Non-genetic mechanisms of diabetic nephropathy

Qiuxia Han , Hanyu Zhu , Xiangmei Chen , Zhangsuo Liu

Front. Med. ›› 2017, Vol. 11 ›› Issue (3) : 319 -332.

PDF (403KB)
Front. Med. ›› 2017, Vol. 11 ›› Issue (3) : 319 -332. DOI: 10.1007/s11684-017-0569-9
REVIEW
REVIEW

Non-genetic mechanisms of diabetic nephropathy

Author information +
History +
PDF (403KB)

Abstract

Diabetic nephropathy (DN) is one of the most common microvascular complications in diabetes mellitus patients and is characterized by thickened glomerular basement membrane, increased extracellular matrix formation, and podocyte loss. These phenomena lead to proteinuria and altered glomerular filtration rate, that is, the rate initially increases but progressively decreases. DN has become the leading cause of end-stage renal disease. Its prevalence shows a rapid growth trend and causes heavy social and economic burden in many countries. However, this disease is multifactorial, and its mechanism is poorly understood due to the complex pathogenesis of DN. In this review, we highlight the new molecular insights about the pathogenesis of DN from the aspects of immune inflammation response, epithelial–mesenchymal transition, apoptosis and mitochondrial damage, epigenetics, and podocyte–endothelial communication. This work offers groundwork for understanding the initiation and progression of DN, as well as provides ideas for developing new prevention and treatment measures.

Keywords

diabetic nephropathy / immune inflammatory response / epithelial–mesenchymal transition / apoptosis / mitochondrial damage / epigenetics / podocyte–endothelial communication

Cite this article

Download citation ▾
Qiuxia Han, Hanyu Zhu, Xiangmei Chen, Zhangsuo Liu. Non-genetic mechanisms of diabetic nephropathy. Front. Med., 2017, 11(3): 319-332 DOI:10.1007/s11684-017-0569-9

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Kanwar YSSun  LXie P Liu FYChen  S. A glimpse of various pathogenetic mechanisms of diabetic nephropathy. Annu Rev Pathol 20116(1): 395–423

[2]

Reddy MATak Park  JNatarajan R . Epigenetic modifications in the pathogenesis of diabetic nephropathy. Semin Nephrol 201333(4): 341–353

[3]

Haider DGPeric  SFriedl A Fuhrmann V Wolzt M Hörl WH Soleiman A . Kidney biopsy in patients with diabetes mellitus. Clin Nephrol 201176(3): 180–185

[4]

Tervaert TWMooyaart  ALAmann K Cohen AH Cook HT Drachenberg CB Ferrario F Fogo AB Haas Mde Heer  EJoh K Noël LH Radhakrishnan J Seshan SV Bajema IM Bruijn JA; Renal Pathology Society. Pathologic classification of diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol 201021(4): 556–563

[5]

Zhang LLong  JJiang W Shi YHe  XZhou Z Li YYeung  ROWang J Matsushita K Coresh J Zhao MH Wang H. Trends in chronic kidney disease in China. N Engl J Med 2016375(9): 905–906

[6]

Duran-Salgado MBRubio-Guerra  AF. Diabetic nephropathy and inflammation. World J Diabetes 20145(3): 393–398

[7]

Kanasaki KTaduri  GKoya D . Diabetic nephropathy: the role of inflammation in fibroblast activation and kidney fibrosis. Front Endocrinol (Lausanne) 20134: 7

[8]

Liu FGuo  JZhang Q Liu DWen  LYang Y Yang LLiu  Z. The expression of tristetraprolin and its relationship with urinary proteins in patients with diabetic nephropathy. PLoS One 201510(10): e0141471

[9]

Sun LKanwar  YS. Relevance of TNF-α in the context of other inflammatory cytokines in the progression of diabetic nephropathy. Kidney Int 201588(4): 662–665

[10]

Wada JMakino  H. Inflammation and the pathogenesis of diabetic nephropathy. Clin Sci (Lond) 2013124(3): 139–152

[11]

da Silva Cristino Cordeiro Vde Bem GF da Costa CA Santos IB de Carvalho LC Ognibene DT da Rocha AP de Carvalho JJ de Moura RS Resende AC Euterpe oleracea Mart. seed extract protects against renal injury in diabetic and spontaneously hypertensive rats: role of inflammation and oxidative stress.  Eur J Nutr2017 Jan 20. [Epub ahead of print] 160;doi: 10.1007/s00394-016-1371-1

[12]

Barutta FBruno  GGrimaldi S Gruden G . Inflammation in diabetic nephropathy: moving toward clinical biomarkers and targets for treatment. Endocrine 201548(3): 730–742

[13]

Pichler RAfkarian  MDieter BP Tuttle KR . Immunity and inflammation in diabetic kidney disease: translating mechanisms to biomarkers and treatment targets. Am J Physiol Renal Physiol 2017312(4): F716–F731

[14]

Mudaliar HPollock  CPanchapakesan U . Role of Toll-like receptors in diabetic nephropathy. Clin Sci (Lond) 2014126(10): 685–694

[15]

Xu XXQi  XMZhang W Zhang CQ Wu XXWu  YGWang K Shen JJ . Effects of total glucosides of paeony on immune regulatory toll-like receptors TLR2 and 4 in the kidney from diabetic rats. Phytomedicine 201421(6): 815–823

[16]

Jheng HFTsai  PJChuang YL Shen YT Tai TAChen  WCChou CK Ho LCTang  MJLai KT Sung JM Tsai YS . Albumin stimulates renal tubular inflammation through an HSP70-TLR4 axis in mice with early diabetic nephropathy. Dis Model Mech 20158(10): 1311–1321

[17]

Lopez-Parra VMallavia  BLopez-Franco O Ortiz-Muñoz G Oguiza A Recio C Blanco J Nimmerjahn F Egido J Gomez-Guerrero C . Fcg receptor deficiency attenuates diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol 201223(9): 1518–1527

[18]

Herrera MSöderberg  MSabirsh A Valastro B Mölne J Santamaria B Valverde AM Guionaud S Heasman S Bigley A Jermutus L Rondinone C Coghlan M Baker D Quinn CM . Inhibition of T-cell activation by the CTLA4-Fc Abatacept is sufficient to ameliorate proteinuric kidney disease. Am J Physiol Renal Physiol 2017312(4): F748–F759

[19]

Hu ZZhou  QZhang C Fan SCheng  WZhao Y Shao FWang  HWSui SF Chai J. Structural and biochemical basis for induced self-propagation of NLRC4. Science 2015350(6259): 399–404

[20]

Shi JXLi  JSHu R Shi YSu  XLi Q Zhang F . CNOT7/hCAF1 is involved in ICAM-1 and IL-8 regulation by tristetraprolin. Cell Signal 201426(11): 2390–2396

[21]

Gaba AGrivennikov  SIDo MV Stumpo DJ Blackshear PJ Karin M . Cutting edge: IL-10-mediated tristetraprolin induction is part of a feedback loop that controls macrophage STAT3 activation and cytokine production. J Immunol 2012189(5): 2089–2093

[22]

Lee HHYoon  NAVo MT Kim CWWoo  JMCha HJ Cho YWLee  BJCho WJ Park JW . Tristetraprolin down-regulates IL-17 through mRNA destabilization. FEBS Lett 2012586(1): 41–46

[23]

Molle CZhang  TYsebrant de Lendonck  LGueydan C Andrianne M Sherer F Van Simaeys G Blackshear PJ Leo OGoriely  S. Tristetraprolin regulation of interleukin 23 mRNA stability prevents a spontaneous inflammatory disease. J Exp Med 2013210(9): 1675–1684

[24]

Shi JXSu  XXu J Zhang WY Shi Y. HuR post-transcriptionally regulates TNF-α-induced IL-6 expression in human pulmonary microvascular endothelial cells mainly via tristetraprolin. Respir Physiol Neurobiol 2012181(2): 154–161

[25]

Chen XWei  ZWang W Yan RXu  XCai Q . Role of RNA-binding protein tristetraprolin in tumor necrosis factor-α mediated gene expression. Biochem Biophys Res Commun 2012428(3): 327–332

[26]

Schichl YMResch  UHofer-Warbinek R de Martin R . Tristetraprolin impairs NF-κB/p65 nuclear translocation. J Biol Chem 2009284(43): 29571–29581

[27]

Liang JLei  TSong Y Yanes N Qi YFu  M. RNA-destabilizing factor tristetraprolin negatively regulates NF-κB signaling. J Biol Chem 2009284(43): 29383–29390160;

[28]

Yang MYang  BOGan H Li XXu  JYu J Gao LLi  F. Anti-inflammatory effect of 1,25-dihydroxyvitamin D3 is associated with crosstalk between signal transducer and activator of transcription 5 and the vitamin D receptor in human monocytes. Exp Ther Med 20159(5): 1739–1744

[29]

Zhang XZhou  MGuo Y Zhou Y. 1,25-Dihydroxyvitamin D(3) promotes high glucose-induced M1 macrophage switching to M2 via the VDR-PPARγ signaling pathway. Biomed Res Int 20152015:157834

[30]

Toffoli BGilardi  FWinkler C Soderberg M Kowalczuk L Arsenijevic Y Bamberg K Bonny O Desvergne B . Nephropathy in Pparg-null mice highlights PPARg systemic activities in metabolism and in the immune system. PLoS One 201712(2): e0171474

[31]

Wang YBorchert  MLDeluca HF . Identification of the vitamin D receptor in various cells of the mouse kidney. Kidney Int 201281(10): 993–1001

[32]

Xie XLi  ZPi M Wu JZeng  WZuo L Zha Y. Down-regulation of p38 MAPK and collagen by 1, 25-(OH)2-VD3 in rat models of diabetic nephropathy. Chin J Cellular Mol Immunol (Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi) 201632(7): 931–935 (in Chinese)160;

[33]

Guan XYang  HZhang W Wang HLiao  L. Vitamin D receptor and its protective role in diabetic nephropathy. Chin Med J (Engl) 2014127(2): 365–369

[34]

Yang MXu  JYu J Yang BGan  HLi S Li X. Anti-inflammatory effects of 1,25-dihydroxyvitamin D3 in monocytes cultured in serum from patients with type 2 diabetes mellitus and diabetic nephropathy with uremia via Toll-like receptor 4 and nuclear factor-kB p65. Mol Med Rep 201512(6): 8215–8222 

[35]

Flyvbjerg A. Diabetic angiopathy, the complement system and the tumor necrosis factor superfamily. Nat Rev Endocrinol 20106(2): 94–101

[36]

Niculescu FRus  H. The role of complement activation in atherosclerosis. Immunol Res 200430(1): 73–80

[37]

Østergaard J Thiel S Gadjeva M Hansen TK Rasch R Flyvbjerg A . Mannose-binding lectin deficiency attenuates renal changes in a streptozotocin-induced model of type 1 diabetes in mice. Diabetologia 200750(7): 1541–1549

[38]

Ostergaard J A Ruseva M M Malik T H . Increased autoreactivity of the complement-activating molecule mannan-binding lectin in a type 1 diabetes model. J Diabetes Res 20162016:1825738

[39]

Østergaard JA Thiel S Hovind P Holt CB Parving HH Flyvbjerg A Rossing P Hansen TK . Association of the pattern recognition molecule H-ficolin with incident microalbuminuria in an inception cohort of newly diagnosed type 1 diabetic patients: an 18 year follow-up study. Diabetologia 201457(10): 2201–2207

[40]

Jenny LAjjan  RKing R Thiel S Schroeder V . Plasma levels of mannan-binding lectin-associated serine proteases MASP-1 and MASP-2 are elevated in type 1 diabetes and correlate with glycaemic control. Clin Exp Immunol 2015180(2): 227–232

[41]

Yang LBrozovic  SXu J Long YKralik  PMWaigel S Zacharias W Zheng S Epstein PN . Inflammatory gene expression in OVE26 diabetic kidney during the development of nephropathy. Nephron, Exp Nephrol 2011119(1): e8–e20

[42]

Uesugi NSakata  NNangaku M Abe MHoriuchi  SHisano S Iwasaki H . Possible mechanism for medial smooth muscle cell injury in diabetic nephropathy: glycoxidation-mediated local complement activation. Am J Kidney Dis 200444(2): 224–238

[43]

Fortpied JVertommen  DVan Schaftingen E. Binding of mannose-binding lectin to fructosamines: a potential link between hyperglycaemia and complement activation in diabetes. Diabetes Metab Res Rev 201026(4): 254–260

[44]

Qin XGoldfine  AKrumrei N Grubissich L Acosta J Chorev M Hays AP Halperin JA . Glycation inactivation of the complement regulatory protein CD59: a possible role in the pathogenesis of the vascular complications of human diabetes. Diabetes 200453(10): 2653–2661

[45]

Acosta JHettinga  JFlückiger R Krumrei N Goldfine A Angarita L Halperin J . Molecular basis for a link between complement and the vascular complications of diabetes. Proc Natl Acad Sci USA 200097(10): 5450–5455

[46]

Maki TMaeda  YSonoda N Makimura H Kimura S Maeno S Takayanagi R Inoguchi T . Renoprotective effect of a novel selective PPARα modulator K-877 in db/db mice: a role of diacylglycerol-protein kinase C-NAD(P)H oxidase pathway. Metabolism 201771: 33–45

[47]

Quadri SSCulver  SALi C Siragy HM . Interaction of the renin angiotensin and cox systems in the kidney. Front Biosci (Schol Ed) 20168(2): 215–226

[48]

Kawanami DMatoba  KUtsunomiya K . Signaling pathways in diabetic nephropathy. Histol Histopathol 201631(10): 1059– 1067

[49]

Loeffler IWolf  G. Epithelial-to-mesenchymal transition in diabetic nephropathy: fact or fiction? Cells 20154(4): 631–652

[50]

Mason RMWahab  NA. Extracellular matrix metabolism in diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol 200314(5): 1358–1373

[51]

Yamaguchi YIwano  MSuzuki D Nakatani K Kimura K Harada K Kubo AAkai  YToyoda M Kanauchi M Neilson EG Saito Y . Epithelial-mesenchymal transition as a potential explanation for podocyte depletion in diabetic nephropathy. Am J Kidney Dis 200954(4): 653–664

[52]

Anil Kumar PWelsh  GISaleem MA Menon RK . Molecular and cellular events mediating glomerular podocyte dysfunction and depletion in diabetes mellitus. Front Endocrinol (Lausanne) 20145: 151

[53]

Guo JXia  NYang L Zhou SZhang  QQiao Y Liu Z. GSK-3β and vitamin D receptor are involved in β-catenin and snail signaling in high glucose-induced epithelial-mesenchymal transition of mouse podocytes. Cell Physiol Biochem 201433(4): 1087–1096

[54]

Wan JLi  PLiu DW Chen YMo  HZLiu BG Chen WJ Lu XQGuo  JZhang Q Qiao YJ Liu ZSWan  GR. GSK-3β inhibitor attenuates urinary albumin excretion in type 2 diabetic db/db mice, and delays epithelial-to-mesenchymal transition in mouse kidneys and podocytes. Mol Med Rep 201614(2): 1771–1784

[55]

Zhou SWang  PQiao Y Ge YWang  YQuan S Yao RZhuang  SWang LJ Du YLiu  ZGong R . Genetic and pharmacologic targeting of glycogen synthase kinase 3β reinforces the Nrf2 antioxidant defense against podocytopathy. J Am Soc Nephrol 201627(8): 2289–2308

[56]

Dai HZhang  YYuan L Wu JMa  LShi H . CTGF mediates high-glucose induced epithelial-mesenchymal transition through activation of β-catenin in podocytes. Ren Fail 201638(10): 1711–1716160;

[57]

Lv ZHu  MZhen J Lin JWang  QWang R . Rac1/PAK1 signaling promotes epithelial-mesenchymal transition of podocytes in vitro via triggering β-catenin transcriptional activity under high glucose conditions. Int J Biochem Cell Biol 201345(2): 255–264

[58]

Li GLi  CXXia M Ritter JK Gehr TW Boini K Li PL. Enhanced epithelial-to-mesenchymal transition associated with lysosome dysfunction in podocytes: role of p62/Sequestosome 1 as a signaling hub. Cell Physiol Biochem 201535(5): 1773–1786

[59]

Okamura DMPennathur  SPasichnyk K López-Guisa JM Collins S Febbraio M Heinecke J Eddy AA . CD36 regulates oxidative stress and inflammation in hypercholesterolemic CKD. J Am Soc Nephrol 200920(3): 495–505

[60]

Hou YWu  MWei J Ren YDu  CWu H Li YShi  Y. CD36 is involved in high glucose-induced epithelial to mesenchymal transition in renal tubular epithelial cells. Biochem Biophys Res Commun 2015468(1-2): 281–286

[61]

Tang WBLing  GHSun L Zhang K Zhu XZhou  XLiu FY . Smad anchor for receptor activation regulates high glucose-induced EMT via modulation of Smad2 and Smad3 activities in renal tubular epithelial cells. Nephron 2015130(3): 213–220

[62]

Huang HZheng  FDong X Wu FWu  TLi H . Allicin inhibits tubular epithelial-myofibroblast transdifferentiation under high glucose conditions in vitro. Exp Ther Med 201713(1): 254–262

[63]

Duan SBLiu  GLWang YH Zhang JJ . Epithelial-to-mesenchymal transdifferentiation of renal tubular epithelial cell mediated by oxidative stress and intervention effect of probucol in diabetic nephropathy rats. Ren Fail 201234(10): 1244–1251

[64]

Pang XXBai  QWu F Chen GJ Zhang AH Tang CS . Urotensin II induces ER stress and EMT and increase extracellular matrix production in renal tubular epithelial cell in early diabetic mice. Kidney Blood Press Res 201641(4): 434–449

[65]

Qi WMu  JLuo ZF Zeng WGuo  YHPang Q Ye ZLLiu  LYuan FH Feng B. Attenuation of diabetic nephropathy in diabetes rats induced by streptozotocin by regulating the endoplasmic reticulum stress inflammatory response. Metabolism 201160(5): 594–603

[66]

Inagi RIshimoto  YNangaku M . Proteostasis in endoplasmic reticulum—new mechanisms in kidney disease. Nat Rev Nephrol 201410(7): 369–378

[67]

Cao ALWang  LChen X Wang YM Guo HJChu  SLiu C Zhang XM Peng W. Ursodeoxycholic acid and 4-phenylbutyrate prevent endoplasmic reticulum stress-induced podocyte apoptosis in diabetic nephropathy. Lab Invest 201696(6): 610–622

[68]

Fu SYang  LLi P Hofmann O Dicker L Hide WLin  XWatkins SM Ivanov AR Hotamisligil GS . Aberrant lipid metabolism disrupts calcium homeostasis causing liver endoplasmic reticulum stress in obesity. Nature 2011473(7348): 528–531

[69]

Kang SDahl  RHsieh W Shin AZsebo  KMBuettner C Hajjar RJ Lebeche D . Small molecular allosteric activator of the Sarco/endoplasmic reticulum Ca2+-ATPase (SERCA) attenuates diabetes and metabolic disorders. J Biol Chem 2016291(10): 5185–5198

[70]

Guo HCao  AChu S Wang YZang  YMao X Wang HWang  YLiu C Zhang X Peng W. Astragaloside IV attenuates podocyte apoptosis mediated by endoplasmic reticulum stress through upregulating Sarco/endoplasmic reticulum Ca(2+)-ATPase 2 expression in diabetic nephropathy. Front Pharmacol 20167: 500

[71]

Parys JBDe Smedt  H. Inositol 1,4,5-trisphosphate and its receptors. Adv Exp Med Biol 2012740: 255–279

[72]

Foskett JKWhite  CCheung KH Mak DO. Inositol trisphosphate receptor Ca2+ release channels. Physiol Rev 200787(2): 593–658

[73]

Fedorenko OAPopugaeva  EEnomoto M Stathopulos PB Ikura M Bezprozvanny I . Intracellular calcium channels: inositol-1,4,5-trisphosphate receptors. Eur J Pharmacol 2014739: 39–48

[74]

Mikoshiba K. Role of IP3 receptor signaling in cell functions and diseases. Adv Biol Regul 201557: 217–227

[75]

Amador FJStathopulos  PBEnomoto M Ikura M . Ryanodine receptor calcium release channels: lessons from structure-function studies. FEBS J 2013280(21): 5456–5470

[76]

Lanner JT. Ryanodine receptor physiology and its role in disease. Adv Exp Med Biol 2012740: 217–234

[77]

Van Petegem F . Ryanodine receptors: allosteric ion channel giants. J Mol Biol 2015427(1): 31–53

[78]

Distelhorst CWBootman  MD. Bcl-2 interaction with the inositol 1,4,5-trisphosphate receptor: role in Ca(2+) signaling and disease. Cell Calcium 201150(3): 234–241

[79]

Kar PMirams  GRChristian HC Parekh AB . Control of NFAT isoform activation and NFAT-dependent gene expression through two coincident and spatially segregated intracellular Ca(2+) signals. Mol Cell 201664(4): 746–759

[80]

Ivanova HVervliet  TMissiaen L Parys JB De Smedt H Bultynck G . Inositol 1,4,5-trisphosphate receptor-isoform diversity in cell death and survival. Biochim Biophys Acta 20141843(10): 2164–2183

[81]

Yasuda MTanaka  YKume S Morita Y Chin-Kanasaki M Araki H Isshiki K Araki S Koya DHaneda  MKashiwagi A Maegawa H Uzu T. Fatty acids are novel nutrient factors to regulate mTORC1 lysosomal localization and apoptosis in podocytes. Biochim Biophys Acta 20141842(7): 1097–1108

[82]

Xu SNam  SMKim JH Das RChoi  SKNguyen TT Quan XChoi  SJChung CH Lee EYLee  IKWiederkehr A Wollheim CB Cha SKPark  KS. Palmitate induces ER calcium depletion and apoptosis in mouse podocytes subsequent to mitochondrial oxidative stress. Cell Death Dis 20156(11): e1976

[83]

Yuan ZCao  ALiu H Guo HZang  YWang Y Wang YWang  HYin P Peng W. Calcium uptake via mitochondrial uniporter contributes to palmitic acid-induced apoptosis in mouse podocytes. J Cell Biochem 2017 Feb 9. [Epub ahead of print] doi: 10.1002/jcb.25930 

[84]

Tunçdemir M Öztürk M . Regulation of the Ku70 and apoptosis-related proteins in experimental diabetic nephropathy. Metabolism 201665(10): 1466–1477

[85]

Noriega-Cisneros R Cortés-Rojo C Manzo-Avalos S Clemente-Guerrero M Calderón-Cortés E Salgado-Garciglia R Montoya-Pérez R Boldogh I Saavedra-Molina A . Mitochondrial response to oxidative and nitrosative stress in early stages of diabetes. Mitochondrion 201313(6): 835–840

[86]

Pollock JSPollock  DM. Endothelin, nitric oxide, and reactive oxygen species in diabetic kidney disease. Contrib Nephrol 2011172: 149–159

[87]

Gill PSWilcox  CS. NADPH oxidases in the kidney. Antioxid Redox Signal 20068(9-10): 1597–1607

[88]

Nistala RWhaley-Connell  ASowers JR . Redox control of renal function and hypertension. Antioxid Redox Signal 200810(12): 2047–2089

[89]

Sedeek MCallera  GMontezano A Gutsol A Heitz F Szyndralewiez C Page PKennedy  CRBurns KD Touyz RM Hébert RL . Critical role of Nox4-based NADPH oxidase in glucose-induced oxidative stress in the kidney: implications in type 2 diabetic nephropathy. Am J Physiol Renal Physiol 2010299(6): F1348–F1358

[90]

Sedeek MNasrallah  RTouyz RM Hébert RL . NADPH oxidases, reactive oxygen species, and the kidney: friend and foe. J Am Soc Nephrol 201324(10): 1512–1518

[91]

Westermann B. Mitochondrial fusion and fission in cell life and death. Nat Rev Mol Cell Biol 201011(12): 872–884

[92]

Wang WWang  YLong J Wang JHaudek  SBOverbeek P Chang BH Schumacker PT Danesh FR . Mitochondrial fission triggered by hyperglycemia is mediated by ROCK1 activation in podocytes and endothelial cells. Cell Metab 201215(2): 186–200

[93]

Liu DXu  MDing LH Lv LLLiu  HMa KL Zhang AH Crowley SD Liu BC. Activation of the Nlrp3 inflammasome by mitochondrial reactive oxygen species: a novel mechanism of albumin-induced tubulointerstitial inflammation. Int J Biochem Cell Biol 201457: 7–19

[94]

Zhuang YYasinta  MHu C Zhao MDing  GBai M Yang LNi  JWang R Jia ZHuang  SZhang A . Mitochondrial dysfunction confers albumin-induced NLRP3 inflammasome activation and renal tubular injury. Am J Physiol Renal Physiol 2015308(8): F857–F866

[95]

Zhuang YDing  GZhao M Bai MYang  LNi J Wang RJia  ZHuang S Zhang A . NLRP3 inflammasome mediates albumin-induced renal tubular injury through impaired mitochondrial function. J Biol Chem 2014289(36): 25101–25111

[96]

Xiao LZhu  XYang S Liu FZhou  ZZhan M Xie PZhang  DLi J Song PKanwar  YSSun L . Rap1 ameliorates renal tubular injury in diabetic nephropathy. Diabetes 201463(4): 1366–1380

[97]

Wu LWang  QGuo F Ma XJi  HLiu F Zhao YQin  G. MicroRNA-27a induces mesangial cell injury by targeting of PPARg, and its in vivo knockdown prevents progression of diabetic nephropathy. Sci Rep 20166(1): 26072

[98]

He FPeng  FXia X Zhao CLuo  QGuan W Li ZYu  XHuang F . miR-135a promotes renal fibrosis in diabetic nephropathy by regulating TRPC1. Diabetologia 201457(8): 1726–1736

[99]

McClelland ADHerman-Edelstein  MKomers R Jha JCWinbanks  CEHagiwara S Gregorevic P Kantharidis P Cooper ME . miR-21 promotes renal fibrosis in diabetic nephropathy by targeting PTEN and SMAD7. Clin Sci (Lond) 2015129(12): 1237–1249

[100]

Huang YLiu  YLi L Su BYang  LFan W Yin QChen  LCui T Zhang J Lu YCheng  JFu P Liu F. Involvement of inflammation-related miR-155 and miR-146a in diabetic nephropathy: implications for glomerular endothelial injury. BMC Nephrol 201415(1): 142

[101]

Meng SCao  JTZhang B Zhou QShen  CXWang CQ . Downregulation of microRNA-126 in endothelial progenitor cells from diabetes patients, impairs their functional properties, via target gene Spred-1. J Mol Cell Cardiol 201253(1): 64–72

[102]

Xiao JLiu  DJiao W Guo JWang  XZhang X Lu SZhao  Z. Effects of microRNA-346 on epithelial-mesenchymal transition in mouse podocytes. Gene 2015560(2): 195–199

[103]

Zhang YXiao  HQWang Y Yang ZS Dai LJXu  YC. Differential expression and therapeutic efficacy of microRNA-346 in diabetic nephropathy mice. Exp Ther Med 201510(1): 106–112

[104]

Puthanveetil PChen  SFeng B Gautam A Chakrabarti S . Long non-coding RNA MALAT1 regulates hyperglycaemia induced inflammatory process in the endothelial cells. J Cell Mol Med 201519(6): 1418–1425

[105]

Alvarez MLKhosroheidari  MEddy E Kiefer J . Role of microRNA 1207-5P and its host gene, the long non-coding RNA Pvt1, as mediators of extracellular matrix accumulation in the kidney: implications for diabetic nephropathy. PLoS One 20138(10): e77468

[106]

Alvarez MLDiStefano  JK. Functional characterization of the plasmacytoma variant translocation 1 gene (PVT1) in diabetic nephropathy. PLoS One 20116(4): e18671

[107]

Sapienza CLee  JPowell J Erinle O Yafai F Reichert J Siraj ES Madaio M . DNA methylation profiling identifies epigenetic differences between diabetes patients with ESRD and diabetes patients without nephropathy. Epigenetics 20116(1): 20–28

[108]

Li XLi  CSun G. Histone acetylation and its modifiers in the pathogenesis of diabetic nephropathy. J Diabetes Res 20162016:4065382

[109]

Sun G DCui  W PGuo  Q YMu  X. Histone lysine methylation in diabetic nephropathy. J Diabetes Res 20142014:654148

[110]

Gao CChen  GLiu L Dong RW . Impact of high glucose and proteasome inhibitor MG132 on histone H2A and H2B ubiquitination in rat glomerular mesangial cells. 20132013, 589474

[111]

Badal SSWang  YLong J Corcoran DL Chang BH Truong LD Kanwar YS Overbeek PA Danesh FR . miR-93 regulates Msk2-mediated chromatin remodelling in diabetic nephropathy. Nat Commun 20167: 12076

[112]

Hale LJHurcombe  JLay A Santamaría B Valverde AM Saleem MA Mathieson PW Welsh GI Coward RJ . Insulin directly stimulates VEGF-A production in the glomerular podocyte. Am J Physiol Renal Physiol 2013305(2): F182–F188

[113]

Gnudi LBenedetti  SWoolf AS Long DA . Vascular growth factors play critical roles in kidney glomeruli. Clin Sci (Lond) 2015129(12): 1225–1236

[114]

Singh ARamnath  RDFoster RR Wylie EC Fridén V Dasgupta I Haraldsson B Welsh GI Mathieson PW Satchell SC . Reactive oxygen species modulate the barrier function of the human glomerular endothelial glycocalyx. PLoS One 20138(2):  e55852

[115]

Singh AFridén  VDasgupta I Foster RR Welsh GI Tooke JE Haraldsson B Mathieson PW Satchell SC . High glucose causes dysfunction of the human glomerular endothelial glycocalyx. Am J Physiol Renal Physiol 2011300(1): F40–F48

[116]

Salmon AHFerguson  JKBurford JL Gevorgyan H Nakano D Harper SJ Bates DO Peti-Peterdi J . Loss of the endothelial glycocalyx links albuminuria and vascular dysfunction. J Am Soc Nephrol 201223(8): 1339–1350

[117]

Gnudi LCoward  RJLong DA . Diabetic nephropathy: perspective on novel molecular mechanisms. Trends Endocrinol Metab 201627(11): 820–830

[118]

Oltean SQiu  YFerguson JK Stevens M Neal CRussell  AKaura A Arkill KP Harris K Symonds C Lacey K Wijeyaratne L Gammons M Wylie E Hulse RP Alsop C Cope GDamodaran  GBetteridge KB Ramnath R Satchell SC Foster RR Ballmer-Hofer K Donaldson LF Barratt J Baelde HJ Harper SJ Bates DO Salmon AH . Vascular endothelial growth factor-A165b is protective and restores endothelial glycocalyx in diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol 201526(8): 1889–1904

[119]

Garsen MLenoir  ORops AL Dijkman HB Willemsen B van Kuppevelt TH Rabelink TJ Berden JH Tharaux PL van der Vlag J . Endothelin-1 induces proteinuria by heparanase-mediated disruption of the glomerular glycocalyx. J Am Soc Nephrol 201627(12): 3545–3551

[120]

de Zeeuw DColl  BAndress D Brennan JJ Tang HHouser  MCorrea-Rotter R Kohan D Lambers Heerspink HJ Makino H Perkovic V Pritchett Y Remuzzi G Tobe SW Toto RViberti  GParving HH . The endothelin antagonist atrasentan lowers residual albuminuria in patients with type 2 diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol 201425(5): 1083–1093

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (403KB)

2238

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/