REVIEW ARTICLE

Functional ferritin nanoparticles for biomedical applications

  • Zhantong Wang 1,2 ,
  • Haiyan Gao 1 ,
  • Yang Zhang 1 ,
  • Gang Liu , 1 ,
  • Gang Niu 2 ,
  • Xiaoyuan Chen , 2
Expand
  • 1. State Key Laboratory of Molecular Vaccinology and Molecular Diagnostics & Center for Molecular Imaging and Translational Medicine, School of Public Health, Xiamen University, Xiamen 361102, China
  • 2. Laboratory of Molecular Imaging and Nanomedicine (LOMIN), National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering (NIBIB), National Institutes of Health, Bethesda, MD 20892, USA

Received date: 27 Sep 2016

Accepted date: 13 Nov 2016

Published date: 06 Nov 2017

Copyright

2017 Higher Education Press and Springer-Verlag GmbH Germany

Abstract

Ferritin, a major iron storage protein with a hollow interior cavity, has been reported recently to play many important roles in biomedical and bioengineering applications. Owing to the unique architecture and surface properties, ferritin nanoparticles offer favorable characteristics and can be either genetically or chemically modified to impart functionalities to their surfaces, and therapeutics or probes can be encapsulated in their interiors by controlled and reversible assembly/disassembly. There has been an outburst of interest regarding the employment of functional ferritin nanoparticles in nanomedicine. This review will highlight the recent advances in ferritin nanoparticles for drug delivery, bioassay, and molecular imaging with a particular focus on their biomedical applications.

Cite this article

Zhantong Wang , Haiyan Gao , Yang Zhang , Gang Liu , Gang Niu , Xiaoyuan Chen . Functional ferritin nanoparticles for biomedical applications[J]. Frontiers of Chemical Science and Engineering, 2017 , 11(4) : 633 -646 . DOI: 10.1007/s11705-017-1620-8

Acknowledgments

This work was supported by the Major State Basic Research Development Program of China (973 Program) (Grant Nos. 2014CB744503 and 2013CB733802), the National Natural Science Foundation of China (NSFC) (Grant Nos. 81422023, 81371596, 51273165, and U1505221), the Fundamental Research Funds for the Central Universities (Grant Nos. 20720160065 and 20720150141), the Science Foundation of Fujian Province (No. 2014Y2004), and the Program for New Century Excellent Talents in University, China (NCET-13-0502), and the Intramural Research Program (IRP), National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering (NIBIB), National Institutes of Health (NIH). Dr. Zhantong Wang was particially funded by the China Scholarship Council (CSC).

Conflicts of Interest

The authors declare no competing financial interest.
1
Worwood M, Cook J D. Serum ferritin. Critical Reviews in Clinical Laboratory Sciences, 1979, 10(2): 171–204

DOI

2
Meldrum F C, Heywood B R, Mann S. Magnetoferritin: In vitro synthesis of a novel magnetic protein. Science, 1992, 257(5069): 522–523

DOI

3
Zeth K, Hoiczyk E, Okuda M. Ferroxidase-mediated iron oxide biomineralization: Novel pathways to multifunctional nanoparticles. Trends in Biochemical Sciences, 2016, 41(2): 190–203

DOI

4
Chasteen N D, Harrison P M. Mineralization in ferritin: An efficient means of iron storage. Journal of Structural Biology, 1999, 126(3): 182–194

DOI

5
Uchida M, Kang S, Reichhardt C, Harlen K, Douglas T. The ferritin superfamily: Supramolecular templates for materials synthesis. Biochimica et Biophysica Acta, 2010, 1800(8): 834–845

DOI

6
Bulte J W, Douglas T, Mann S, Frankel R B, Moskowitz B M, Brooks R A, Baumgarner C D, Vymazal J, Strub M P, Frank J A. Magnetoferritin: Characterization of a novel superparamagnetic MR contrast agent. Journal of Magnetic Resonance Imaging, 1994, 4(3): 497–505

DOI

7
Uchida M, Flenniken M L, Allen M, Willits D A, Crowley B E, Brumfield S, Willis A F, Jackiw L, Jutila M, Young M J, Douglas T. Targeting of cancer cells with ferrimagnetic ferritin cage nanoparticles. Journal of the American Chemical Society, 2006, 128(51): 16626–16633

DOI

8
Okuda M, Iwahori K, Yamashita I, Yoshimura H. Fabrication of nickel and chromium nanoparticles using the protein cage of apoferritin. Biotechnology and Bioengineering, 2003, 84(2): 187–194

DOI

9
Galvez N, Sanchez P, Dominguez-Vera J M. Preparation of Cu and CuFe prussian blue derivative nanoparticles using the apoferritin cavity as nanoreactor. Dalton Transactions (Cambridge, England), 2005, 15(15): 2492–2494

DOI

10
Jeong G H, Yamazaki A, Suzuki S, Yoshimura H, Kobayashi Y, Homma Y. Cobalt-filled apoferritin for suspended single-walled carbon nanotube growth with narrow diameter distribution. Journal of the American Chemical Society, 2005, 127(23): 8238–8239

DOI

11
Fan R, Chew S W, Cheong V V, Orner B P. Fabrication of gold nanoparticles inside unmodified horse spleen apoferritin. Small, 2010, 6(14): 1483–1487

DOI

12
Zhen Z, Tang W, Chen H, Lin X, Todd T, Wang G, Cowger T, Chen X, Xie J. RGD-modified apoferritin nanoparticles for efficient drug delivery to tumors. ACS Nano, 2013, 7(6): 4830–4837

DOI

13
Zhen Z, Tang W, Guo C, Chen H, Lin X, Liu G, Fei B, Chen X, Xu B, Xie J. Ferritin nanocages to encapsulate and deliver photosensitizers for efficient photodynamic therapy against cancer. ACS Nano, 2013, 7(8): 6988–6996

DOI

14
Tian Y, Yan X, Saha M L, Niu Z, Stang P J. Hierarchical self-assembly of responsive organoplatinum(ii) metallacycle-TMV complexes with turn-on fluorescence. Journal of the American Chemical Society, 2016, 138(37): 12033–12036

DOI

15
Harrison P M, Arosio P. The ferritins: Molecular properties, iron storage function and cellular regulation. Biochimica et Biophysica Acta, 1996, 1275(3): 161–203

DOI

16
Lin X, Xie J, Niu G, Zhang F, Gao H, Yang M, Quan Q, Aronova M A, Zhang G, Lee S, et al. Chimeric ferritin nanocages for multiple function loading and multimodal imaging. Nano Letters, 2011, 11(2): 814–819

DOI

17
Yamashita I, Iwahori K, Kumagai S. Ferritin in the field of nanodevices. Biochimica et Biophysica Acta, 2010, 1800(8): 846–857

DOI

18
Jolley C C, Uchida M, Reichhardt C, Harrington R, Kang S, Klem M T, Parise J B, Douglas T. Size and crystallinity in protein-templated inorganic nanoparticles. Chemistry of Materials, 2010, 22(16): 4612–4618

DOI

19
Zhang L, Swift J, Butts C A, Yerubandi V, Dmochowski I J. Structure and activity of apoferritin-stabilized gold nanoparticles. Journal of Inorganic Biochemistry, 2007, 101(11-12): 1719–1729

DOI

20
Rother M, Nussbaumer M G, Renggli K, Bruns N. Protein cages and synthetic polymers: A fruitful symbiosis for drug delivery applications, bionanotechnology and materials science. Chemical Society Reviews, 2016, 45(22): 6213–6249

DOI

21
Ghirlando R, Mutskova R, Schwartz C. Enrichment and characterization of ferritin for nanomaterial applications. Nanotechnology, 2016, 27(4): 045102

DOI

22
Konijn A, Meyron-Holtz E, Levy R, Ben-Bassat H, Matzner Y. Specific binding of placental acidic isoferritin to cells of the T-cell line HD-MAR. FEBS Letters, 1990, 263(2): 229–232

DOI

23
Bretscher M S, Thomson J N. Distribution of ferritin receptors and coated pits on giant Hela cells. EMBO Journal, 1983, 2(4): 599–603

24
Lei Y, Hamada Y, Li J, Cong L, Wang N, Li Y, Zheng W, Jiang X. Targeted tumor delivery and controlled release of neuronal drugs with ferritin nanoparticles to regulate pancreatic cancer progression. Journal of Controlled Release, 2016, 232: 131–142

DOI

25
Zhao Y, Liang M, Li X, Fan K, Xiao J, Li Y, Shi H, Wang F, Choi H S, Cheng D, et al. Bioengineered magnetoferritin nanoprobes for single-dose nuclear-magnetic resonance tumor imaging. ACS Nano, 2016, 10(4): 4184–4191

DOI

26
Adams P C, Powell L W, Halliday J W. Isolation of a human hepatic ferritin receptor. Hepatology (Baltimore, MD.), 1988, 8(4): 719–721

DOI

27
Chen X. Multimodality imaging of tumor integrin alphavbeta3 expression. Mini-Reviews in Medicinal Chemistry, 2006, 6(2): 227–233

DOI

28
Liu Y, Wang Z, Zhang H, Lang L, Ma Y, He Q, Lu N, Huang P, Song J, Liu Z, et al. A photothermally responsive nanoprobe for bioimaging based on edman degradation. Nanoscale, 2016, 8(20): 10553–10557

DOI

29
Kitagawa T, Kosuge H, Uchida M, Dua M M, Iida Y, Dalman R L, Douglas T, McConnell M V. Rgd-conjugated human ferritin nanoparticles for imaging vascular inflammation and angiogenesis in experimental carotid and aortic disease. Molecular Imaging & Biology, 2012, 14(3): 315–324

DOI

30
Choi H S, Nasr K, Alyabyev S, Feith D, Lee J H, Kim S H, Ashitate Y, Hyun H, Patonay G, Strekowski L, et al. Synthesis and in vivo fate of zwitterionic near—infrared fluorophores. Angewandte Chemie International Edition, 2011, 50(28): 6258–6263

DOI

31
Agostinis P, Berg K, Cengel K A, Foster T H, Girotti A W, Gollnick S O, Hahn S M, Hamblin M R, Juzeniene A, Kessel D, et al. Photodynamic therapy of cancer: An update. CA: a Cancer Journal for Clinicians, 2011, 61(4): 250–281

DOI

32
Ochsner M. Photophysical and photobiological processes in the photodynamic therapy of tumours. Journal of Photochemistry and Photobiology. B, Biology, 1997, 39(1): 1–18

DOI

33
Brown S B, Brown E A, Walker I. The present and future role of photodynamic therapy in cancer treatment. Lancet Oncology, 2004, 5(8): 497–508

DOI

34
Cairnduff F, Stringer M R, Hudson E J, Ash D V, Brown S B. Superficial photodynamic therapy with topical 5-aminolaevulinic acid for superficial primary and secondary skin cancer. British Journal of Cancer, 1994, 69(3): 605–608

DOI

35
Falvo E, Tremante E, Fraioli R, Leonetti C, Zamparelli C, Boffi A, Morea V, Ceci P, Giacomini P. Antibody-drug conjugates: Targeting melanoma with cisplatin encapsulated in protein-cage nanoparticles based on human ferritin. Nanoscale, 2013, 5(24): 12278–12285

DOI

36
MacKie R. Melanoma prevention and early detection. British Medical Bulletin, 1995, 51(3): 570–583

37
Siegel R, Naishadham D, Jemal A. Cancer statistics, 2012. CA: a Cancer Journal for Clinicians, 2012, 62(1): 10–29

DOI

38
Greenlee R T, Murray T, Bolden S, Wingo P A. Cancer statistics, 2000. CA: a Cancer Journal for Clinicians, 2000, 50(1): 7–33

DOI

39
Rigel D S, Carucci J A. Malignant melanoma: Prevention, early detection, and treatment in the 21st century. CA: a Cancer Journal for Clinicians, 2000, 50(4): 215–236

DOI

40
Morgenstern D A, Asher R A, Fawcett J W. Chondroitin sulphate proteoglycans in the CNS injury response. Progress in Brain Research, 2002, 137: 313–332

DOI

41
Eisenmann K M, McCarthy J B, Simpson M A, Keely P J, Guan J L, Tachibana K, Lim L, Manser E, Furcht L T, Iida J. Melanoma chondroitin sulphate proteoglycan regulates cell spreading through Cdc42, Ack-1 and p130cas. Nature Cell Biology, 1999, 1(8): 507–513

DOI

42
Thon N, Haas C A, Rauch U, Merten T, Fässler R, Frotscher M, Deller T. The chondroitin sulphate proteoglycan brevican is upregulated by astrocytes after entorhinal cortex lesions in adult rats. European Journal of Neuroscience, 2000, 12(7): 2547–2558

DOI

43
Levine J, Nishiyama A. The NG2 chondroitin sulfate proteoglycan: A multifunctional proteoglycan associated with immature cells. Perspectives on Developmental Neurobiology, 1996, 3(4): 245–259

44
Oohira A, Matsui F, Watanabe E, Kushima Y, Maeda N. Developmentally regulated expression of a brain specific species of chondroitin sulfate proteoglycan, neurocan, identified with a monoclonal antibody LG2 in the rat cerebrum. Neuroscience, 1994, 60(1): 145–157

DOI

45
Levine J M, Stallcup W B. Plasticity of developing cerebellar cells in vitro studied with antibodies against the NG2 antigen. Journal of Neuroscience, 1987, 7(9): 2721–2731

46
Maeda H, Wu J, Sawa T, Matsumura Y, Hori K. Tumor vascular permeability and the EPR effect in macromolecular therapeutics: A review. Journal of Controlled Release, 2000, 65(1): 271–284

DOI

47
Mamo T, Poland G A. Nanovaccinology: The next generation of vaccines meets 21st century materials science and engineering. Vaccine, 2012, 30(47): 6609–6611

DOI

48
des Rieux A, Fievez V, Garinot M, Schneider Y J, Préat V. Nanoparticles as potential oral delivery systems of proteins and vaccines: A mechanistic approach. Journal of Controlled Release, 2006, 116(1): 1–27

DOI

49
Singh M, Chakrapani A, O’Hagan D. Nanoparticles and microparticles as vaccine-delivery systems. Expert Review of Vaccines, 2007, 6(5): 797–808

DOI

50
Oyewumi M O, Kumar A, Cui Z. Nano-microparticles as immune adjuvants: Correlating particle sizes and the resultant immune responses. Expert Review of Vaccines, 2010, 9(9): 1095–1107

DOI

51
Zhao L, Seth A, Wibowo N, Zhao C X, Mitter N, Yu C, Middelberg A P. Nanoparticle vaccines. Vaccine, 2014, 32(3): 327–337

DOI

52
Zhao K, Chen G, Shi X, Gao T, Li W, Zhao Y, Zhang F, Wu J, Cui X, Wang Y F. Preparation and efficacy of a live newcastle disease virus vaccine encapsulated in chitosan nanoparticles. PLoS One, 2012, 7(12): e53314

DOI

53
Borges O, Cordeiro-da-Silva A, Tavares J, Santarém N, de Sousa A, Borchard G, Junginger H E. Immune response by nasal delivery of hepatitis B surface antigen and codelivery of a CpG ODN in alginate coated chitosan nanoparticles. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics, 2008, 69(2): 405–416

DOI

54
Nochi T, Yuki Y, Takahashi H, Sawada S, Mejima M, Kohda T, Harada N, Kong I G, Sato A, Kataoka N, et al. Nanogel antigenic protein-delivery system for adjuvant-free intranasal vaccines. Nature Materials, 2010, 9(7): 572–578

DOI

55
Stone J W, Thornburg N J, Blum D L, Kuhn S J, Wright D W, Crowe J E Jr. Gold nanorod vaccine for respiratory syncytial virus. Nanotechnology, 2013, 24(29): 295102

DOI

56
Wang T, Zou M, Jiang H, Ji Z, Gao P, Cheng G. Synthesis of a novel kind of carbon nanoparticle with large mesopores and macropores and its application as an oral vaccine adjuvant. European Journal of Pharmaceutical Sciences, 2011, 44(5): 653–659

DOI

57
Glück R, Moser C, Metcalfe I C. Influenza virosomes as an efficient system for adjuvanted vaccine delivery. Expert Opinion on Biological Therapy, 2004, 4(7): 1139–1145

DOI

58
Zhu F C, Zhang J, Zhang X F, Zhou C, Wang Z Z, Huang S J, Wang H, Yang C L, Jiang H M, Cai J P, et al. Efficacy and safety of a recombinant hepatitise vaccine in healthy adults: A large-scale, randomised, double-blind placebo-controlled, phase 3 trial. Lancet, 2010, 376(9744): 895–902

DOI

59
Sliepen K, Ozorowski G, Burger J A, van Montfort T, Stunnenberg M, LaBranche C, Montefiori D C, Moore J P, Ward A B, Sanders R W. Presenting native-like HIV-1 envelope trimers on ferritin nanoparticles improves their immunogenicity. Retrovirology, 2015, 12(82): 15–21

60
Champion C I, Kickhoefer V A, Liu G, Moniz R J, Freed A S, Bergmann L L, Vaccari D, Raval-Fernandes S, Chan A M, Rome L H, Kelly K A. A vault nanoparticle vaccine induces protective mucosal immunity. PLoS One, 2009, 4(4): e5409

DOI

61
Kanekiyo M, Wei C J, Yassine H M, McTamney P M, Boyington J C, Whittle J R, Rao S S, Kong W P, Wang L, Nabel G J. Self-assembling influenza nanoparticle vaccines elicit broadly neutralizing H1N1 antibodies. Nature, 2013, 499(7456): 102–106

DOI

62
Cho K J, Shin H J, Lee J H, Kim K J, Park S S, Lee Y, Lee C, Park S S, Kim K H. The crystal structure of ferritin from helicobacter pylori reveals unusual conformational changes for iron uptake. Journal of Molecular Biology, 2009, 390(1): 83–98

DOI

63
Steinman R M. Decisions about dendritic cells: Past, present, and future. Annual Review of Immunology, 2012, 30(1): 1–22

DOI

64
Gilboa E. DC-based cancer vaccines. Journal of Clinical Investigation, 2007, 117(5): 1195–1203

DOI

65
Aarntzen E, Figdor C, Adema G, Punt C, De Vries I. Dendritic cell vaccination and immune monitoring. Cancer Immunology, Immunotherapy, 2008, 57(10): 1559–1568

DOI

66
Han J A, Kang Y J, Shin C, Ra J S, Shin H H, Hong S Y, Do Y, Kang S. Ferritin protein cage nanoparticles as versatile antigen delivery nanoplatforms for dendritic cell (DC)-based vaccine development. Nanomedicine; Nanotechnology, Biology, and Medicine, 2013, 10(3): 561–569

DOI

67
Shimonkevitz R, Colon S, Kappler J W, Marrack P, Grey H M. Antigen recognition by H-2-restricted T cells. II. A tryptic ovalbumin peptide that substitutes for processed antigen. Journal of Immunology (Baltimore, MD: 1950), 1984, 133(4): 2067–2074

68
Liu D, Wang Z, Jin A, Huang X, Sun X, Wang F, Yan Q, Ge S, Xia N, Niu G, Liu G, Hight Walker A R, Chen X. Acetylcholinesterase—catalyzed hydrolysis allows ultrasensitive detection of pathogens with the naked eye. Angewandte Chemie International Edition in English, 2013, 52(52): 14065–14069

DOI

69
Lee S H, Lee H, Park J S, Choi H, Han K Y, Seo H S, Ahn K Y, Han S S, Cho Y, Lee K H, et al. A novel approach to ultrasensitive diagnosis using supramolecular protein nanoparticles. FASEB Journal, 2007, 21(7): 1324–1334

DOI

70
Abbaspour A, Noori A. Electrochemical detection of individual single nucleotide polymorphisms using monobase-modified apoferritin-encapsulated nanoparticles. Biosensors & Bioelectronics, 2012, 37(1): 11–18

DOI

71
Tang Z, Wu H, Zhang Y, Li Z, Lin Y. Enzyme-mimic activity of ferric nano-core residing in ferritin and its biosensing applications. Analytical Chemistry, 2011, 83(22): 8611–8616

DOI

72
Men D, Zhang T T, Hou L W, Zhou J, Zhang Z P, Shi Y Y, Zhang J L, Cui Z Q, Deng J Y, Wang D B, et al. Self-assembly of ferritin nanoparticles into an enzyme nanocomposite with tunable size for ultrasensitive immunoassay. ACS Nano, 2015, 9(11): 10852–10860

DOI

73
Liu G, Wang J, Wu H, Lin Y. Versatile apoferritin nanoparticle labels for assay of protein. Analytical Chemistry, 2006, 78(21): 7417–7423

DOI

74
Liu G, Wu H, Wang J, Lin Y. Apoferritin-templated synthesis of metal phosphate nanoparticle labels for electrochemical immunoassay. Small, 2006, 2(10): 1139–1143

DOI

75
Beutler B, Cerami A. Cachectin and tumour necrosis factor as two sides of the same biological coin. Nature, 1986, 320(6063): 584–588

DOI

76
Scuderi P, Lam K, Ryan K, Petersen E, Sterling K, Finley P, Ray C G, Slymen D, Salmon S. Raised serum levels of tumour necrosis factor in parasitic infections. Lancet, 1986, 328(8520): 1364–1365

DOI

77
Yu F, Li G, Qu B, Cao W. Electrochemical detection of DNA hybridization based on signal DNA probe modified with Au and apoferritin nanoparticles. Biosensors & Bioelectronics, 2010, 26(3): 1114–1117

DOI

78
Li L, Fang C J, Ryan J C, Niemi E C, Lebrón J A, Björkman P J, Arase H, Torti F M, Torti S V, Nakamura M C, et al. Binding and uptake of H-ferritin are mediated by human transferrin receptor-1. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2010, 107(8): 3505–3510

DOI

79
Fan K, Cao C, Pan Y, Lu D, Yang D, Feng J, Song L, Liang M, Yan X. Magnetoferritin nanoparticles for targeting and visualizing tumour tissues. Nature Nanotechnology, 2012, 7(7): 459–464

DOI

80
Lee E J, Ahn K Y, Lee J H, Park J S, Song J A, Sim S J, Lee E B, Cha Y J, Lee J. A novel bioassay platform using ferritin-based nanoprobe hydrogel. Advanced Materials, 2012, 24(35): 4739–4744

DOI

81
Zhao J, Liu M, Zhang Y, Li H, Lin Y, Yao S. Apoferritin protein nanoparticles dually-labeled with aptamer and HRP as a sensing probe for thrombin detection. Analytica Chimica Acta, 2012, 1(759): 53–60

82
John A, Tuszynski G. The role of matrix metalloproteinases in tumor angiogenesis and tumor metastasis. Pathology Oncology Research, 2001, 7(1): 14–23

DOI

83
Stetler-Stevenson W G, Aznavoorian S, Liotta L A. Tumor cell interactions with the extracellular matrix during invasion and metastasis. Annual Review of Cell Biology, 1993, 9(1): 541–573

DOI

84
Malemud C J. Matrix metalloproteinases (MMPs) in health and disease: An overview. Frontiers in Bioscience: A Journal and Virtual Library, 2006, 11: 1696

85
Lin X, Xie J, Zhu L, Lee S, Niu G, Ma Y, Kim K, Chen X. Hybrid ferritin nanoparticles as activatable probes for tumor imaging. Angewandte Chemie International Edition in English, 2011, 50(7): 1569–1572

DOI

86
Zhu L, Ma Y, Kiesewetter D O, Wang Y, Lang L, Lee S, Niu G, Chen X. Rational design of matrix metalloproteinase-13 activatable probes for enhanced specificity. ACS Chemical Biology, 2013, 9(2): 510–516

DOI

87
Zhu L, Xie J, Swierczewska M, Zhang F, Quan Q, Ma Y, Fang X, Kim K, Lee S, Chen X. Real-time video imaging of protease expression in vivo. Theranostics, 2011, 1: 18–27

DOI

88
Wang J, Zhang L, Chen M, Gao S, Zhu L. Activatable ferritin nanocomplex for real-time monitoring of caspase-3 activation during photodynamic therapy. ACS Applied Materials & Interfaces, 2015, 7(41): 23248–23256

DOI

89
Choi S H, Na H B, Park Y I, An K, Kwon S G, Jang Y, Park M H, Moon J, Son J S, Song I C, et al. Simple and generalized synthesis of oxide-metal heterostructured nanoparticles and their applications in multimodal biomedical probes. Journal of the American Chemical Society, 2008, 130(46): 15573–15580

DOI

90
Wang H, Cao F, De A, Cao Y, Contag C, Gambhir S S, Wu J C, Chen X. Trafficking mesenchymal stem cell engraftment and differentiation in tumor-bearing mice by bioluminescence imaging. Stem Cells (Dayton, OH), 2009, 27(7): 1548–1558

DOI

91
Xu C, Yuan Z, Kohler N, Kim J, Chung M A, Sun S. Fept nanoparticles as an Fe reservoir for controlled Fe release and tumor inhibition. Journal of the American Chemical Society, 2009, 131(42): 15346–15351

DOI

92
Bhirde A, Xie J, Swierczewska M, Chen X. Nanoparticles for cell labeling. Nanoscale, 2011, 3(1): 142–153

DOI

93
Terashima M, Uchida M, Kosuge H, Tsao P S, Young M J, Conolly S M, Douglas T, McConnell M V. Human ferritin cages for imaging vascular macrophages. Biomaterials, 2011, 32(5): 1430–1437

DOI

94
Mills P H, Ahrens E T. Theoretical MRI contrast model for exogenous T2 agents. Magnetic Resonance in Medicine, 2007, 57(2): 442–447

DOI

95
Charlton J R, Pearl V M, Denotti A R, Lee J B, Swaminathan S, Scindia Y M, Charlton N P, Baldelomar E J, Beeman S C, Bennett K M. Biocompatibility of ferritin-based nanoparticles as targeted mri contrast agents. Nanomedicine; Nanotechnology, Biology, and Medicine, 2016, 12(6): 1735–1745

DOI

96
Domínguez-Vera J M, Fernandez B, Galvez N. Native and synthetic ferritins for nanobiomedical applications: Recent advances and new perspectives. Future Medicinal Chemistry, 2010, 2(4): 609–618

DOI

97
Maraloiu V A, Appaix F, Broisat A, Le Guellec D, Teodorescu V S, Ghezzi C, van der Sanden B, Blanchin M G. Multiscale investigation of uspio nanoparticles in atherosclerotic plaques and their catabolism and storage in vivo. Nanomedicine; Nanotechnology, Biology, and Medicine, 2016, 12(1): 191–200

DOI

98
Xie H, Cheng Y C, Kokeny P, Liu S, Hsieh C Y, Haacke E M, Palihawadana Arachchige M, Lawes G. A quantitative study of susceptibility and additional frequency shift of three common materials in MRI. Magnetic Resonance in Medicine, 2016, 76(4): 1263–1269

DOI

99
Choi S H, Cho H R, Kim H S, Kim Y H, Kang K W, Kim H, Moon W K. Imaging and quantification of metastatic melanoma cells in lymph nodes with a ferritin MR reporter in living mice. NMR in Biomedicine, 2012, 25(5): 737–745

DOI

100
Fan K, Gao L, Yan X. Human ferritin for tumor detection and therapy. Wiley Interdisciplinary Reviews. Nanomedicine and Nanobiotechnology, 2013, 5(4): 287–298

DOI

101
Schenck J F, Zimmerman E A. High-field magnetic resonance imaging of brain iron: Birth of a biomarker? NMR in Biomedicine, 2004, 17(7): 433–445

DOI

102
Christoforidis A, Haritandi A, Tsitouridis I, Tsatra I, Tsantali H, Karyda S, Dimitriadis A S, Athanassiou-Metaxa M. Correlative study of iron accumulation in liver, myocardium, and pituitary assessed with MRI in young thalassemic patients. Journal of Pediatric Hematology/Oncology, 2006, 28(5): 311–315

DOI

103
Bartzokis G, Cummings J L, Markham C H, Marmarelis P Z, Treciokas L J, Tishler T A, Marder S R, Mintz J. MRI evaluation of brain iron in earlier-and later-onset Parkinson’s disease and normal subjects. Magnetic Resonance Imaging, 1999, 17(2): 213–222

DOI

104
Bartzokis G, Tishler T. MRI evaluation of basal ganglia ferritin iron and neurotoxicity in Alzheimer’s and Huntingon’s disease. Cellular and Molecular Biology, 2000, 46(4): 821–833

105
Bennett K M, Zhou H, Sumner J P, Dodd S J, Bouraoud N, Doi K, Star R A, Koretsky A P. MRI of the basement membrane using charged nanoparticles as contrast agents. Magnetic Resonance in Medicine, 2008, 60(3): 564–574

DOI

106
Kim J W, Choi S H, Lillehei P T, Chu S H, King G C, Watt G D. Cobalt oxide hollow nanoparticles derived by bio-templating. Chemical Communications, 2005, (32): 4101–4103

DOI

107
Deng Q Y, Yang B, Wang J F, Whiteley C G, Wang X N. Biological synthesis of platinum nanoparticles with apoferritin. Biotechnology Letters, 2009, 31(10): 1505–1509

DOI

108
Sun C, Yang H, Yuan Y, Tian X, Wang L, Guo Y, Xu L, Lei J, Gao N, Anderson G J, et al. Controlling assembly of paired gold clusters within apoferritin nanoreactor for in vivo kidney targeting and biomedical imaging. Journal of the American Chemical Society, 2011, 133(22): 8617–8624

DOI

109
Uchida M, Terashima M, Cunningham C H, Suzuki Y, Willits D A, Willis A F, Yang P C, Tsao P S, McConnell M V, Young M J, et al. A human ferritin iron oxide nano-composite magnetic resonance contrast agent. Magnetic Resonance in Medicine, 2008, 60(5): 1073–1081

DOI

110
Jezierska A, Motyl T. Matrix metalloproteinase-2 involvement in breast cancer progression: A mini-review. Medical Science Monitor, 2009, 15(2): RA32–40

111
Ravanti L, Kähäri V. Matrix metalloproteinases in wound repair. International Journal of Molecular Medicine, 2000, 6(4): 391–798

112
Matsumura S, Aoki I, Saga T, Shiba K. A tumor-environment-responsive nanocarrier that evolves its surface properties upon sensing matrix metalloproteinase-2 and initiates agglomeration to enhance t(2) relaxivity for magnetic resonance imaging. Molecular Pharmaceutics, 2011, 8(5): 1970–1974

DOI

113
Makino A, Harada H, Okada T, Kimura H, Amano H, Saji H, Hiraoka M, Kimura S. Effective encapsulation of a new cationic gadolinium chelate into apoferritin and its evaluation as an MRI contrast agent. Nanomedicine; Nanotechnology, Biology, and Medicine, 2011, 7(5): 638–646

DOI

114
Sanchez P, Valero E, Galvez N, Dominguez-Vera J M, Marinone M, Poletti G, Corti M, Lascialfari A. MRI relaxation properties of water-soluble apoferritin-encapsulated gadolinium oxide-hydroxide nanoparticles. Dalton Transactions (Cambridge, England), 2009, (5): 800–804

DOI

115
Lee S, Chen X. Dual-modality probes for in vivo molecular imaging. Molecular Imaging, 2009, 8(2): 87–100

116
Cai W, Chen X. Multimodality molecular imaging of tumor angiogenesis. Journal of Nuclear Medicine, 2008, 49(Suppl 2): 113S–128S

DOI

117
Cai W, Niu G, Chen X. Multimodality imaging of the HER-kinase axis in cancer. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging, 2008, 35(1): 186–208

DOI

118
Wang Z, Huang P, Jacobson O, Wang Z, Liu Y, Lin L, Lin J, Lu N, Zhang H, Tian R, et al. Biomineralization-inspired synthesis of copper sulfide-ferritin nanocages as cancer theranostics. ACS Nano, 2016, 10(3): 3453–3460

DOI

119
Xu G, Zhao L, He Z. Performance of whole-body pet/ct for the detection of distant malignancies in various cancers: A systematic review and meta-analysis. Journal of Nuclear Medicine, 2012, 53(12): 1847–1854

DOI

120
Ford E C, Herman J, Yorke E, Wahl R L. 18F-FDG PET/CT for image-guided and intensity-modulated radiotherapy. Journal of Nuclear Medicine, 2009, 50(10): 1655–1665

DOI

121
Vach W, Hoilund-Carlsen P F, Gerke O, Weber W A. Generating evidence for clinical benefit of PET/CT in diagnosing cancer patients. Journal of Nuclear Medicine, 2011, 52(Suppl 2): 77S–85S

DOI

122
Cai W, Sam Gambhir S, Chen X. Multimodality tumor imaging targeting integrin alphavbeta3. BioTechniques, 2005, 39(6 Suppl): S14–S25

DOI

123
Vikram D S, Zweier J L, Kuppusamy P. Methods for noninvasive imaging of tissue hypoxia. Antioxidants & Redox Signaling, 2007, 9(10): 1745–1756

124
Huang P, Lin J, Li W, Rong P, Wang Z, Wang S, Wang X, Sun X, Aronova M, Niu G, et al. Biodegradable gold nanovesicles with an ultrastrong plasmonic coupling effect for photoacoustic imaging and photothermal therapy. Angewandte Chemie International Edition, 2013, 52(52): 13958–13964

DOI

125
Yang M, Fan Q, Zhang R, Cheng K, Yan J, Pan D, Ma X, Lu A, Cheng Z. Dragon fruit-like biocage as an iron trapping nanoplatform for high efficiency targeted cancer multimodality imaging. Biomaterials, 2015, 69: 30–37

DOI

126
Vannucci L, Falvo E, Failla C M, Carbo M, Fornara M, Canese R, Cecchetti S, Rajsiglova L, Stakheev D, Krizan J, et al. In vivo targeting of cutaneous melanoma using an melanoma stimulating hormone-engineered human protein cage with fluorophore and magnetic resonance imaging tracers. Journal of Biomedical Nanotechnology, 2015, 11(1): 81–92

DOI

127
Liang M, Fan K, Zhou M, Duan D, Zheng J, Yang D, Feng J, Yan X. H-ferritin-nanocaged doxorubicin nanoparticles specifically target and kill tumors with a single-dose injection. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2014, 111(41): 14900–14905

DOI

Outlines

/