Generation of CRISPR/Cas9-mediated lactoferrin-targeted mice by pronuclear injection of plasmid pX330

Mengxu GE, Fei LIU, Fei CHANG, Zhaolin SUN, Jing FEI, Ying GUO, Yunping DAI, Zhengquan YU, Yaofeng ZHAO, Ning LI, Qingyong MENG

PDF(592 KB)
PDF(592 KB)
Front. Agr. Sci. Eng. ›› 2015, Vol. 2 ›› Issue (3) : 242-248. DOI: 10.15302/J-FASE-2015059
RESEARCH ARTICLE
RESEARCH ARTICLE

Generation of CRISPR/Cas9-mediated lactoferrin-targeted mice by pronuclear injection of plasmid pX330

Author information +
History +

Abstract

Lactoferrin is a member of the transferrin family of multifunctional iron binding glycoproteins. While numerous physiological functions have been described for lactoferrin, the mechanisms underlying these functions are not clear. To further study the functions and mechanisms of lactoferrin, we modified the lactoferrin promoter of mice using the CRISPR/Cas9 system to reduce or eliminate lactoferrin expression. Seven mice with lactoferrin promoter mutations were obtained with an efficiency of 24% (7/29) by injecting the plasmid pX330, expressing a small guide RNA and human codon-optimized SpCas9, into fertilized eggs of mice. Plasmid integration and off-targeting of pX330 were not detected. These results confirmed that pronuclear injection of a circular plasmid is a feasible and efficient method for targeted mutagenesis in mice.

Keywords

lactoferrin / promoter / CRISPR/Cas9 / plasmid pX330

Cite this article

Download citation ▾
Mengxu GE, Fei LIU, Fei CHANG, Zhaolin SUN, Jing FEI, Ying GUO, Yunping DAI, Zhengquan YU, Yaofeng ZHAO, Ning LI, Qingyong MENG. Generation of CRISPR/Cas9-mediated lactoferrin-targeted mice by pronuclear injection of plasmid pX330. Front. Agr. Sci. Eng., 2015, 2(3): 242‒248 https://doi.org/10.15302/J-FASE-2015059

References

[1]
Sorensen M, Sorensen S. The proteins in whey. Compte rendu des Travaux du Laboratoire de Carlsberg Ser Chim, 1940, 23(7): 55–99
[2]
Groves M L. The isolation of a red protein from milk. Journal of the American Chemical Society, 1960, 82(13): 3345–3350
CrossRef Google scholar
[3]
Johanson B, Virtanen A I, Tweit R C, Dodson R M. Isolation of an iron-containing red protein from human milk. Acta Chemica Scandinavica, 1960, 14(2): 510–512
CrossRef Google scholar
[4]
Montreuil J, Tonnelat J, Mullet S. Preparation and properties of lactosiderophilin (lactotransferrin) of human milk. Biochimica et Biophysica Acta, 1960, 45: 413–421
CrossRef Pubmed Google scholar
[5]
Actor J K, Hwang S A, Kruzel M L. Lactoferrin as a natural immune modulator. Current Pharmaceutical Design, 2009, 15(17): 1956–1973
CrossRef Pubmed Google scholar
[6]
Ward P P, Conneely O M. Lactoferrin: role in iron homeostasis and host defense against microbial infection. Biometals, 2004, 17(3): 203–208
CrossRef Pubmed Google scholar
[7]
Blais A, Malet A, Mikogami T, Martin-Rouas C, Tomé D. Oral bovine lactoferrin improves bone status of ovariectomized mice. American Journal of Physiology, Endocrinology and Metabolism, 2009, 296(6): E1281–E1288
CrossRef Pubmed Google scholar
[8]
Malet A, Bournaud E, Lan A, Mikogami T, Tomé D, Blais A. Bovine lactoferrin improves bone status of ovariectomized mice via immune function modulation. Bone, 2011, 48(5): 1028–1035
CrossRef Pubmed Google scholar
[9]
Mulder A M, Connellan P A, Oliver C J, Morris C A, Stevenson L M. Bovine lactoferrin supplementation supports immune and antioxidant status in healthy human males. Nutrition Research, 2008, 28(9): 583–589
CrossRef Pubmed Google scholar
[10]
Wang Y Z, Shan T Z, Xu Z R, Feng J, Wang Z Q. Effects of the lactoferrin (LF) on the growth performance, intestinal microflora and morphology of weanling pigs. Animal Feed Science and Technology, 2007, 135(3): 263–272
CrossRef Google scholar
[11]
Velusamy S K, Ganeshnarayan K, Markowitz K, Schreiner H, Furgang D, Fine D H, Velliyagounder K. Lactoferrin knockout mice demonstrates greater susceptibility to Aggregatibacter actinomycetemcomitans–induced periodontal disease. Journal of Periodontology, 2013, 84(11): 1690–1701
Pubmed
[12]
van der Strate B W, Beljaars L, Molema G, Harmsen M C, Meijer D K. Antiviral activities of lactoferrin. Antiviral Research, 2001, 52(3): 225–239
CrossRef Pubmed Google scholar
[13]
Farnaud S, Evans R W. Lactoferrin—a multifunctional protein with antimicrobial properties. Molecular Immunology, 2003, 40(7): 395–405
CrossRef Pubmed Google scholar
[14]
Yang N, Strøm M B, Mekonnen S M, Svendsen J S, Rekdal O. The effects of shortening lactoferrin derived peptides against tumour cells, bacteria and normal human cells. Journal of Peptide Science, 2004, 10(1): 37–46
CrossRef Pubmed Google scholar
[15]
Garneau J E, Dupuis M È, Villion M, Romero D A, Barrangou R, Boyaval P, Fremaux C, Horvath P, Magadán A H, Moineau S. The CRISPR/Cas bacterial immune system cleaves bacteriophage and plasmid DNA. Nature, 2010, 468(7320): 67–71
CrossRef Pubmed Google scholar
[16]
Gasiunas G, Barrangou R, Horvath P, Siksnys V. Cas9-crRNA ribonucleoprotein complex mediates specific DNA cleavage for adaptive immunity in bacteria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2012, 109(39): E2579–E2586
CrossRef Pubmed Google scholar
[17]
Jinek M, Chylinski K, Fonfara I, Hauer M, Doudna J A, Charpentier E. A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity. Science, 2012, 337(6096): 816–821
CrossRef Pubmed Google scholar
[18]
Mussolino C, Cathomen T. RNA guides genome engineering. Nature Biotechnology, 2013, 31(3): 208–209
CrossRef Pubmed Google scholar
[19]
Cho S W, Kim S, Kim J M, Kim J S. Targeted genome engineering in human cells with the Cas9 RNA-guided endonuclease. Nature Biotechnology, 2013, 31(3): 230–232
CrossRef Pubmed Google scholar
[20]
Shen B, Zhang J, Wu H, Wang J, Ma K, Li Z, Zhang X, Zhang P, Huang X. Generation of gene-modified mice via Cas9/RNA-mediated gene targeting. Cell Research, 2013, 23(5): 720–723
CrossRef Pubmed Google scholar
[21]
Hwang W Y, Fu Y, Reyon D, Maeder M L, Tsai S Q, Sander J D, Peterson R T, Yeh J R, Joung J K. Efficient genome editing in zebrafish using a CRISPR-Cas system. Nature Biotechnology, 2013, 31(3): 227–229
CrossRef Pubmed Google scholar
[22]
Li W, Teng F, Li T, Zhou Q. Simultaneous generation and germline transmission of multiple gene mutations in rat using CRISPR-Cas systems. Nature Biotechnology, 2013, 31(8): 684–686
CrossRef Pubmed Google scholar
[23]
Niu Y, Shen B, Cui Y, Chen Y, Wang J, Wang L, Kang Y, Zhao X, Si W, Li W, Xiang A P, Zhou J, Guo X, Bi Y, Si C, Hu B, Dong G, Wang H, Zhou Z, Li T, Tan T, Pu X, Wang F, Ji S, Zhou Q, Huang X, Ji W, Sha J. Generation of gene-modified cynomolgus monkey via Cas9/RNA-mediated gene targeting in one-cell embryos. Cell, 2014, 156(4): 836–843
CrossRef Pubmed Google scholar
[24]
Han H, Ma Y, Wang T, Lian L, Tian X, Hu R, Deng S, Li K, Wang F, Li N, Liu G, Zhao Y, Lian Z. One-step generation of myostatin gene knockout sheep via the CRISPR/Cas9 system. Frontiers of Agricultural Science and Engineering, 2014, 1(1): 2–5
CrossRef Google scholar
[25]
Liu Y H, Teng C T. Characterization of estrogen-responsive mouse lactoferrin promoter. Journal of Biological Chemistry, 1991, 266(32): 21880–21885
Pubmed
[26]
Ramakrishna S, Cho S W, Kim S, Song M, Gopalappa R, Kim J S, Kim H. Surrogate reporter-based enrichment of cells containing RNA-guided Cas9 nuclease-induced mutations. Nature Communications, 2014, 5(3378): 3378
Pubmed
[27]
Dejosez M, Krumenacker J S, Zitur L J, Passeri M, Chu L F, Songyang Z, Thomson J A, Zwaka T P. Ronin is essential for embryogenesis and the pluripotency of mouse embryonic stem cells. Cell, 2008, 133(7): 1162–1174
CrossRef Pubmed Google scholar
[28]
Yang H, Wang H, Shivalila C S, Cheng A W, Shi L, Jaenisch R. One-step generation of mice carrying reporter and conditional alleles by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell, 2013, 154(6): 1370–1379
CrossRef Pubmed Google scholar
[29]
Cong L, Ran F A, Cox D, Lin S, Barretto R, Habib N, Hsu P D, Wu X, Jiang W, Marraffini L A, Zhang F. Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Science, 2013, 339(6121): 819–823
CrossRef Pubmed Google scholar
[30]
Mashiko D, Fujihara Y, Satouh Y, Miyata H, Isotani A, Ikawa M. Generation of mutant mice by pronuclear injection of circular plasmid expressing Cas9 and single guided RNA. Scientific Reports, 2013, 3(3355): 3355
Pubmed
[31]
Fu Y, Sander J D, Reyon D, Cascio V M, Joung J K. Improving CRISPR-Cas nuclease specificity using truncated guide RNAs. Nature Biotechnology, 2014, 32(3): 279–284
CrossRef Pubmed Google scholar
[32]
Ran F A, Hsu P D, Lin C Y, Gootenberg J S, Konermann S, Trevino A E, Scott D A, Inoue A, Matoba S, Zhang Y, Zhang F. Double nicking by RNA-guided CRISPR Cas9 for enhanced genome editing specificity. Cell, 2013, 154(6): 1380–1389
CrossRef Pubmed Google scholar
[33]
Tsai S Q, Wyvekens N, Khayter C, Foden J A, Thapar V, Reyon D, Goodwin M J, Aryee M J, Joung J K. Dimeric CRISPR RNA-guided FokI nucleases for highly specific genome editing. Nature Biotechnology, 2014, 32(6): 569–576
CrossRef Pubmed Google scholar
[34]
Wang H, Yang H, Shivalila C S, Dawlaty M M, Cheng A W, Zhang F, Jaenisch R. One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell, 2013, 153(4): 910–918
CrossRef Pubmed Google scholar

Acknowledgements

This study was supported by the Modern Agro-industry Technology Research Systems of China (CARAS-37) and the Domain Specific Projects for Transgenic Breeding (2014ZX08010004-008)
Supplementary materials The online version of this article at http://dx.doi.org/10.15302/J-FASE-2015059 contains supplementary material (Appendix A and B).
Compliance with ethics guidelines Mengxu Ge, Fei Liu, Fei Chang, Zhaolin Sun, Jing Fei, Ying Guo, Yunping Dai, Zhengquan Yu, Yaofeng Zhao, Ning Li and Qingyong Meng declare that they have no conflict of interest or financial conflicts to disclose.
All applicable institutional and national guidelines for the care and use of animals were followed.

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg
AI Summary AI Mindmap
PDF(592 KB)

Accesses

Citations

Detail

Sections
Recommended

/