Identification of differentially expressed miRNAs associated with chronic kidney disease–mineral bone disorder

Abstract

The purpose of this study is to characterize a meta-signature of differentially expressed mRNA in chronic kidney disease (CKD) to predict putative microRNA (miRNA) in CKD–mineral bone disorder (CKD–MBD) and confirm the changes in these genes and miRNA expression under uremic conditions by using a cell culture system. PubMed searches using MeSH terms and keywords related to CKD, uremia, and mRNA arrays were conducted. Through a computational analysis, a meta-signature that characterizes the significant intersection of differentially expressed mRNA and expected miRNAs associated with CKD–MBD was determined. Additionally, changes in gene and miRNA expressions under uremic conditions were confirmed with human Saos-2 osteoblast-like cells. A statistically significant mRNA meta-signature of upregulated and downregulated mRNA levels was identified. Furthermore, miRNA expression profiles were inferred, and computational analyses were performed with the imputed microRNA regulation based on weighted ranked expression and putative microRNA targets (IMRE) method to identify miRNAs associated with CKD occurrence. TLR4 and miR-146b levels were significantly associated with CKD–MBD. TLR4 levels were significantly downregulated, whereas pri-miR-146b and miR-146b were upregulated in the presence of uremic toxins in human Saos-2 osteoblast-like cells. Differentially expressed miRNAs associated with CKD-MBD were identified through a computational analysis, and changes in gene and miRNA expressions were confirmed with an in vitro cell culture system.

Keywords

chronic kidney disease / microRNA / mineral bone disorder / uremia

References

[1] Meyer TW, Hostetter TH. Uremia. N Engl J Med 2007; 357(13): 1316–1325

[2] Duranton F, Cohen G, De Smet R, Rodriguez M, Jankowski J, Vanholder R, Argiles A; European Uremic Toxin Work Group. Normal and pathologic concentrations of uremic toxins. J Am Soc Nephrol 2012; 23(7): 1258–1270

[3] Cibulka R, Racek J. Metabolic disorders in patients with chronic kidney failure. Physiol Res 2007; 56(6): 697–705

[4] Lanza D, Perna AF, Oliva A, Vanholder R, Pletinck A, Guastafierro S, Di Nunzio A, Vigorito C, Capasso G, Jankowski V, Jankowski J, Ingrosso D. Impact of the uremic milieu on the osteogenic potential of mesenchymal stem cells. PLoS One 2015; 10(1): e0116468

[5] Meijers BK, Claes K, Bammens B, de Loor H, Viaene L, Verbeke K, Kuypers D, Vanrenterghem Y, Evenepoel P. p-Cresol and cardiovascular risk in mild-to-moderate kidney disease. Clin J Am Soc Nephrol 2010; 5(7): 1182–1189

[6] Moe S, Drüeke T, Cunningham J, Goodman W, Martin K, Olgaard K, Ott S, Sprague S, Lameire N, Eknoyan G; Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO). Definition, evaluation, and classification of renal osteodystrophy: a position statement from Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO). Kidney Int 2006; 69(11): 1945–1953

[7] Menon V, Gul A, Sarnak MJ. Cardiovascular risk factors in chronic kidney disease. Kidney Int 2005; 68(4): 1413–1418

[8] Hruska K, Mathew S, Lund R, Fang Y, Sugatani T. Cardiovascular risk factors in chronic kidney disease: does phosphate qualify? Kidney Int 2011; 79(S121): S9–S13 PMID: 26746860 

[9] Bartel DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell 2004; 116(2): 281–297

[10] Alvarez-Garcia I, Miska EA. MicroRNA functions in animal development and human disease. Development 2005; 132(21): 4653–4662

[11] O’Connell RM, Rao DS, Chaudhuri AA, Baltimore D. Physiological and pathological roles for microRNAs in the immune system. Nat Rev Immunol 2010; 10(2): 111–122

[12] Tili E, Michaille JJ, Croce CM. MicroRNAs play a central role in molecular dysfunctions linking inflammation with cancer. Immunol Rev 2013; 253(1): 167–184

[13] Nana-Sinkam SP, Croce CM. MicroRNAs as therapeutic targets in cancer. Transl Res 2011; 157(4): 216–225

[14] Schöler N, Langer C, Döhner H, Buske C, Kuchenbauer F. Serum microRNAs as a novel class of biomarkers: a comprehensive review of the literature. Exp Hematol 2010; 38(12): 1126–1130

[15] Isakova T, Gutiérrez OM, Patel NM, Andress DL, Wolf M, Levin A. Vitamin D deficiency, inflammation, and albuminuria in chronic kidney disease: complex interactions. J Ren Nutr 2011; 21(4): 295–302

[16] Fang Y, Ginsberg C, Seifert M, Agapova O, Sugatani T, Register TC, Freedman BI, Monier-Faugere MC, Malluche H, Hruska KA. CKD-induced wingless/integration1 inhibitors and phosphorus cause the CKD-mineral and bone disorder. J Am Soc Nephrol 2014; 25(8): 1760–1773

[17] Neal CS, Michael MZ, Pimlott LK, Yong TY, Li JY, Gleadle JM. Circulating microRNA expression is reduced in chronic kidney disease. Nephrol Dial Transplant 2011; 26(11): 3794–3802

[18] Beltrami C, Clayton A, Phillips AO, Fraser DJ, Bowen T. Analysis of urinary microRNAs in chronic kidney disease. Biochem Soc Trans 2012; 40(4): 875–879

[19] Feichtinger J, McFarlane RJ, Larcombe LD. CancerMA: a web-based tool for automatic meta-analysis of public cancer microarray data. Database (Oxford) 2012; 2012: bas055

[20] Ramasamy A, Mondry A, Holmes CC, Altman DG. Key issues in conducting a meta-analysis of gene expression microarray datasets. PLoS Med 2008; 5(9): e184

[21] Gentleman RC, Carey VJ, Bates DM, Bolstad B, Dettling M, Dudoit S, Ellis B, Gautier L, Ge Y, Gentry J, Hornik K, Hothorn T, Huber W, Iacus S, Irizarry R, Leisch F, Li C, Maechler M, Rossini AJ, Sawitzki G, Smith C, Smyth G, Tierney L, Yang JY, Zhang J. Bioconductor: open software development for computational biology and bioinformatics. Genome Biol 2004; 5(10): R80

[22] McCall MN, Bolstad BM, Irizarry RA. Frozen robust multiarray analysis (fRMA). Biostatistics 2010; 11(2): 242–253

[23] Lee Y, Yang X, Huang Y, Fan H, Zhang Q, Wu Y, Li J, Hasina R, Cheng C, Lingen MW, Gerstein MB, Weichselbaum RR, Xing HR, Lussier YA. Network modeling identifies molecular functions targeted by miR-204 to suppress head and neck tumor metastasis. PLOS Comput Biol 2010; 6(4): e1000730

[24] Scheid S, Spang R. twilight; a Bioconductor package for estimating the local false discovery rate. Bioinformatics 2005; 21(12): 2921–2922

[25] Bauer O, Sharir A, Kimura A, Hantisteanu S, Takeda S, Groner Y. Loss of osteoblast Runx3 produces severe congenital osteopenia. Mol Cell Biol 2015; 35(7): 1097–1109

[26] Kim HJ, Park J, Lee SK, Kim KR, Park KK, Chung WY. Loss of RUNX3 expression promotes cancer-associated bone destruction by regulating CCL5, CCL19 and CXCL11 in non-small cell lung cancer. J Pathol 2015; 237(4): 520–531

[27] Reppe S, Refvem H, Gautvik VT, Olstad OK, Høvring PI, Reinholt FP, Holden M, Frigessi A, Jemtland R, Gautvik KM. Eight genes are highly associated with BMD variation in postmenopausal Caucasian women. Bone 2010; 46(3): 604–612

[28] Niu G, Li B, Sun J, Sun L. miR-454 is down-regulated in osteosarcomas and suppresses cell proliferation and invasion by directly targeting c-Met. Cell Prolif 2015; 48(3): 348–355

[29] Huang RL, Yuan Y, Zou GM, Liu G, Tu J, Li Q. LPS-stimulated inflammatory environment inhibits BMP-2-induced osteoblastic differentiation through crosstalk between TLR4/MyD88/NF-kB and BMP/Smad signaling. Stem Cells Dev 2014; 23(3): 277–289160;

[30] Ando M, Shibuya A, Tsuchiya K, Akiba T, Nitta K. Reduced capacity of mononuclear cells to synthesize cytokines against an inflammatory stimulus in uremic patients. Nephron Clin Pract 2006; 104(3): c113–c119

[31] Wang ZS, Xu DM, Guan GJ, Cui MY, Wei Y, Tang LJ, Jia XY, Li WB. Clinical significance of toll-like receptor 4 expression on the surface of peripheral blood mononuclear cells in uremic patients. Natl Med J China (Zhonghua Yi Xue Za Zhi) 2010; 90(34): 2389–2391 (in Chinese)

[32] He X, Wang H, Jin T, Xu Y, Mei L, Yang J. TLR4 activation promotes bone marrow MSC proliferation and osteogenic differentiation via Wnt3a and Wnt5a signaling. PLoS One 2016; 11(3): e0149876

[33] Herzmann N, Salamon A, Fiedler T, Peters K. Lipopolysaccharide induces proliferation and osteogenic differentiation of adipose-derived mesenchymal stromal cells in vitro via TLR4 activation. Exp Cell Res 2017; 350(1): 115–122

[34] Taganov KD, Boldin MP, Chang KJ, Baltimore D. NF-κB-dependent induction of microRNA miR-146, an inhibitor targeted to signaling proteins of innate immune responses. Proc Natl Acad Sci USA 2006; 103(33): 12481–12486

[35] Sato T, Liu X, Nelson A, Nakanishi M, Kanaji N, Wang X, Kim M, Li Y, Sun J, Michalski J, Patil A, Basma H, Holz O, Magnussen H, Rennard SI. Reduced miR-146a increases prostaglandin E₂ in chronic obstructive pulmonary disease fibroblasts. Am J Respir Crit Care Med 2010; 182(8): 1020–1029

[36] Cheng HS, Sivachandran N, Lau A, Boudreau E, Zhao JL, Baltimore D, Delgado-Olguin P, Cybulsky MI, Fish JE. MicroRNA-146 represses endothelial activation by inhibiting pro-inflammatory pathways. EMBO Mol Med 2013; 5(7): 1017–1034

[37] Larner-Svensson HM, Williams AE, Tsitsiou E, Perry MM, Jiang X, Chung KF, Lindsay MA. Pharmacological studies of the mechanism and function of interleukin-1β-induced miRNA-146a expression in primary human airway smooth muscle. Respir Res 2010; 11(1): 68

[38] Perry MM, Moschos SA, Williams AE, Shepherd NJ, Larner-Svensson HM, Lindsay MA. Rapid changes in microRNA-146a expression negatively regulate the IL-1β-induced inflammatory response in human lung alveolar epithelial cells. J Immunol 2008; 180(8): 5689–5698

[39] Curtale G, Mirolo M, Renzi TA, Rossato M, Bazzoni F, Locati M. Negative regulation of Toll-like receptor 4 signaling by IL-10-dependent microRNA-146b. Proc Natl Acad Sci USA 2013; 110(28): 11499–11504

[40] Asai Y, Hirokawa Y, Niwa K, Ogawa T. Osteoclast differentiation by human osteoblastic cell line SaOS-2 primed with bacterial lipid A. FEMS Immunol Med Microbiol 2003; 38(1): 71–79

[41] Fetahu IS, Tennakoon S, Lines KE, Gröschel C, Aggarwal A, Mesteri I, Baumgartner-Parzer S, Mader RM, Thakker RV, Kállay E. miR-135b- and miR-146b-dependent silencing of calcium-sensing receptor expression in colorectal tumors. Int J Cancer 2016; 138(1): 137–145

[42] Bover J, Aguilar A, Baas J, Reyes J, Lloret MJ, Farré N, Olaya M, Canal C, Marco H, Andrés E, Trinidad P, Ballarin J. Calcimimetics in the chronic kidney disease-mineral and bone disorder. Int J Artif Organs 2009; 32(2): 108–121

[43] Oishi T, Uezumi A, Kanaji A, Yamamoto N, Yamaguchi A, Yamada H, Tsuchida K. Osteogenic differentiation capacity of human skeletal muscle-derived progenitor cells. PLoS One 2013; 8(2): e56641

[44] Kato S, Chmielewski M, Honda H, Pecoits-Filho R, Matsuo S, Yuzawa Y, Tranaeus A, Stenvinkel P, Lindholm B. Aspects of immune dysfunction in end-stage renal disease. Clin J Am Soc Nephrol 2008; 3(5): 1526–1533

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg