Strategies for preventing peritoneal fibrosis in peritoneal dialysis patients: new insights based on peritoneal inflammation and angiogenesis

Zhen Zhang , Na Jiang , Zhaohui Ni

Front. Med. ›› 2017, Vol. 11 ›› Issue (3) : 349 -358.

PDF (263KB)
Front. Med. ›› 2017, Vol. 11 ›› Issue (3) : 349 -358. DOI: 10.1007/s11684-017-0571-2
REVIEW
REVIEW

Strategies for preventing peritoneal fibrosis in peritoneal dialysis patients: new insights based on peritoneal inflammation and angiogenesis

Author information +
History +
PDF (263KB)

Abstract

Peritoneal dialysis (PD) is an established form of renal replacement therapy. Long-term PD leads to morphologic and functional changes to the peritoneal membrane (PM), which is defined as peritoneal fibrosis, a known cause of loss of peritoneal ultrafiltration capacity. Inflammation and angiogenesis are key events during the pathogenesis of peritoneal fibrosis. This review discusses the pathophysiology of peritoneal fibrosis and recent research progress on key fibrogenic molecular mechanisms in peritoneal inflammation and angiogenesis, including Toll-like receptor ligand-mediated, NOD-like receptor protein 3/interleukin-1β, vascular endothelial growth factor, and angiopoietin-2/Tie2 signaling pathways. Furthermore, novel strategies targeting peritoneal inflammation and angiogenesis to preserve the PM are discussed in depth.

Keywords

peritoneal dialysis / peritoneal fibrosis / inflammation / angiogenesis

Cite this article

Download citation ▾
Zhen Zhang, Na Jiang, Zhaohui Ni. Strategies for preventing peritoneal fibrosis in peritoneal dialysis patients: new insights based on peritoneal inflammation and angiogenesis. Front. Med., 2017, 11(3): 349-358 DOI:10.1007/s11684-017-0571-2

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Nagy JA. Peritoneal membrane morphology and function. Kidney Int Suppl 199656: S2–S11

[2]

Li PKChow  KMVan de Luijtgaarden  MWJohnson DW Jager KJ Mehrotra R Naicker S Pecoits-Filho R Yu XQLameire  N. Changes in the worldwide epidemiology of peritoneal dialysis. Nat Rev Nephrol 201713(2): 90–103

[3]

Loureiro JGónzalez-Mateo  GJimenez-Heffernan JSelgas R López-Cabrera M Aguilera Peralta A. Are the mesothelial-to-mesenchymal transition, sclerotic peritonitis syndromes, and encapsulating peritoneal sclerosis part of the same process? Int J Nephrol 20132013: 263285160;PMID: 23476771

[4]

Garosi GCappelletti  FDi Paolo N . Fibrosis and sclerosis: different disorders or different stages? Contrib Nephrol 2006150: 62–69

[5]

Williams JDCraig  KJTopley N Von Ruhland C Fallon M Newman GR Mackenzie RK Williams GT ; Peritoneal Biopsy Study Group. Morphologic changes in the peritoneal membrane of patients with renal disease. J Am Soc Nephrol 200213(2): 470–479

[6]

Kaneko KHamada  CTomino Y . Peritoneal fibrosis intervention. Perit Dial Int 200727(Suppl 2): S82–S86

[7]

Schilte MNCelie  JWWee PM Beelen RH van den Born J . Factors contributing to peritoneal tissue remodeling in peritoneal dialysis. Perit Dial Int 200929(6): 605–617

[8]

Baroni GSchuinski  Ade Moraes TP Meyer F Pecoits-Filho R . Inflammation and the peritoneal membrane: causes and impact on structure and function during peritoneal dialysis. Mediators Inflamm 20122012: 912595160;PMID: 22547910

[9]

Aroeira LSAguilera  ASánchez-Tomero JABajo MA del Peso G Jiménez-Heffernan JA Selgas R López-Cabrera M . Epithelial to mesenchymal transition and peritoneal membrane failure in peritoneal dialysis patients: pathologic significance and potential therapeutic interventions. J Am Soc Nephrol 200718(7): 2004–2013

[10]

Bertoli SVBarone  MTVago L Bonetto S De Vecchi A Scalamogna A Barbiano di Belgiojoso G. Changes in peritoneal membrane after continuous ambulatory peritoneal dialysis—a histopathological study. Adv Perit Dial 199915: 28–31

[11]

Devuyst OMargetts  PJTopley N . The pathophysiology of the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 201021(7): 1077–1085

[12]

Yung SChan  TM. Intrinsic cells: mesothelial cells—central players in regulating inflammation and resolution. Perit Dial Int 200929(Suppl 2): S21–S27

[13]

Topley NJörres  ALuttmann W Petersen MM Lang MJ Thierauch KH Müller C Coles GA Davies M Williams JD . Human peritoneal mesothelial cells synthesize interleukin-6: induction by IL-1β and TNFα. Kidney Int 199343(1): 226–233

[14]

Kato SYuzawa  YTsuboi N Maruyama S Morita Y Matsuguchi T Matsuo S . Endotoxin-induced chemokine expression in murine peritoneal mesothelial cells: the role of toll-like receptor 4. J Am Soc Nephrol 200415(5): 1289–1299

[15]

López-Cabrera M. Mesenchymal conversion of mesothelial cells is a key event in the pathophysiology of the peritoneum during peritoneal dialysis. Adv Med 20142014: 473134 doi: 10.1155/2014/473134

[16]

Di Paolo NSacchi  G. Atlas of peritoneal histology. Perit Dial Int 200020(Suppl 3): S5–S96

[17]

Boulanger EWautier  MPWautier JL Boval B Panis Y Wernert N Danze PM Dequiedt P . AGEs bind to mesothelial cells via RAGE and stimulate VCAM-1 expression. Kidney Int 200261(1): 148–156

[18]

De Vriese AS. The John F. Maher Recipient Lecture 2004: rage in the peritoneum. Perit Dial Int 200525(1): 8–11

[19]

Jiang NZhang  ZFang W Qian JMou  SNi Z . High peritoneal glucose exposure is associated with increased incidence of relapsing and recurrent bacterial peritonitis in patients undergoing peritoneal dialysis. Blood Purif 201540(1): 72–78

[20]

Yang XLin  AJiang N Yan HNi  ZQian J Fang W. Interleukin-6 trans-signalling induces vascular endothelial growth factor synthesis partly via Janus kinases-STAT3 pathway in human mesothelial cells. Nephrology (Carlton) 201722(2): 150–158

[21]

Yang XZhang  HHang Y Yan HLin  AHuang J Ni ZQian  JFang W . Intraperitoneal interleukin-6 levels predict peritoneal solute transport rate: a prospective cohort study. Am J Nephrol 201439(6): 459–465

[22]

Ding LShao  XCao L Fang WYan  HHuang J Gu AYu  ZQi C Chang X Ni Z. Possible role of IL-6 and TIE2 gene polymorphisms in predicting the initial high transport status in patients with peritoneal dialysis: an observational study. BMJ Open 20166(10): e012967

[23]

Feurino LWZhang  YBharadwaj U Zhang R Li FFisher  WEBrunicardi FC Chen CYao  QMin L . IL-6 stimulates Th2 type cytokine secretion and upregulates VEGF and NRP-1 expression in pancreatic cancer cells. Cancer Biol Ther 20076(7): 1096–1100

[24]

Park JHKim  YGShaw M Kanneganti TD Fujimoto Y Fukase K Inohara N Núñez G . Nod1/RICK and TLR signaling regulate chemokine and antimicrobial innate immune responses in mesothelial cells. J Immunol 2007179(1): 514–521

[25]

Lai KNTang  SCLeung JC . Mediators of inflammation and fibrosis. Perit Dial Int 200727(Suppl 2): S65–S71

[26]

Colmont CSRaby  ACDioszeghy V Lebouder E Foster TL Jones SA Labéta MO Fielding CA Topley N . Human peritoneal mesothelial cells respond to bacterial ligands through a specific subset of Toll-like receptors. Nephrol Dial Transplant 201126(12): 4079–4090

[27]

Leifer CAMedvedev  AE. Molecular mechanisms of regulation of Toll-like receptor signaling. J Leukoc Biol 2016100(5): 927–941

[28]

Achek AYesudhas  DChoi S . Toll-like receptors: promising therapeutic targets for inflammatory diseases. Arch Pharm Res 201639(8): 1032–1049

[29]

Strippoli RBenedicto  IPérez Lozano  MLCerezo A López-Cabrera M del Pozo MA . Epithelial-to-mesenchymal transition of peritoneal mesothelial cells is regulated by an ERK/NF-κB/Snail1 pathway. Dis Model Mech 20081(4-5): 264–274160;doi:10.1242/dmm.001321

[30]

Cuenda ARousseau  Sp38 MAP-kinases pathway regulation, function and role in human diseases. Biochim Biophys Acta 20071773:1358–1375

[31]

Strippoli RBenedicto  IForonda M Perez-Lozano ML Sánchez-Perales S López-Cabrera M Del Pozo MÁ . p38 maintains E-cadherin expression by modulating TAK1-NF-κB during epithelial-to-mesenchymal transition. J Cell Sci 2010123(24): 4321–4331

[32]

Zhou QYang  MLan H Yu X. miR-30a negatively regulates TGF-b1-induced epithelial-mesenchymal transition and peritoneal fibrosis by targeting Snai1. Am J Pathol 2013183(3): 808–819

[33]

Zhang KZhang  HZhou X Tang WB Xiao LLiu  YHLiu H Peng YM Sun LLiu  FY. miRNA 589 regulates epithelial mesenchymal transition in human peritoneal mesothelial cells. J Biomed Biotechnol 20122012: 673096

[34]

Liu QMao  HNie J Chen WYang  QDong X Yu X. Transforming growth factor β1 induces epithelial-mesenchymal transition by activating the JNK-Smad3 pathway in rat peritoneal mesothelial cells. Perit Dial Int 200828(Suppl 3): S88–S95

[35]

Shen JWang  LJiang N Mou SZhang  MGu L Shao XWang  QQi C Li SWang  WChe X Ni Z. NLRP3 inflammasome mediates contrast media-induced acute kidney injury by regulating cell apoptosis. Sci Rep 20166(1): 34682

[36]

Hautem NMorelle  JSow A Corbet C Feron O Goffin E Huaux F Devuyst O. The NLRP3 inflammasome has a critical role in peritoneal dialysis-related peritonitis. J Am Soc Nephrol 201728(7):2038–2052. 160;PMID: 28193826

[37]

Yáñez-Mó M Lara-Pezzi E Selgas R Ramírez-Huesca M Domínguez-Jiménez CJiménez-Heffernan  JAAguilera A Sánchez-Tomero JA Bajo MA Alvarez V Castro MA del Peso G Cirujeda A Gamallo C Sánchez-Madrid F López-Cabrera M . Peritoneal dialysis and epithelial-to-mesenchymal transition of mesothelial cells. N Engl J Med 2003348(5): 403–413

[38]

Strippoli RMoreno-Vicente  RBattistelli C Cicchini C Noce VAmicone  LMarchetti A Del Pozo MA Tripodi M . Molecular mechanisms underlying peritoneal EMT and fibrosis. Stem Cells Int 20162016: 3543678

[39]

Wu JLi  XZhu G Zhang Y He MZhang  J. The role of Resveratrol-induced mitophagy/autophagy in peritoneal mesothelial cells inflammatory injury via NLRP3 inflammasome activation triggered by mitochondrial ROS. Exp Cell Res 2016341(1): 42–53

[40]

Yuan JFang  WNi Z Dai HLin  ACao L Qian J. Peritoneal morphologic changes in a peritoneal dialysis rat model correlate with angiopoietin/Tie-2. Pediatr Nephrol 200924(1): 163–170

[41]

Zweers MMStruijk  DGSmit W Krediet RT . Vascular endothelial growth factor in peritoneal dialysis: a longitudinal follow-up. J Lab Clin Med 2001137(2): 125–132

[42]

Mortier SFaict  DLameire NH De Vriese AS . Benefits of switching from a conventional to a low-GDP bicarbonate/lactate-buffered dialysis solution in a rat model. Kidney Int 200567(4): 1559–1565

[43]

Stavenuiter AWSchilte  MNTer Wee PM Beelen RH . Angiogenesis in peritoneal dialysis. Kidney Blood Press Res 201134(4): 245–252

[44]

Niu JAzfer  AZhelyabovska O Fatma S Kolattukudy PE . Monocyte chemotactic protein (MCP)-1 promotes angiogenesis via a novel transcription factor, MCP-1-induced protein (MCPIP). J Biol Chem 2008283(21): 14542–14551

[45]

Margetts PJKolb  MYu L Hoff CM Holmes CJ Anthony DC Gauldie J . Inflammatory cytokines, angiogenesis, and fibrosis in the rat peritoneum. Am J Pathol 2002160(6): 2285–2294

[46]

Rosell AArai  KLok J He TGuo  SNavarro M Montaner J Katusic ZS Lo EH. Interleukin-1β augments angiogenic responses of murine endothelial progenitor cells in vitro. J Cereb Blood Flow Metab 200929(5): 933–943 PMID:19240740 

[47]

Catar RWitowski  JZhu N Lücht C Derrac Soria A Uceda Fernandez J Chen LJones  SAFielding CA Rudolf A Topley N Dragun D Jörres A . IL-6 trans-signaling links inflammation with angiogenesis in the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 201728(4): 1188–1199

[48]

Fan YYe  JShen F Zhu YYeghiazarians  YZhu W Chen YLawton  MTYoung WL Yang GY . Interleukin-6 stimulates circulating blood-derived endothelial progenitor cell angiogenesis in vitro. J Cereb Blood Flow Metab 200828(1): 90–98

[49]

Li ADubey  SVarney ML Dave BJ Singh RK . IL-8 directly enhanced endothelial cell survival, proliferation, and matrix metalloproteinases production and regulated angiogenesis. J Immunol 2003170(6): 3369–3376

[50]

Leibovich SJPolverini  PJShepard HM Wiseman DM Shively V Nuseir N . Macrophage-induced angiogenesis is mediated by tumour necrosis factor-α. Nature 1987329(6140): 630–632

[51]

De Vriese ASTilton  RGStephan CC Lameire NH . Vascular endothelial growth factor is essential for hyperglycemia-induced structural and functional alterations of the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 200112(8): 1734–1741

[52]

Neufeld GCohen  TGengrinovitch S Poltorak Z . Vascular endothelial growth factor (VEGF) and its receptors. FASEB J 199913(1): 9–22

[53]

Roskoski R Jr . Vascular endothelial growth factor (VEGF) and VEGF receptor inhibitors in the treatment of renal cell carcinomas. Pharmacol Res 2017120: 116–132

[54]

González-Mateo GT Aguirre AR Loureiro J Abensur H Sandoval P Sánchez-Tomero JA delPeso G Jiménez-Heffernan JA Ruiz-Carpio V Selgas R López-Cabrera M Aguilera A Liappas G . Rapamycin protects from type I peritoneal membrane failure inhibiting the angiogenesis, lymphangiogenesis, and Endo-MT. Biomed Res Int 20152015: 989560 doi: 10.1155/2015/989560

[55]

Evans I. An overview of VEGF-mediated signal transduction. Methods Mol Biol 20151332: 91–120

[56]

Aroeira LSLara-Pezzi  ELoureiro J Aguilera A Ramírez-Huesca M González-Mateo G Pérez-Lozano ML Albar-Vizcaíno P Bajo MA del Peso G Sánchez-Tomero JA Jiménez-Heffernan JA Selgas R López-Cabrera M . Cyclooxygenase-2 mediates dialysate-induced alterations of the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 200920(3): 582–592

[57]

Maisonpierre PCSuri  CJones PF Bartunkova S Wiegand SJ Radziejewski C Compton D McClain J Aldrich TH Papadopoulos N Daly TJ Davis S Sato TN Yancopoulos GD . Angiopoietin-2, a natural antagonist for Tie2 that disrupts in vivo angiogenesis. Science 1997277(5322): 55–60

[58]

Kim MAllen  BKorhonen EA Nitschké M Yang HW Baluk P Saharinen P Alitalo K Daly CThurston  GMcDonald DM . Opposing actions of angiopoietin-2 on Tie2 signaling and FOXO1 activation. J Clin Invest 2016126(9): 3511–3525

[59]

Mueller SBKontos  CD. Tie1: an orphan receptor provides context for angiopoietin-2/Tie2 signaling. J Clin Invest 2016126(9): 3188–3191

[60]

Korhonen EALampinen  AGiri H Anisimov A Kim MAllen  BFang S D’Amico G Sipilä TJ Lohela M Strandin T Vaheri A Ylä-Herttuala S Koh GYMcDonald  DMAlitalo K Saharinen P . Tie1 controls angiopoietin function in vascular remodeling and inflammation. J Clin Invest 2016126(9): 3495–3510

[61]

Fagiani EChristofori  G. Angiopoietins in angiogenesis. Cancer Lett 2013328(1): 18–26

[62]

Reiss Y. Angiopoietins. Recent Results Cancer Res 2010180: 3–13

[63]

Fukuhara SSako  KMinami T Noda KKim  HZKodama T Shibuya M Takakura N Koh GYMochizuki  N. Differential function of Tie2 at cell-cell contacts and cell-substratum contacts regulated by angiopoietin-1. Nat Cell Biol 200810(5): 513–526

[64]

Yuan JFang  WLin A Ni ZQian  J. Angiopoietin-2/Tie2 signaling involved in TNF-a induced peritoneal angiogenesis. Int J Artif Organs 201235(9): 655–662

[65]

Zareie MHekking  LHWelten AG Driesprong BA Schadee-Eestermans IL Faict D Leyssens A Schalkwijk CG Beelen RH ter Wee PM van den Born J . Contribution of lactate buffer, glucose and glucose degradation products to peritoneal injury in vivo. Nephrol Dial Transplant 200318(12): 2629–2637

[66]

Xiao JGuo  JLiu XX Zhang XX Li ZZZhao  ZZLiu ZS . Soluble Tie2 fusion protein decreases peritoneal angiogenesis in uremic rats. Mol Med Rep 20138(1): 267–271

[67]

David SJohn  SGJefferies HJ Sigrist MK Kümpers P Kielstein JT Haller H McIntyre CW . Angiopoietin-2 levels predict mortality in CKD patients. Nephrol Dial Transplant 201227(5): 1867–1872

[68]

Raby ACColmont  CSKift-Morgan A Köhl J Eberl M Fraser D Topley N Labéta MO . Toll-like receptors 2 and 4 are potential therapeutic targets in peritoneal dialysis-associated fibrosis. J Am Soc Nephrol 201728(2): 461–478

[69]

Achek AYesudhas  DChoi S . Toll-like receptors: promising therapeutic targets for inflammatory diseases. Arch Pharm Res 201639(8): 1032–1049

[70]

Kushiyama TOda  TYamada M Higashi K Yamamoto K Oshima N Sakurai Y Miura S Kumagai H . Effects of liposome-encapsulated clodronate on chlorhexidine gluconate-induced peritoneal fibrosis in rats. Nephrol Dial Transplant 201126(10): 3143–3154

[71]

Bajo MADel Peso  GTeitelbaum I . Peritoneal membrane preservation. Semin Nephrol 201737(1): 77–92

[72]

Qayyum AOei  ELPaudel K Fan SL. Increasing the use of biocompatible, glucose-free peritoneal dialysis solutions. World J Nephrol 20154(1): 92–97

[73]

Pecoits-Filho RAraújo  MRLindholm B Stenvinkel P Abensur H Romão JE Jr Marcondes M De Oliveira AH Noronha IL . Plasma and dialysate IL-6 and VEGF concentrations are associated with high peritoneal solute transport rate. Nephrol Dial Transplant 200217(8): 1480–1486

[74]

Ferrantelli ELiappas  GVila Cuenca M Keuning ED Foster TL Vervloet MG Lopéz-Cabrera M Beelen RH . The dipeptide alanyl-glutamine ameliorates peritoneal fibrosis and attenuates IL-17 dependent pathways during peritoneal dialysis. Kidney Int 201689(3): 625–635

[75]

Bozkurt DSipahi  SCetin P Hur EOzdemir  OErtilav M Sen SDuman  S. Does immunosuppressive treatment ameliorate morphology changes in encapsulating peritoneal sclerosis? Perit Dial Int 200929(Suppl 2): S206–S210

[76]

Hur EBozkurt  DTimur O Bicak S Sarsik B Akcicek F Duman S . The effects of mycophenolate mofetil on encapsulated peritoneal sclerosis model in rats. Clin Nephrol 201277(1): 1–7

[77]

Takahashi STaniguchi  YNakashima A Arakawa T Kawai T Doi SIto  TMasaki T Kohno N Yorioka N . Mizoribine suppresses the progression of experimental peritoneal fibrosis in a rat model. Nephron, Exp Nephrol 2009112(2): e59–e69

[78]

Tapiawala SNBargman  JMOreopoulos DG Simons M . Prolonged use of the tyrosine kinase inhibitor in a peritoneal dialysis patient with metastatic renal cell carcinoma: possible beneficial effects on peritoneal membrane and peritonitis rates. Int Urol Nephrol 200941(2): 431–434

[79]

Bozkurt DSarsik  BHur E Ertilav M Karaca B Timur O Bicak S Akcicek F Duman S . A novel angiogenesis inhibitor, sunitinib malate, in encapsulating peritoneal sclerosis. J Nephrol 201124(3): 359–365

[80]

Loureiro JSchilte  MAguilera A Albar-Vizcaíno P Ramírez-Huesca M Pérez-Lozano ML González-Mateo G Aroeira LS Selgas R Mendoza L Ortiz A Ruíz-Ortega M van den Born J Beelen RH López-Cabrera M . BMP-7 blocks mesenchymal conversion of mesothelial cells and prevents peritoneal damage induced by dialysis fluid exposure. Nephrol Dial Transplant 201025(4): 1098–1108

[81]

Peng WDou  XHao W Zhou QTang  RNie J Lan HYYu  X. Smad7 gene transfer attenuates angiogenesis in peritoneal dialysis rats. Nephrology (Carlton) 201318(2): 138–147

[82]

Fabbrini PSchilte  MNZareie M ter Wee PM Keuning ED Beelen RH van den Born J . Celecoxib treatment reduces peritoneal fibrosis and angiogenesis and prevents ultrafiltration failure in experimental peritoneal dialysis. Nephrol Dial Transplant 200924(12): 3669–3676

[83]

Yoshio YMiyazaki  MAbe K Nishino T Furusu A Mizuta Y Harada T Ozono Y Koji TKohno  S. TNP-470, an angiogenesis inhibitor, suppresses the progression of peritoneal fibrosis in mouse experimental model. Kidney Int 200466(4): 1677–1685

[84]

Hekking LHZareie  MDriesprong BA Faict D Welten AG de Greeuw I Schadee-Eestermans IL Havenith CE van den Born J ter Wee PM Beelen RH . Better preservation of peritoneal morphologic features and defense in rats after long-term exposure to a bicarbonate/lactate-buffered solution. J Am Soc Nephrol 200112(12): 2775–2786

[85]

Johnson DWBrown  FGClarke M Boudville N Elias TJ Foo MWJones  BKulkarni H Langham R Ranganathan D Schollum J Suranyi MG Tan SHVoss  D; balANZ Trial Investigators. The effect of low glucose degradation product, neutral pH versus standard peritoneal dialysis solutions on peritoneal membrane function: the balANZ trial. Nephrol Dial Transplant 201227(12): 4445–4453

[86]

Seo EYAn  SHCho JH Suh HSPark  SHGwak H Kim YLHa  H. Effect of biocompatible peritoneal dialysis solution on residual renal function: a systematic review of randomized controlled trials. Perit Dial Int 201434(7): 724–731

[87]

Lin AQian  JLi X Yu XLiu  WSun Y Chen NMei  C; Icodextrin National Multi-center Cooperation Group.Randomized controlled trial of icodextrin versus glucose containing peritoneal dialysis fluid. Clin J Am Soc Nephrol 20094(11): 1799–1804

[88]

Takatori YAkagi  SSugiyama H Inoue J Kojo SMorinaga  HNakao K Wada JMakino  H. Icodextrin increases technique survival rate in peritoneal dialysis patients with diabetic nephropathy by improving body fluid management: a randomized controlled trial. Clin J Am Soc Nephrol 20116(6): 1337–1344

[89]

le Poole CYWelten  AGWeijmer MC Valentijn RM van Ittersum FJ ter Wee PM . Initiating CAPD with a regimen low in glucose and glucose degradation products, with icodextrin and amino acids (NEPP) is safe and efficacious. Perit Dial Int 200525(Suppl 3): S64–S68

[90]

del Peso GJiménez-Heffernan  JASelgas R Remón C Ossorio M Fernández-Perpén ASánchez-Tomero JACirugeda A de Sousa E Sandoval P Díaz R López-Cabrera M Bajo MA . Biocompatible dialysis solutions preserve peritoneal mesothelial cell and vessel wall integrity. a case-control study on human biopsies. Perit Dial Int 201636(2): 129–134

[91]

Washida NWakino  STonozuka Y Homma K Tokuyama H Hara YHasegawa  KMinakuchi H Fujimura K Hosoya K Hayashi K Itoh H. Rho-kinase inhibition ameliorates peritoneal fibrosis and angiogenesis in a rat model of peritoneal sclerosis. Nephrol Dial Transplant 201126(9): 2770–2779

[92]

Peng WZhou  QAo X Tang RXiao  Z. Inhibition of Rho-kinase alleviates peritoneal fibrosis and angiogenesis in a rat model of peritoneal dialysis. Ren Fail 201335(7): 958–966

[93]

Tanabe KMaeshima  YIchinose K Kitayama H Takazawa Y Hirokoshi K Kinomura M Sugiyama H Makino H . Endostatin peptide, an inhibitor of angiogenesis, prevents the progression of peritoneal sclerosis in a mouse experimental model. Kidney Int 200771(3): 227–238

[94]

Busnadiego OLoureiro-Álvarez  JSandoval P Lagares D Dotor J Pérez-Lozano ML López-Armada MJ Lamas S López-Cabrera M Rodríguez-Pascual F . A pathogenetic role for endothelin-1 in peritoneal dialysis-associated fibrosis. J Am Soc Nephrol 201526(1): 173–182

[95]

Pletinck AVan Landschoot  MSteppan S Laukens D Passlick-Deetjen J Vanholder R Van Biesen W . Oral supplementation with sulodexide inhibits neo-angiogenesis in a rat model of peritoneal perfusion. Nephrol Dial Transplant 201227(2): 548–556

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (263KB)

2934

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/