellies L G, Whitney M A, Tsien R Y. Dual targeting of integrin αvβ3 and matrix metalloproteinase-2 for optical imaging of tumors and chemotherapeutic delivery. Molecular Cancer Therapeutics, 2014, 13(6): 1514–1525

DOI

155
Nguyen Q T, Olson E S, Aguilera T A, Jiang T, Scadeng M, Ellies L G, Tsien R Y. Surgery with molecular fluorescence imaging using activatable cell-penetrating peptides decreases residual cancer and improves survival. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2010, 107(9): 4317–4322

DOI

156
van Duijnhoven S M, Robillard M S, Nicolay K, Grull H. Tumor targeting of MMP-2/9 activatable cell-penetrating imaging probes is caused by tumor-independent activation. Journal of Nuclear Medicine, 2011, 52(2): 279–286

DOI

157
Zaro J L, Fei L, Shen W C. Recombinant peptide constructs for targeted cell penetrating peptide-mediated delivery. Journal of Controlled Release, 2012, 158(3): 357–361

DOI

158
Zhu L, Kate P, Torchilin V P. Matrix metalloprotease 2-responsive multifunctional liposomal nanocarrier for enhanced tumor targeting. ACS Nano, 2012, 6(4): 3491–3498

DOI

159
Apte A, Koren E, Koshkaryev A, Torchilin V P. Doxorubicin in TAT peptide-modified multifunctional immunoliposomes demonstrates increased activity against both drug-sensitive and drug-resistant ovarian cancer models. Cancer Biology & Therapy, 2014, 15(1): 69–80

DOI

160
Leader B, Baca Q J, Golan D E. Protein therapeutics: A summary and pharmacological classification. Nature Reviews. Drug Discovery, 2008, 7(1): 21–39

DOI

161
He H, Sheng J, David A E, Kwon Y M, Zhang J, Huang Y, Wang J, Yang V C. The use of low molecular weight protamine chemical chimera to enhance monomeric insulin intestinal absorption. Biomaterials, 2013, 34(31): 7733–7743

DOI

162
Liang J F, Yang V C. Insulin-cell penetrating peptide hybrids with improved intestinal absorption efficiency. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2005, 335(3): 734–738

DOI

163
Liu E, Sheng J, Ye J, Wang Y, Gong J, Yang V C, Wang J, He H. CPP mediated insulin delivery: Current status and promising future. Current Pharmaceutical Biotechnology, 2014, 15(3): 240–255

DOI

164
Fei L. Cell Penetrating Peptide-Based Drug Delivery System for Targeting Mildly Acidic pH. Dissertation for the Doctoral Degree. California: University of Southern California, 2014

165
Chen X, Zaro J L, Shen W C. Fusion protein linkers: Property, design and functionality. Advanced Drug Delivery Reviews, 2013, 65(10): 1357–1369

DOI

166
Almeida P F. Membrane-active peptides: Binding, translocation, and flux in lipid vesicles. Biochimica et Biophysica Acta, 2014, 1838(9): 2216–2227

DOI

167
Shin M C, Zhang J, Min K A, Lee K, Moon C, Balthasar J P, Yang V C. Combination of antibody targeting and PTD-mediated intracellular toxin delivery for colorectal cancer therapy. Journal of Controlled Release, 2014, 194: 197–210

DOI

168
Xu J, Xiang Q, Su J, Yang P, Zhang Q, Su Z, Xiao F, Huang Y. Evaluation of the safety and brain-related tissues distribution characteristics of TAT-HaFGF via intranasal administration. Biological & Pharmaceutical Bulletin, 2014, 37(7): 1149–1157

DOI

169
Cai S R, Xu G, Becker-Hapak M, Ma M, Dowdy S F, McLeod H L. The kinetics and tissue distribution of protein transduction in mice. European Journal of Pharmaceutical Sciences, 2006, 27(4): 311–319

DOI

170
Cerchietti L C, Yang S N, Shaknovich R, Hatzi K, Polo J M, Chadburn A, Dowdy S F, Melnick A. A peptomimetic inhibitor of BCL6 with potent antilymphoma effects in vitro and in vivo. Blood, 2009, 113(15): 3397–3405

DOI

171
Bowne W B, Michl J, Bluth M H, Zenilman M E, Pincus M R. Novel peptides from the RAS-p21 and p53 proteins for the treatment of cancer. Cancer Therapy, 2007, 5B: 331–344

172
Kwon M K, Nam J O, Park R W, Lee B H, Park J Y, Byun Y R, Kim S Y, Kwon I C, Kim I S. Antitumor effect of a transducible fusogenic peptide releasing multiple proapoptotic peptides by caspase-3. Molecular Cancer Therapeutics, 2008, 7(6): 1514–1522

DOI

173
Tan M, Lan K H, Yao J, Lu C H, Sun M, Neal C L, Lu J, Yu D. Selective inhibition of ErbB2-overexpressing breast cancer in vivo by a novel TAT-based ErbB2-targeting signal transducers and activators of transcription 3-blocking peptide. Cancer Research, 2006, 66(7): 3764–3772

DOI

174
Shibata W, Maeda S, Hikiba Y, Yanai A, Ohmae T, Sakamoto K, Nakagawa H, Ogura K, Omata M. Cutting edge: The IkappaB kinase (IKK) inhibitor, NEMO-binding domain peptide, blocks inflammatory injury in murine colitis. Journal of Immunology, 2007, 179(5): 2681–2685

DOI

175
Ghosh A, Roy A, Liu X, Kordower J H, Mufson E J, Hartley D M, Ghosh S, Mosley R L, Gendelman H E, Pahan K. Selective inhibition of NF-kappaB activation prevents dopaminergic neuronal loss in a mouse model of Parkinson’s disease. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2007, 104(47): 18754–18759

DOI

176
Hotchkiss R S, McConnell K W, Bullok K, Davis C G, Chang K C, Schwulst S J, Dunne J C, Dietz G P, Bahr M, McDunn J E, Karl I E, Wagner T H, Cobb J P, Coopersmith C M, Piwnica-Worms D. TAT-BH4 and TAT-Bcl-xL peptides protect against sepsis-induced lymphocyte apoptosis in vivo. Journal of Immunology (Baltimore, MD.: 1950), 2006, 176(9): 5471–5477

DOI

177
McCusker C T, Wang Y, Shan J, Kinyanjui M W, Villeneuve A, Michael H, Fixman E D. Inhibition of experimental allergic airways disease by local application of a cell-penetrating dominant-negative STAT-6 peptide. Journal of Immunology, 2007, 179(4): 2556–2564

DOI

178
Walker L R, Ryu J S, Perkins E, McNally L R, Raucher D. Fusion of cell-penetrating peptides to thermally responsive biopolymer improves tumor accumulation of p21 peptide in a mouse model of pancreatic cancer. Drug Design, Development and Therapy, 2014, 8: 1649–1658

DOI

179
Qiu X, Johnson J R, Wilson B S, Gammon S T, Piwnica-Worms D, Barnett E M. Single-cell resolution imaging of retinal ganglion cell apoptosis in vivo using a cell-penetrating caspase-activatable peptide probe. PLoS One, 2014, 9(2): e88855

DOI

180
He X H, Yan X T, Wang Y L, Wang C Y, Zhang Z Z, Zhan J. Transduced PEP-1-heme oxygenase-1 fusion protein protects against intestinal ischemia/reperfusion injury. Journal of Surgical Research, 2014, 187(1): 77–84

DOI

181
He X H, Wang Y, Yan X T, Wang Y L, Wang C Y, Zhang Z Z, Li H, Jiang H X. Transduction of PEP-1-heme oxygenase-1 fusion protein reduces myocardial ischemia/reperfusion injury in rats. Journal of Cardiovascular Pharmacology, 2013, 62(5): 436–442

DOI

182
McCarthy H O, McCaffrey J, McCrudden C M, Zholobenko A, Ali A A, McBride J W, Massey A S, Pentlavalli S, Chen K H, Cole G, Loughran S P, Dunne N J, Donnelly R F, Kett V L, Robson T. Development and characterization of self-assembling nanoparticles using a bio-inspired amphipathic peptide for gene delivery. Journal of Controlled Release, 2014, 189: 141–149

DOI

183
Wang H, Wang H, Liang J, Jiang Y, Guo Q, Peng H, Xu Q, Huang Y. Cell-penetrating apoptotic peptide/p53 DNA nanocomplex as adjuvant therapy for drug-resistant breast cancer. Molecular Pharmaceutics, 2014, 11(10): 3352–3360

DOI

184
Hu Y, Xu B, Ji Q, Shou D, Sun X, Xu J, Gao J, Liang W. A mannosylated cell-penetrating peptide-graft-polyethylenimine as a gene delivery vector. Biomaterials, 2014, 35(13): 4236–4246

DOI

185
Wang H X, Yang X Z, Sun C Y, Mao C Q, Zhu Y H, Wang J. Matrix metalloproteinase 2-responsive micelle for siRNA delivery. Biomaterials, 2014, 35(26): 7622–7634

DOI

186
Nielsen E J, Yoshida S, Kamei N, Iwamae R, Khafagy E S, Olsen J, Rahbek U L, Pedersen B L, Takayama K, Takeda-Morishita M. Khafagy el S, Olsen J, Rahbek U L, Pedersen B L, Takayama K, Takeda-Morishita M. in vivo proof of concept of oral insulin delivery based on a co-administration strategy with the cell-penetrating peptide penetratin. Journal of Controlled Release, 2014, 189: 19–24

DOI

187
Manosroi J, Lohcharoenkal W, Gotz F, Werner R G, Manosroi W, Manosroi A. Novel application of polioviral capsid: Development of a potent and prolonged oral calcitonin using polioviral binding ligand and Tat peptide. Drug Development and Industrial Pharmacy, 2014, 40(8): 1092–1100

DOI

188
Wiethoff C M, Middaugh C R. Barriers to nonviral gene delivery. Journal of Pharmaceutical Sciences, 2003, 92(2): 203–217

DOI

189
Nam H Y, Kim J, Kim S, Yockman J W, Kim S W, Bull D A. Cell penetrating peptide conjugated bioreducible polymer for siRNA delivery. Biomaterials, 2011, 32(22): 5213–5222

DOI

190
Mo R H, Zaro J L, Shen W C. Comparison of cationic and amphipathic cell penetrating peptides for siRNA delivery and efficacy. Molecular Pharmaceutics, 2012, 9(2): 299–309

DOI

191
Margus H, Padari K, Pooga M. Cell-penetrating peptides as versatile vehicles for oligonucleotide delivery. Molecular Therapy, 2012, 20(3): 525–533

DOI

192
Amidon G L, Lee H J. Absorption of peptide and peptidomimetic drugs. Annual Review of Pharmacology and Toxicology, 1994, 34(1): 321–341

DOI

193
Farkhani S M, Valizadeh A, Karami H, Mohammadi S, Sohrabi N, Badrzadeh F. Cell penetrating peptides: Efficient vectors for delivery of nanoparticles, nanocarriers, therapeutic and diagnostic molecules. Peptides, 2014, 57: 78–94

DOI

194
Cleal K, He L, Watson P D, Jones A T. Endocytosis, intracellular traffic and fate of cell penetrating peptide based conjugates and nanoparticles. Current Pharmaceutical Design, 2013, 19(16): 2878–2894

DOI

195
Zhang B, Zhang Y, Liao Z, Jiang T, Zhao J, Tuo Y, She X, Shen S, Chen J, Zhang Q, Jiang X, Hu Y, Pang Z. UPA-sensitive ACPP-conjugated nanoparticles for multi-targeting therapy of brain glioma. Biomaterials, 2015, 36: 98–109

DOI

196
Mei L, Zhang Q, Yang Y, He Q, Gao H. Angiopep-2 and activatable cell penetrating peptide dual modified nanoparticles for enhanced tumor targeting and penetrating. International Journal of Pharmaceutics, 2014, 474(1–2): 95–102

DOI

197
Fan T, Chen C, Guo H, Xu J, Zhang J, Zhu X, Yang Y, Zhou Z, Li L, Huang Y. Design and evaluation of solid lipid nanoparticles modified with peptide ligand for oral delivery of protein drugs. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics, 2014, 88(2): 518–528

DOI

198
Huang A, Su Z, Li S, Sun M, Xiao Y, Ping Q, Deng Y. Oral absorption enhancement of salmon calcitonin by using both N-trimethyl chitosan chloride and oligoarginines-modified liposomes as the carriers. Drug Delivery, 2014, 21(5): 388–396

DOI

199
Gao H, Zhang S, Cao S, Yang Z, Pang Z, Jiang X. Angiopep-2 and activatable cell-penetrating peptide dual-functionalized nanoparticles for systemic glioma-targeting delivery. Molecular Pharmaceutics, 2014, 11(8): 2755–2763

DOI

200
Yang Y, Yang Y, Xie X, Cai X, Zhang H, Gong W, Wang Z, Mei X. PEGylated liposomes with NGR ligand and heat-activable cell-penetrating peptide-doxorubicin conjugate for tumor-specific therapy. Biomaterials, 2014, 35(14): 4368–4381

DOI

201
Zong T, Mei L, Gao H, Cai W, Zhu P, Shi K, Chen J, Wang Y, Gao F, He Q. Synergistic dual-ligand doxorubicin liposomes improve targeting and therapeutic efficacy of brain glioma in animals. Molecular Pharmaceutics, 2014, 11(7): 2346–2357

DOI

202
Liu Y, Ran R, Chen J, Kuang Q, Tang J, Mei L, Zhang Q, Gao H, Zhang Z, He Q. Paclitaxel loaded liposomes decorated with a multifunctional tandem peptide for glioma targeting. Biomaterials, 2014, 35(17): 4835–4847

DOI

203
Tang J, Zhang L, Liu Y, Zhang Q, Qin Y, Yin Y, Yuan W, Yang Y, Xie Y, Zhang Z, He Q. Synergistic targeted delivery of payload into tumor cells by dual-ligand liposomes co-modified with cholesterol anchored transferrin and TAT. International Journal of Pharmaceutics, 2013, 454(1): 31–40

DOI

204
Wang J, Yu Y, Yan Z, Hu Z, Li L, Li J, Jiang X, Qian Q. Anticancer activity of oncolytic adenoviruses carrying p53 is augmented by 11R in gallbladder cancer cell lines in vitro and in vivo. Oncology Reports, 2013, 30(2): 833–841

205
Tang J, Fu H, Kuang Q, Zhang L, Zhang Q, Liu Y, Ran R, Gao H, Zhang Z, He Q. Liposomes co-modified with cholesterol anchored cleavable PEG and octaarginines for tumor targeted drug delivery. Journal of Drug Targeting, 2014, 22(4): 313–326

DOI

206
Shamay Y, Shpirt L, Ashkenasy G, David A. Complexation of cell-penetrating peptide-polymer conjugates with polyanions controls cells uptake of HPMA copolymers and anti-tumor activity. Pharmaceutical Research, 2014, 31(3): 768–779

DOI

207
Wang Y, Dou L, He H, Zhang Y, Shen Q. Multifunctional nanoparticles as nanocarrier for vincristine sulfate delivery to overcome tumor multidrug resistance. Molecular Pharmaceutics, 2014, 11(3): 885–894

DOI

208
Nakamura T, Yamazaki D, Yamauchi J, Harashima H. The nanoparticulation by octaarginine-modified liposome improves alpha-galactosylceramide-mediated antitumor therapy via systemic administration. Journal of Controlled Release, 2013, 171(2): 216–224

DOI

Outlines

/