Microfluidics for cell-cell interactions: A review

Rui Li , Xuefei Lv , Xingjian Zhang , Omer Saeed , Yulin Deng

Front. Chem. Sci. Eng. ›› 2016, Vol. 10 ›› Issue (1) : 90 -98.

PDF (502KB)
Front. Chem. Sci. Eng. ›› 2016, Vol. 10 ›› Issue (1) : 90 -98. DOI: 10.1007/s11705-015-1550-2
REVIEW ARTICLE
REVIEW ARTICLE

Microfluidics for cell-cell interactions: A review

Author information +
History +
PDF (502KB)

Abstract

Microfluidic chip has been applied in various biological fields owing to its low-consumption of reagents, high throughput, fluidic controllability and integrity. The well-designed microscale intermediary is also ideal for the study of cell biology. Particularly, microfluidic chip is helpful for better understanding cell-cell interactions. A general survey of recent publications would help to generalize the designs of the co-culture chips with different features. With ingenious and combinational utilization, the chips facilitate the implementation of some special co-culture models that are highly concerned in a different spatial and temporal way.

Graphical abstract

Keywords

microfluidic chip / co-culture / cell-cell interactions / review

Cite this article

Download citation ▾
Rui Li, Xuefei Lv, Xingjian Zhang, Omer Saeed, Yulin Deng. Microfluidics for cell-cell interactions: A review. Front. Chem. Sci. Eng., 2016, 10(1): 90-98 DOI:10.1007/s11705-015-1550-2

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Whitesides G M. The origins and the future of microfluidics. Nature2006442(7101): 368–373

[2]

Haeberle SZengerle R. Microfluidic platforms for lab-on-a-chip applications. Lab on a Chip20077(9): 1094–1110

[3]

Han K NLi C ASeong G H. Microfluidic chips for immunoassays. Annual Review of Analytical Chemistry (Palo Alto, Calif.)20136(1): 119–141

[4]

Nan LJiang ZWei X. Emerging microfluidic devices for cell lysis: A review. Lab on a Chip201414(6): 1060–1073

[5]

Smejkal PBottenus DBreadmore M CGuijt R MIvory C FForet FMacka M. Microfluidic isotachophoresis: A review. Electrophoresis201334(11): 1493–1509

[6]

Ma SLoufakis D NCao ZChang YAchenie LLu C. Diffusion-based microfluidic PCR for “one-pot” analysis of cells. Lab on a Chip201414(16): 2905–2909

[7]

Sommer G JHatch A VSingh A KWang Y C. Microfluidic device having an immobilized pH gradient and page gels for protein separation and analysis: US Patent 8728290,2014-5-20

[8]

Jebrail M JRenzi R FSinha AVan De Vreugde JGondhalekar CAmbriz CMeagher R JBranda S S. A solvent replenishment solution for managing evaporation of biochemical reactions in air-matrix digital microfluidics devices. Lab on a Chip201515(1): 151–158

[9]

Ren KChen YWu H. New materials for microfluidics in biology. Current Opinion in Biotechnology201425: 78–85

[10]

Sia S KWhitesides G M. Microfluidic devices fabricated in poly(dimethylsiloxane) for biological studies. Electrophoresis200324(21): 3563–3576

[11]

Giulitti SMagrofuoco EPrevedello LElvassore N. Optimal periodic perfusion strategy for robust long-term microfluidic cell culture. Lab on a Chip201313(22): 4430–4441

[12]

Zhang QLiu TQin J. A microfluidic-based device for study of transendothelial invasion of tumor aggregates in realtime. Lab on a Chip201212(16): 2837–2842

[13]

Ziolkowska KJedrych EKwapiszewski RLopacinska JSkolimowski MChudy M. PDMS/glass microfluidic cell culture system for cytotoxicity tests and cells passage. Sensors and Actuators. B, Chemical2010145(1): 533–542

[14]

El-Ali JSorger P KJensen K F. Cells on chips. Nature2006442(7101): 403–411

[15]

Mehling MTay S. Microfluidic cell culture. Current Opinion in Biotechnology201425: 95–102

[16]

Xiong BRen KShu YChen YShen BWu H. Recent developments in microfluidics for cell studies. Advanced Materials201426(31): 5525–5532

[17]

Nge P NRogers C IWoolley A T. Advances in microfluidic materials, functions, integration, and applications. Chemical Reviews2013113(4): 2550–2583

[18]

Torisawa Y SMosadegh BLuker G DMorell MO’Shea K STakayama S. Microfluidic hydrodynamic cellular patterning for systematic formation of co-culture spheroids. Integrative Biology20091(11-12): 649–654

[19]

Skafte-Pedersen PHemmingsen MSabourin DBlaga F SBruus HDufva M. A self-contained, programmable microfluidic cell culture system with real-time microscopy access. Biomedical Microdevices201214(2): 385–399

[20]

Wang D YWu S CLin S PHsiao S HChung T WHuang Y Y. Evaluation of transdifferentiation from mesenchymal stem cells to neuron-like cells using microfluidic patterned co-culture system. Biomedical Microdevices201113(3): 517–526

[21]

Wei C WCheng J YYoung T H. Elucidating in vitro cell-cell interaction using a microfluidic coculture system. Biomedical Microdevices20068(1): 65–71

[22]

Kobel SValero ALatt JRenaud PLutolf M. Optimization of microfluidic single cell trapping for long-term on-chip culture. Lab on a Chip201010(7): 857–863

[23]

Mazutis LGilbert JUng W LWeitz D AGriffiths A DHeyman J A. Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics. Nature Protocols20138(5): 870–891

[24]

Yin HMarshall D. Microfluidics for single cell analysis. Current Opinion in Biotechnology201223(1): 110–119

[25]

Kim LToh Y CVoldman JYu H. A practical guide to microfluidic perfusion culture of adherent mammalian cells. Lab on a Chip20077(6): 681–694

[26]

Huang C PLu JSeon HLee A PFlanagan L AKim H YPutnam A JJeon N L. Engineering microscale cellular niches for three-dimensional multicellular co-cultures. Lab on a Chip20099(12): 1740–1748

[27]

Liu TLin BQin J. Carcinoma-associated fibroblasts promoted tumor spheroid invasion on a microfluidic 3D co-culture device. Lab on a Chip201010(13): 1671–1677

[28]

Zhou MMa HLin HQin J. Induction of epithelial-to-mesenchymal transition in proximal tubular epithelial cells on microfluidic devices. Biomaterials201435(5): 1390–1401

[29]

Unger M AChou H PThorsen TScherer AQuake S R. Monolithic microfabricated valves and pumps by multilayer soft lithography. Science2000288(5463): 113–116

[30]

Liu ALiu WWang YWang J CTu QLiu RXu JShen SWang J. Microvalve and liquid membrane double-controlled integrated microfluidics for observing the interaction of breast cancer cells. Microfluidics and Nanofluidics201214(3-4): 515–526

[31]

Majumdar DGao YLi DWebb D J. Co-culture of neurons and glia in a novel microfluidic platform. Journal of Neuroscience Methods2011196(1): 38–44

[32]

Gao YMajumdar DJovanovic BShaifer CLin P CZijlstra AWebb D JLi D. A versatile valve-enabled microfluidic cell co-culture platform and demonstration of its applications to neurobiology and cancer biology. Biomedical Microdevices201113(3): 539–548

[33]

Liu WLi LWang XRen LWang XWang JTu QHuang XWang J. An integrated microfluidic system for studying cell-microenvironmental interactions versatilely and dynamically. Lab on a Chip201010(13): 1717–1724

[34]

Zheng CZhao LChen GZhou YPang YHuang Y. Quantitative study of the dynamic tumor-endothelial cell interactions through an integrated microfluidic coculture system. Analytical Chemistry201284(4): 2088–2093

[35]

Brewer B MShi MEdd J FWebb D JLi D. A microfluidic cell co-culture platform with a liquid fluorocarbon separator. Biomedical Microdevices201416: 311–323

[36]

Yeon J HRyu H RChung MHu Q PJeon N L. In vitro formation and characterization of a perfusable three-dimensional tubular capillary network in microfluidic devices. Lab on a Chip201212(16): 2815–2822

[37]

Businaro LDe Ninno ASchiavoni GLucarini VCiasca GGerardino ABelardelli FGabriele LMattei F. Cross talk between cancer and immune cells: Exploring complex dynamics in a microfluidic environment. Lab on a Chip201313(2): 229–239

[38]

Huang YAgrawal BClark P AWilliams J CKuo J S. Evaluation of cancer stem cell migration using compartmentalizing microfluidic devices and live cell imaging. Journal of Visualized Experiments201158: 3297

[39]

De Jong JLammertink R GWessling M. Membranes and microfluidics: A review. Lab on a Chip20066(9): 1125–1139

[40]

Chen QWu JZhuang QLin XZhang JLin J M. Microfluidic isolation of highly pure embryonic stem cells using feeder-separated co-culture system. Scientific Reports20133: 1–6

[41]

Sip C GBhattacharjee NFolch A. Microfluidic transwell inserts for generation of tissue culture-friendly gradients in well plates. Lab on a Chip201414(2): 302–314

[42]

Ostrovidov SSakai YFujii T. Integration of a pump and an electrical sensor into a membrane-based PDMS microbioreactor for cell culture and drug testing. Biomedical Microdevices201113(5): 847–864

[43]

VanDersarl J JXu A MMelosh N A. Rapid spatial and temporal controlled signal delivery over large cell culture areas. Lab on a Chip201111(18): 3057–3063

[44]

Jang K JSuh K Y. A multi-layer microfluidic device for efficient culture and analysis of renal tubular cells. Lab on a Chip201010(1): 36–42

[45]

Ramadan QJafarpoorchekab HHuang CSilacci PCarrara SKoklu GGhaye JRamsden JRuffert CVergeres GGijs M A. NutriChip: Nutrition analysis meets microfluidics. Lab on a Chip201313(2): 196–203

[46]

Miura SMorimoto YTakeuchi S.Multi-layered placental barrier structure integrated with microfluidic channels. 2013 IEEE 26th International Conference.IEEE, 2013: 257–258

[47]

Lee Y. Sudo RKomatsu TMiki NMitaka TIkeda MTanishita K. Pattern microfluidic hydrostatic deposition patterning for a confined hepatocyte-biliary epithelial cell co-culture system. 2011 International Symposium. IEEE2011: 10–15

[48]

Chin L KLuo K QPark W. Double-layer hepatocyte tumor co-culture using hydrogel for drug affectivity and specificity analysis. 2012 IEEE 25th International Conference. IEEE2012: 808–811

[49]

Liu ZShum H C. Fabrication of uniform multi-compartment particles using microfludic electrospray technology for cell co-culture studies. Biomicrofluidics20137(4): 044117

[50]

Shi MMajumdar DGao YBrewer B MGoodwin C RMcLean J ALi DWebb D J. Glia co-culture with neurons in microfluidic platforms promotes the formation and stabilization of synaptic contacts. Lab on a Chip201313(15): 3008–3021

[51]

Sudo RChung SZervantonakis I KVickerman VToshimitsu YGriffith L GKamm R D. Transport-mediated angiogenesis in 3D epithelial coculture. FASEB Journal200923(7): 2155–2164

[52]

Purtscher MRothbauer MHolnthoner WRedl HErtl P. Establishment of Vascular Networks in Biochips Using Co-cultures of Adipose Derived Stem Cells and Endothelial Cells in a 3D Fibrin Matrix. 6th European Conference of the International Federation for Medical and Biological Engineering. Springer International Publishing2015: 313–317

[53]

Chen M BSrigunapalan SWheeler A RSimmons C A. A 3D microfluidic platform incorporating methacrylated gelatin hydrogels to study physiological cardiovascular cell-cell interactions. Lab on a Chip201313(13): 2591–2598

[54]

Chung SSudo RMack P JWan C RVickerman VKamm R D. Cell migration into scaffolds under co-culture conditions in a microfluidic platform. Lab on a Chip20099(2): 269–275

[55]

Ioannis KZervantonakis S K H AJoseph LCharestd J L. Three-dimensional microfluidic model for tumor cell intravasation and endothelial barrier function. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America2012109(34): 13151–13520

[56]

Xie YZhang WWang LSun KSun YJiang X. A microchip-based model wound with multiple types of cells. Lab on a Chip201111(17): 2819–2822

[57]

Ricci CMoroni LDanti S. Cancer tissue engineering-new perspectives in understanding the biology of solid tumours-a critical review. OA Tissue Engineering20131(1): 4

[58]

Ma HLiu TQin JLin B. Characterization of the interaction between fibroblasts and tumor cells on a microfluidic co-culture device. Electrophoresis201031(10): 1599–1605

[59]

Hockemeyer KJanetopoulos CTerekhov AHofmeister WVilgelm ACosta LWikswo JRichmond A. Engineered three-dimensional microfluidic device for interrogating cell-cell interactions in the tumor microenvironment. Biomicrofluidics20148(4): 044105

[60]

Ye NQin JShi WLiu XLin B. Cell-based high content screening using an integrated microfluidic device. Lab on a Chip20077(12): 1696–1704

[61]

Yang YYang XZou JJia CHu YDu HWang H. Evaluation of photodynamic therapy efficiency using an in vitro three-dimensional microfluidic breast cancer tissue model. Lab on a Chip201515(3): 735–744

[62]

Agliari EBiselli EDe Ninno ASchiavoni GGabriele LGerardino AMattei FBarra ABusinaro L. Cancer-driven dynamics of immune cells in a microfluidic environment. Scientific Reports20144: 1–15

[63]

Hsu T HKao Y LLin W LXiao J LKuo P LWu C WLiao W YLee C H. The migration speed of cancer cells influenced by macrophages and myofibroblasts co-cultured in a microfluidic chip. Integrative Biology20124(2): 177–182

[64]

Park J YKim H OKim K DKim S KLee S KJung H. Monitoring the status of T-cell activation in a microfluidic system. Analyst (London)2011136(13): 2831–2836

[65]

Charwat VRothbauer MTedde S FHayden OBosch J JMuellner PHainberger RErtl P. Monitoring dynamic interactions of tumor cells with tissue and immune cells in a lab-on-a-chip. Analytical Chemistry201385(23): 11471–11478

[66]

Mu�oz-Pinedo  CGreen  D Rvan den Berg C A. Confocal restricted-height imaging of suspension cells (CRISC) in a PDMS microdevice during apoptosis. Lab on a Chip20055(6): 628–633

[67]

Li PStratton Z SDao MRitz JHuang T J. Probing circulating tumor cells in microfluidics. Lab on a Chip201313(4): 602–609

[68]

Millet L JStewart M ESweedler J VNuzzo R GGillette M U. Microfluidic devices for culturing primary mammalian neurons at low densities. Lab on a Chip20077(8): 987–994

[69]

Millet L JStewart M ENuzzo R GGillette M U. Guiding neuron development with planar surface gradients of substrate cues deposited using microfluidic devices. Lab on a Chip201010(12): 1525–1535

[70]

Wang JRen LLi LLiu WZhou JYu WTong DChen S. Microfluidics: A new cosset for neurobiology. Lab on a Chip20099(5): 644–652

[71]

Millet L JGillette M U. New perspectives on neuronal development via microfluidic environments. Trends in Neurosciences201235(12): 752–761

[72]

Dinh N DChiang Y YHardelauf HBaumann JJackson EWaide SSisnaiske JFrimat J Pvan Thriel CJanasek DPeyrin J MWest J. Microfluidic construction of minimalistic neuronal co-cultures. Lab on a Chip201313(7): 1402–1412

[73]

Park JKoito HLi JHan A. Microfluidic compartmentalized co-culture platform for CNS axon myelination research. Biomedical Microdevices200911(6): 1145–1153

[74]

Peyrin J MDeleglise BSaias LVignes MGougis PMagnifico SBetuing SPietri MCaboche JVanhoutte PViovy J LBrugg B. Axon diodes for the reconstruction of oriented neuronal networks in microfluidic chambers. Lab on a Chip201111(21): 3663–3673

[75]

Kunze ALengacher SDirren EAebischer PMagistretti P JRenaud P. Astrocyte-neuron co-culture on microchips based on the model of SOD mutation to mimic ALS. Integrative Biology20135(7): 964–975

[76]

Southam K AKing A EBlizzard C AMcCormack G HDickson T C. Microfluidic primary culture model of the lower motor neuron-neuromuscular junction circuit. Journal of Neuroscience Methods2013218(2): 164–169

[77]

Kim H JHuh DHamilton GIngber D E. Human gut-on-a-chip inhabited by microbial flora that experiences intestinal peristalsis-like motions and flow. Lab on a Chip201212(12): 2165–2174

[78]

Kim JHegde MJayaraman A. Co-culture of epithelial cells and bacteria for investigating host-pathogen interactions. Lab on a Chip201010(1): 43–50

[79]

Hong J WSong SShin J H. A novel microfluidic co-culture system for investigation of bacterial cancer targeting. Lab on a Chip201313(15): 3033–3040

[80]

Huh DHamilton G AIngber D E. From 3D cell culture to organs-on-chips. Trends in Cell Biology201121(12): 745–754

[81]

Kostadinova RBoess FApplegate DSuter LWeiser TSinger TNaughton BRoth A. A long-term three dimensional liver co-culture system for improved prediction of clinically relevant drug-induced hepatotoxicity. Toxicology and Applied Pharmacology2013268(1): 1–16

[82]

Lee S ANo D YKang EJu JKim D SLee S H. Spheroid-based three-dimensional liver-on-a-chip to investigate hepatocyte–hepatic stellate cell interactions and flow effects. Lab on a Chip201313(18): 3529–3537

[83]

Jang K JCho H SKang D HBae W GKwon T HSuh K Y. Fluid-shear-stress-induced translocation of aquaporin-2 and reorganization of actin cytoskeleton in renal tubular epithelial cells. Integrative Biology20113(2): 134–141

[84]

Huh DFujioka HTung Y CFutai NPaine RGrotberg J BTakayama S. Acoustically detectable cellular-level lung injury induced by fluid mechanical stresses in microfluidic airway systems. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America2007104(48): 18886–18891

[85]

Huh DMatthews B DMammoto AMontoya-Zavala MHsin H YIngber D E. Reconstituting organ-level lung functions on a chip. Science2010328(5986): 1662–1668

[86]

Sung J HEsch M BProt J MLong C JSmith AHickman J JShuler M L. Microfabricated mammalian organ systems and their integration into models of whole animals and humans. Lab on a Chip201313(7): 1201–1212

[87]

Chan C YHuang P HGuo FDing XKapur VMai J DYuen P KHuang T J. Accelerating drug discovery via organs-on-chips. Lab on a Chip201313(24): 4697–4710

[88]

Choucha-Snouber LAninat CGrsicom LMadalinski GBrochot CPoleni P ERazan FGuillouzo C GLegallais CCorlu ALeclerc E. Investigation of ifosfamide nephrotoxicity induced in a liver-kidney co-culture biochip. Biotechnology and Bioengineering2013110(2): 597–608

[89]

Novik EMaguire T JChao PCheng KYarmush M L. A microfluidic hepatic coculture platform for cell-based drug metabolism studies. Biochemical Pharmacology201079(7): 1036–1044

[90]

Torisawa Y SSpina C SMammoto TMammoto AWeaver J CTat TCollins J JIngber D E. Bone marrow-on-a-chip replicates hematopoietic niche physiology in vitro. Nature Methods201411(6): 663–669

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (502KB)

4703

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/