Function of Slit/Robo signaling in breast cancer

Feng Gu , Yongjie Ma , Jiao Zhang , Fengxia Qin , Li Fu

Front. Med. ›› 2015, Vol. 9 ›› Issue (4) : 431 -436.

PDF (340KB)
Front. Med. ›› 2015, Vol. 9 ›› Issue (4) : 431 -436. DOI: 10.1007/s11684-015-0416-9
REVIEW
REVIEW

Function of Slit/Robo signaling in breast cancer

Author information +
History +
PDF (340KB)

Abstract

Slit and Robo are considered tumor suppressors because they are frequently inactivated in various tumor tissue. These genes are closely correlated with CpG hypermethylation in their promoters. The Slit/Robo signaling pathway is reportedly involved in breast cancer development and metastasis. Overexpression of Slit/Robo induces its tumor suppressive effects possibly by inactivating the β-catenin/LEF/TCF and PI3K/Akt signaling pathways or by altering β-catenin/E-cadherin-mediated cell-cell adhesion in breast cancer cells. Furthermore, loss of Slit proteins or their Robo receptors upregulates the CXCL12/CXCR4 signaling axis in human breast carcinoma. In addition, this pathway regulates the distant migration of breast cancer cells not only by mediating the phosphorylation of the downstream molecules of CXCL12/CXCR4 and srGAPs, such as PI3K/Src, RAFTK/ Pyk2, and CDC42, but also by regulating the activities of MAP kinases. This review includes recent studies on the functions of Slit/Robo signaling in breast cancer and its molecular mechanisms.

Keywords

Slit/Robo / hypermethylation / β-catenin / CXCL12/CXCR4 / migration

Cite this article

Download citation ▾
Feng Gu, Yongjie Ma, Jiao Zhang, Fengxia Qin, Li Fu. Function of Slit/Robo signaling in breast cancer. Front. Med., 2015, 9(4): 431-436 DOI:10.1007/s11684-015-0416-9

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Nelson HDTyne KNaik ABougatsos CChan BKHumphrey L. Screening for breast cancer: an update for the U.S. Preventive Services Task Force. Ann Intern Med 2009151: 727–737

[2]

Landis SHMurray TBolden S,Wingo PA. Cancer statistics, 1999. CA Cancer J Clin 199949: 8–31

[3]

Greenberg PAHortobagyi GNSmith TLZiegler LDFrye DKBuzdar AU. Long-term follow-up of patients with complete remission following combination chemotherapy for metastatic breast cancer. J Clin Oncol 199614(8): 2197–2205

[4]

Rothberg J MHartley DAWalther Z,Artavanis-Tsakonas S. slit: an EGF-homologous locus of D. melanogaster involved in the development of the embryonic central nervous system. Cell 198855: 1047–1059

[5]

Qiu HZhu JYu JPu HDong R. SLIT2 is epigenetically silenced in ovarian cancers and suppresses growth when activated. Asian Pac J Cancer Prev 201112(3): 791–795

[6]

Huang ZWen PKong RCheng HZhang BQuan CBian ZChen MZhang ZChen XDu XLiu JZhu LFushimi KHua DWu JY. USP33 mediates Slit-Robo signaling in inhibiting colorectal cancer cell migration. Int J Cancer 2015136(8): 1792–1802

[7]

Morlot CThielens NMRavelli RBHemrika WRomijn RAGros PCusack SMcCarthy AA. Structural insights into the Slit-Robo complex. Proc Natl Acad Sci USA 2007104(38): 14923–14928

[8]

Wu JYFeng LPark HTHavlioglu NWen LTang HBacon KBJiang ZhZhang XcRao Y. The neuronal repellent Slit inhibits leukocyte chemotaxis induced by chemotactic factors. Nature 2001410(6831): 948–952

[9]

Holmes GPNegus KBurridge LRaman SAlgar EYamada TLittle MH. Distinct but overlapping expression patterns of two vertebrate slit homologs implies functional roles in CNS development and organogenesis. Mech Dev 199879(1-2): 57–72

[10]

Hohenester E. Structural insight into Slit-Robo signalling. Biochem Soc Trans 200836( 2): 251–256

[11]

Howitt JAClout NJHohenester E. Binding site for Robo receptors revealed by dissection of the leucine-rich repeat region of Slit. EMBO J 200423(22): 4406–4412

[12]

Ma WJZhou YLu DDong DTian XJWen JXZhang J. Reduced expression of Slit2 in renal cell carcinoma. Med Oncol 201431(1): 768

[13]

Prasad AFernandis AZRao YGanju RK. Slit protein-mediated inhibition of CXCR4-induced chemotactic and chemoinvasive signaling pathways in breast cancer cells. J Biol Chem 2004279(10): 9115–9124

[14]

Alvarez CTapia TCornejo VFernandez WMuñoz ACamus MAlvarez MDevoto LCarvallo P. Silencing of tumor suppressor genes RASSF1A, SLIT2, and WIF1 by promoter hypermethylation in hereditary breast cancer. Mol Carcinog 201352(6): 475–487

[15]

Dallol ADa Silva NFViacava PMinna JDBieche IMaher ERLatif F. SLIT2, a human homologue of the Drosophila Slit2 gene, has tumor suppressor activity and is frequently inactivated in lung and breast cancers. Cancer Res 200262(20): 5874–5880

[16]

Kim GELee KHChoi YDLee JSLee JHNam JHChoi CPark MHYoon JH. Detection of Slit2 promoter hypermethylation in tissue and serum samples from breast cancer patients. Virchows Arch 2011459(4): 383–390

[17]

Shivapurkar NMaitra AMilchgrub SGazdar AF. Deletions of chromosome 4 occur early during the pathogenesis of colorectal carcinoma. Hum Pathol 200132(2): 169–177

[18]

Shivapurkar NSood SWistuba IIVirmani AKMaitra AMilchgrub SMinna JDGazdar AF. Multiple regions of chromosome 4 demonstrating allelic losses in breast carcinomas. Cancer Res 199959(15): 3576–3580

[19]

Dallol AForgacs EMartinez ASekido YWalker RKishida TRabbitts PMaher ERMinna JDLatif F. Tumour specific promoter region methylation of the human homologue of the Drosophila Roundabout gene DUTT1 (ROBO1) in human cancers. Oncogene 200221(19): 3020–3028

[20]

Prasad AParuchuri VPreet ALatif FGanju RK. Slit-2 induces a tumor-suppressive effect by regulating beta-catenin in breast cancer cells. J Biol Chem 2008283(39): 26624–26633

[21]

Takeichi M. Cadherin cell adhesion receptors as a morphogenetic regulator. Science 1991251(5000): 1451–1455

[22]

Marlow RStrickland PLee JSWu XPebenito MBinnewies MLe EKMoran AMacias HCardiff RDSukumar SHinck L. SLITs suppress tumor growth in vivo by silencing Sdf1/Cxcr4 within breast epithelium. Cancer Res 200868(19): 7819–7827

[23]

Papkoff JRubinfeld BSchryver BPolakis P. Wnt-1 regulates free pools of catenins and stabilizes APC-catenin complexes. Mol Cell Biol 199616(5): 2128–2134

[24]

Tetsu OMcCormick F. Beta-catenin regulates expression of cyclin D1 in colon carcinoma cells. Nature 1999398(6726): 422–426

[25]

Chang PHHwang-Verslues WWChang YCChen CCHsiao MJeng YMChang KJLee EYShew JYLee WH. Activation of Robo1 signaling of breast cancer cells by Slit2 from stromal fibroblast restrains tumorigenesis via blocking PI3K/Akt/β-catenin pathway. Cancer Res 201272(18): 4652–4661

[26]

Müller AHomey BSoto HGe NCatron DBuchanan MEMcClanahan TMurphy EYuan WWagner SNBarrera JLMohar AVerástegui EZlotnik A. Involvement of chemokine receptors in breast cancer metastasis. Nature 2001410(6824): 50–56

[27]

Yuasa-Kawada JKinoshita-Kawada MRao YWu JY. Deubiquitinating enzyme USP33/VDU1 is required for Slit signaling in inhibiting breast cancer cell migration. Proc Natl Acad Sci USA 2009106(34): 14530–14535

[28]

Avraham HPark SYSchinkmann KAvraham S. RAFTK/Pyk2-mediated cellular signalling. Cell Signal 200012: 123–133

[29]

Park SYAvraham HAvraham S. Characterization of the tyrosine kinases RAFTK/Pyk2 and FAK in nerve growth factor-induced neuronal differentiation. J Biol Chem 2000275: 19768–19777

[30]

Nabeshima KInoue TShimao YSameshima T. Matrix metalloproteinases in tumor invasion: role for cell migration. Pathol Int 200252(4): 255–264

[31]

Beemiller PZhang YMohan SLevinsohn EGaeta IHoppe ADSwanson JA. A Cdc42 activation cycle coordinated by PI 3-kinase during Fc receptor-mediated phagocytosis. Mol Biol Cell 201021(3): 470–480

[32]

Wong KRen XRHuang YZXie YLiu GSaito HTang HWen LBrady-Kalnay SMMei LWu JYXiong WCRao Y. Signal transduction in neuronal migration: roles of GTPase activating proteins and the small GTPase Cdc42 in the Slit-Robo pathway. Cell 2001107(2): 209–221

[33]

Ghose AVan Vactor D. GAPs in Slit-Robo signaling. BioEssays 200224(5): 401–404

[34]

Cau JFaure SComps MDelsert CMorin N. A novel p21-activated kinase binds the actin and microtubule networks and induces microtubule stabilization. J Cell Biol 2001155(6): 1029–1042

[35]

Mertens GCassiman JJVan den Berghe HVermylen JDavid G. Cell surface heparan sulfate proteoglycans from human vascular endothelial cells. Core protein characterization and antithrombin III binding properties. J Biol Chem 1992267(28): 20435–20443

[36]

Liang YAnnan RSCarr SAPopp SMevissen MMargolis RKMargolis RU. Mammalian homologues of the Drosophila slit protein are ligands of the heparan sulfate proteoglycan glypican-1 in brain. J Biol Chem 1999274(25): 17885–17892

[37]

Schmid BCRezniczek GAFabjani GYoneda TLeodolter SZeillinger R. The neuronal guidance cue Slit2 induces targeted migration and may play a role in brain metastasis of breast cancer cells. Breast Cancer Res Treat 2007106(3): 333–342

[38]

Lee THAvraham HKJiang SAvraham S. Vascular endothelial growth factor modulates the transendothelial migration of MDA-MB-231 breast cancer cells through regulation of brain microvascular endothelial cell permeability. J Biol Chem 2003278(7): 5277–5284

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (340KB)

2968

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/