Stem cell homing-based tissue engineering using bioactive materials

Yinxian YU, Binbin SUN, Chengqing YI, Xiumei MO

PDF(256 KB)
PDF(256 KB)
Front. Mater. Sci. ›› 2017, Vol. 11 ›› Issue (2) : 93-105. DOI: 10.1007/s11706-017-0373-0
REVIEW ARTICLE
REVIEW ARTICLE

Stem cell homing-based tissue engineering using bioactive materials

Author information +
History +

Abstract

Tissue engineering focuses on repairing tissue and restoring tissue functions by employing three elements: scaffolds, cells and biochemical signals. In tissue engineering, bioactive material scaffolds have been used to cure tissue and organ defects with stem cell-based therapies being one of the best documented approaches. In the review, different biomaterials which are used in several methods to fabricate tissue engineering scaffolds were explained and show good properties (biocompatibility, biodegradability, and mechanical properties etc.) for cell migration and infiltration. Stem cell homing is a recruitment process for inducing the migration of the systemically transplanted cells, or host cells, to defect sites. The mechanisms and modes of stem cell homing-based tissue engineering can be divided into two types depending on the source of the stem cells: endogenous and exogenous. Exogenous stem cell-based bioactive scaffolds have the challenge of long-term culturing in vitro and for endogenous stem cells the biochemical signal homing recruitment mechanism is not clear yet. Although the stem cell homing-based bioactive scaffolds are attractive candidates for tissue defect therapies, based on in vitrostudies and animal tests, there is still a long way before clinical application.

Keywords

stem cell homing / cell migration / cell proliferation / tissue engineering / scaffold / biochemical signals

Cite this article

Download citation ▾
Yinxian YU, Binbin SUN, Chengqing YI, Xiumei MO. Stem cell homing-based tissue engineering using bioactive materials. Front. Mater. Sci., 2017, 11(2): 93‒105 https://doi.org/10.1007/s11706-017-0373-0

References

[1]
Nucera S, Biziato D, De Palma M. The interplay between macrophages and angiogenesis in development, tissue injury and regeneration. The International Journal of Developmental Biology, 2011, 55(4–5): 495–503
CrossRef Pubmed Google scholar
[2]
Tanaka H, Sugimoto H, Yoshioka T, . Role of granulocyte elastase in tissue injury in patients with septic shock complicated by multiple-organ failure. Annals of Surgery, 1991, 213(1): 81–85
CrossRef Pubmed Google scholar
[3]
Chancellor M B, Huard J, Capelli C, . Rapid preparation of stem cell matrices for use in tissue and organ treatment and repair. European Patent, EP1372398, 2013-07-10
[4]
Schrier R W, Parikh C R. Comparison of renal injury in myeloablative autologous, myeloablative allogeneic and non-myeloablative allogeneic haematopoietic cell transplantation. Nephrology, Dialysis, Transplantation, 2005, 20(4): 678–683
CrossRef Pubmed Google scholar
[5]
Battiston B, Geuna S, Ferrero M, . Nerve repair by means of tubulization: literature review and personal clinical experience comparing biological and synthetic conduits for sensory nerve repair. Microsurgery, 2005, 25(4): 258–267
CrossRef Pubmed Google scholar
[6]
Wiria F E, Leong K F, Chua C K, . Poly-ε-caprolactone/hydroxyapatite for tissue engineering scaffold fabrication via selective laser sintering. Acta Biomaterialia, 2007, 3(1): 1–12
CrossRef Pubmed Google scholar
[7]
Luo Y, Shoichet M S. A photolabile hydrogel for guided three-dimensional cell growth and migration. Nature Materials, 2004, 3(4): 249–253
CrossRef Pubmed Google scholar
[8]
Atala A. Engineering tissues, organs and cells. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine, 2007, 1(2): 83–96
CrossRef Pubmed Google scholar
[9]
Hutmacher D W, Sittinger M, Risbud M V. Scaffold-based tissue engineering: rationale for computer-aided design and solid free-form fabrication systems. Trends in Biotechnology, 2004, 22(7): 354–362
CrossRef Pubmed Google scholar
[10]
Meinel L, Karageorgiou V, Fajardo R, . Bone tissue engineering using human mesenchymal stem cells: effects of scaffold material and medium flow. Annals of Biomedical Engineering, 2004, 32(1): 112–122
CrossRef Pubmed Google scholar
[11]
Giannobile W V. Periodontal tissue engineering by growth factors. Bone, 1996, 19(1 Suppl): 23–37
CrossRef Pubmed Google scholar
[12]
Ito Y. Tissue engineering by immobilized growth factors. Materials Science and Engineering C, 1998, 6(4): 267–274
CrossRef Google scholar
[13]
Gallagher K A, Liu Z J, Xiao M, . Diabetic impairments in NO-mediated endothelial progenitor cell mobilization and homing are reversed by hyperoxia and SDF-1α. The Journal of Clinical Investigation, 2007, 117(5): 1249–1259
CrossRef Pubmed Google scholar
[14]
Wojakowski W, Kucia M, Milewski K, . The role of CXCR4/SDF-1, CD117/SCF, and c-met/HGF chemokine signalling in the mobilization of progenitor cells and the parameters of the left ventricular function, remodelling, and myocardial perfusion following acute myocardial infarction. European Heart Journal Supplements, 2008, 10(suppl K): K16–K23
CrossRef Google scholar
[15]
Schenk S, Mal N, Finan A, . Monocyte chemotactic protein-3 is a myocardial mesenchymal stem cell homing factor. Stem Cells, 2007, 25(1): 245–251
CrossRef Pubmed Google scholar
[16]
Chen F M, Zhang M, Wu Z F. Toward delivery of multiple growth factors in tissue engineering. Biomaterials, 2010, 31(24): 6279–6308
CrossRef Pubmed Google scholar
[17]
Brody S, Pandit A. Approaches to heart valve tissue engineering scaffold design. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials, 2007, 83B(1): 16–43
CrossRef Pubmed Google scholar
[18]
Gao C, Wan Y, Yang C, . Preparation and characterization of bacterial cellulose sponge with hierarchical pore structure as tissue engineering scaffold. Journal of Porous Materials, 2011, 18(2): 139–145
CrossRef Google scholar
[19]
Jha B S, Ayres C E, Bowman J R, . Electrospun collagen: a tissue engineering scaffold with unique functional properties in a wide variety of applications.Journal of Nanomaterials, 2011, (15): 367–371
[20]
Zhu H, Ji J, Shen J. Biomacromolecules electrostatic self-assembly on 3-dimensional tissue engineering scaffold. Biomacromolecules, 2004, 5(5): 1933–1939
CrossRef Pubmed Google scholar
[21]
McManus M C, Boland E D, Simpson D G, . Electrospun fibrinogen: feasibility as a tissue engineering scaffold in a rat cell culture model. Journal of Biomedical Materials Research Part A, 2007, 81(2): 299–309
CrossRef Pubmed Google scholar
[22]
Chen Q Z, Thompson I D, Boccaccini A R. 45S5 Bioglass-derived glass–ceramic scaffolds for bone tissue engineering. Biomaterials, 2006, 27(11): 2414–2425
CrossRef Pubmed Google scholar
[23]
Xu T, Miszuk J M, Zhao Y, . Electrospun polycaprolactone 3D nanofibrous scaffold with interconnected and hierarchically structured pores for bone tissue engineering. Advanced Healthcare Materials, 2015, 4(15): 2238–2246
CrossRef Pubmed Google scholar
[24]
Yin G B, Zhang Y Z, Wang S D, . Study of the electrospun PLA/silk fibroin-gelatin composite nanofibrous scaffold for tissue engineering. Journal of Biomedical Materials Research Part A, 2010, 93(1): 158–163 
Pubmed
[25]
Sakimura K, Matsumoto T, Miyamoto C, . Effects of insulin-like growth factor I on transforming growth factor β1 induced chondrogenesis of synovium-derived mesenchymal stem cells cultured in a polyglycolic acid scaffold. Cells, Tissues, Organs, 2006, 183(2): 55–61
CrossRef Pubmed Google scholar
[26]
Ma Z, Gao C, Gong Y, . Cartilage tissue engineering PLLA scaffold with surface immobilized collagen and basic fibroblast growth factor. Biomaterials, 2005, 26(11): 1253–1259
CrossRef Pubmed Google scholar
[27]
Park S A, Lee S H, Kim W D. Fabrication of porous polycaprolactone/hydroxyapatite (PCL/HA) blend scaffolds using a 3D plotting system for bone tissue engineering. Bioprocess and Biosystems Engineering, 2011, 34(4): 505–513
CrossRef Pubmed Google scholar
[28]
Kim S H, Kwon J H, Chung M S, . Fabrication of a new tubular fibrous PLCL scaffold for vascular tissue engineering. Journal of Biomaterials Science. Polymer Edition, 2006, 17(12): 1359–1374
CrossRef Pubmed Google scholar
[29]
Rockwood D N, Preda R C, Yücel T, . Materials fabrication from Bombyx mori silk fibroin. Nature Protocols, 2011, 6(10): 1612–1631
CrossRef Pubmed Google scholar
[30]
Yang J W, Zhang Y F, Sun Z Y, . Dental pulp tissue engineering with bFGF-incorporated silk fibroin scaffolds. Journal of Biomaterials Applications, 2015, 30(2): 221–229
CrossRef Pubmed Google scholar
[31]
Zhang K, Wang H, Huang C, . Fabrication of silk fibroin blended P(LLA-CL) nanofibrous scaffolds for tissue engineering. Journal of Biomedical Materials Research Part A, 2010, 93(3): 984–993
Pubmed
[32]
Prabhakaran M P, Venugopal J R, Chyan T T, . Electrospun biocomposite nanofibrous scaffolds for neural tissue engineering. Tissue Engineering Part A, 2008, 14(11): 1787–1797
CrossRef Pubmed Google scholar
[33]
Courtney T, Sacks M S, Stankus J, . Design and analysis of tissue engineering scaffolds that mimic soft tissue mechanical anisotropy. Biomaterials, 2006, 27(19): 3631–3638
Pubmed
[34]
Burdick J A, Anseth K S. Photoencapsulation of osteoblasts in injectable RGD-modified PEG hydrogels for bone tissue engineering. Biomaterials, 2002, 23(22): 4315–4323
CrossRef Pubmed Google scholar
[35]
Sill T J, von Recum H A. Electrospinning: applications in drug delivery and tissue engineering. Biomaterials, 2008, 29(13): 1989–2006
CrossRef Pubmed Google scholar
[36]
Huang Z M, Zhang Y Z, Kotaki M, . A review on polymer nanofibers by electrospinning and their applications in nanocomposites. Composites Science and Technology, 2003, 63(15): 2223–2253
CrossRef Google scholar
[37]
Jin H J, Chen J, Karageorgiou V, . Human bone marrow stromal cell responses on electrospun silk fibroin mats. Biomaterials, 2004, 25(6): 1039–1047
CrossRef Pubmed Google scholar
[38]
Panseri S, Cunha C, Lowery J, . Electrospun micro- and nanofiber tubes for functional nervous regeneration in sciatic nerve transections. BMC Biotechnology, 2008, 8(1): 39
CrossRef Pubmed Google scholar
[39]
Wang C Y, Liu J J, Fan C Y, . The effect of aligned core–shell nanofibres delivering NGF on the promotion of sciatic nerve regeneration. Journal of Biomaterials Science: Polymer Edition, 2012, 23(1–4): 167–184
CrossRef Pubmed Google scholar
[40]
Keshaw H, Thapar N, Burns A J, . Microporous collagen spheres produced via thermally induced phase separation for tissue regeneration. Acta Biomaterialia, 2010, 6(3): 1158–1166
CrossRef Pubmed Google scholar
[41]
Chun K W, Cho K C, Kim S H, . Controlled release of plasmid DNA from biodegradable scaffolds fabricated using a thermally-induced phase-separation method. Journal of Biomaterials Science: Polymer Edition, 2004, 15(11): 1341–1353
CrossRef Pubmed Google scholar
[42]
Ma H, Hu J, Ma P X. Polymer scaffolds for small-diameter vascular tissue engineering. Advanced Functional Materials, 2010, 20(17): 2833–2841
CrossRef Pubmed Google scholar
[43]
Kim M, Kim G H. Electrohydrodynamic direct printing of PCL/collagen fibrous scaffolds with a core/shell structure for tissue engineering applications. Chemical Engineering Journal, 2015, 279: 317–326
CrossRef Google scholar
[44]
Lee J W, Choi Y J, Yong W J, . Development of a 3D cell printed construct considering angiogenesis for liver tissue engineering. Biofabrication, 2016, 8(1): 015007
CrossRef Pubmed Google scholar
[45]
Goole J, Amighi K. 3D printing in pharmaceutics: A new tool for designing customized drug delivery systems. International Journal of Pharmaceutics, 2016, 499(1–2): 376–394160;
CrossRef Pubmed Google scholar
[46]
Beltrami A P, Barlucchi L, Torella D, . Adult cardiac stem cells are multipotent and support myocardial regeneration. Cell, 2003, 114(6): 763–776
CrossRef Pubmed Google scholar
[47]
Daley G Q, Scadden D T. Prospects for stem cell-based therapy. Cell, 2008, 132(4): 544–548
CrossRef Pubmed Google scholar
[48]
Sieveking D P, Ng M K C. Cell therapies for therapeutic angiogenesis: back to the bench. Vascular Medicine, 2009, 14(2): 153–166
CrossRef Pubmed Google scholar
[49]
Bajada S, Mazakova I, Richardson J B, . Updates on stem cells and their applications in regenerative medicine. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine, 2008, 2(4): 169–183
CrossRef Pubmed Google scholar
[50]
Teo A K K, Vallier L. Emerging use of stem cells in regenerative medicine. The Biochemical Journal, 2010, 428(1): 11–23
CrossRef Pubmed Google scholar
[51]
Quesenberry P J, Becker P S. Stem cell homing: rolling, crawling, and nesting. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1998, 95(26): 15155–15157
CrossRef Pubmed Google scholar
[52]
Khaldoyanidi S. Directing stem cell homing. Cell Stem Cell, 2008, 2(3): 198–200
CrossRef Pubmed Google scholar
[53]
Nakatomi H, Kuriu T, Okabe S, . Regeneration of hippocampal pyramidal neurons after ischemic brain injury by recruitment of endogenous neural progenitors. Cell, 2002, 110(4): 429–441
CrossRef Pubmed Google scholar
[54]
Méndez-Ferrer S, Michurina T V, Ferraro F, . Mesenchymal and haematopoietic stem cells form a unique bone marrow niche. Nature, 2010, 466(7308): 829–834
CrossRef Pubmed Google scholar
[55]
Chen F M, Zhang J, Zhang M, . A review on endogenous regenerative technology in periodontal regenerative medicine. Biomaterials, 2010, 31(31): 7892–7927
CrossRef Pubmed Google scholar
[56]
Gomillion C T, Burg K J L. Stem cells and adipose tissue engineering. Biomaterials, 2006, 27(36): 6052–6063
CrossRef Pubmed Google scholar
[57]
Salcedo L, Sopko N, Jiang H H, . Chemokine upregulation in response to anal sphincter and pudendal nerve injury: potential signals for stem cell homing. International Journal of Colorectal Disease, 2011, 26(12): 1577–1581
CrossRef Pubmed Google scholar
[58]
Ko I K, Lee S J, Atala A, . In situ tissue regeneration through host stem cell recruitment. Experimental & Molecular Medicine, 2013, 45(11): e57
CrossRef Pubmed Google scholar
[59]
Zhou B, Han Z C, Poon M C, . Mesenchymal stem/stromal cells (MSC) transfected with stromal derived factor 1 (SDF-1) for therapeutic neovascularization: enhancement of cell recruitment and entrapment. Medical Hypotheses, 2007, 68(6): 1268–1271
CrossRef Pubmed Google scholar
[60]
Butler J M, Guthrie S M, Koc M, . SDF-1 is both necessary and sufficient to promote proliferative retinopathy. The Journal of Clinical Investigation, 2005, 115(1): 86–93
CrossRef Pubmed Google scholar
[61]
Zernecke A, Schober A, Bot I, . SDF-1α/CXCR4 axis is instrumental in neointimal hyperplasia and recruitment of smooth muscle progenitor cells. Circulation Research, 2005, 96(7): 784–791
CrossRef Pubmed Google scholar
[62]
Thevenot P, Nair A, Shen J, . The effect of incorporation of SDF-1α into PLGA scaffolds on stem cell recruitment and the inflammatory response. Biomaterials, 2010, 31(14): 3997–4008
CrossRef Pubmed Google scholar
[63]
Riccardo L, Planell J A, Mateos-Timoneda M A, . Role of ECM/peptide coatings on SDF-1α triggered mesenchymal stromal cell migration from microcarriers for cell therapy. Acta Biomaterialia, 2015, 18: 59–67
CrossRef Pubmed Google scholar
[64]
Nakamura T, Nishizawa T, Hagiya M, . Molecular cloning and expression of human hepatocyte growth factor. Nature, 1989, 342(6248): 440–443
CrossRef Pubmed Google scholar
[65]
Patel M B, Pothula S P, Xu Z, . The role of the hepatocyte growth factor/c-MET pathway in pancreatic stellate cell-endothelial cell interactions: anti-angiogenic implications in pancreatic cancer. Carcinogenesis, 2014, 35(8): S9
[66]
Neuss S, Becher E, Wöltje M, . Functional expression of HGF and HGF receptor/c-met in adult human mesenchymal stem cells suggests a role in cell mobilization, tissue repair, and wound healing. Stem Cells, 2004, 22(3): 405–414
CrossRef Pubmed Google scholar
[67]
Schenk S, Mal N, Finan A, . Monocyte chemotactic protein-3 is a myocardial mesenchymal stem cell homing factor. Stem Cells, 2007, 25(1): 245–251
CrossRef Pubmed Google scholar
[68]
De Becker A, Van Hummelen P, Bakkus M, . Migration of culture-expanded human mesenchymal stem cells through bone marrow endothelium is regulated by matrix metalloproteinase-2 and tissue inhibitor of metalloproteinase-3. Haematologica, 2007, 92(4): 440–449
CrossRef Pubmed Google scholar
[69]
Border W A, Noble N A. Transforming growth factor β in tissue fibrosis. The New England Journal of Medicine, 1994, 331(19): 1286–1292
CrossRef Pubmed Google scholar
[70]
Huang Q, Goh J C, Hutmacher D W, . In vivo mesenchymal cell recruitment by a scaffold loaded with transforming growth factor β1 and the potential for in situ chondrogenesis. Tissue Engineering, 2002, 8(3): 469–482
CrossRef Pubmed Google scholar
[71]
Ferrara N, Davis-Smyth T. The biology of vascular endothelial growth factor. Endocrine Reviews, 1997, 18(1): 4–25
Pubmed
[72]
Aiello L P, Avery R L, Arrigg P G, . Vascular endothelial growth factor in ocular fluid of patients with diabetic retinopathy and other retinal disorders. The New England Journal of Medicine, 1994, 331(22): 1480–1487
CrossRef Pubmed Google scholar
[73]
Elçin Y M, Dixit V, Gitnick G. Extensive in vivo angiogenesis following controlled release of human vascular endothelial cell growth factor: implications for tissue engineering and wound healing. Artificial Organs, 2001, 25(7): 558–565
CrossRef Pubmed Google scholar
[74]
Kim S H, Hur W, Kim J E, . Self-assembling peptide nanofibers coupled with neuropeptide substance P for bone tissue engineering. Tissue Engineering Part A, 2015, 21(7–8): 1237–1246
CrossRef Pubmed Google scholar
[75]
Zhao L, Weir M D, Xu H H K. An injectable calcium phosphate-alginate hydrogel-umbilical cord mesenchymal stem cell paste for bone tissue engineering. Biomaterials, 2010, 31(25): 6502–6510
CrossRef Pubmed Google scholar
[76]
Olmos Buitrago J, Perez R A, El-Fiqi A, . Core–shell fibrous stem cell carriers incorporating osteogenic nanoparticulate cues for bone tissue engineering. Acta Biomaterialia, 2015, 28: 183–192
CrossRef Pubmed Google scholar
[77]
Yilgor P, Sousa R A, Reis R L, . 3D plotted PCL scaffolds for stem cell based bone tissue engineering. Macromolecular Symposia, 2008, 269(1): 92–99
CrossRef Google scholar
[78]
Ye C, Hu P, Ma M X, . PHB/PHBHHx scaffolds and human adipose-derived stem cells for cartilage tissue engineering. Biomaterials, 2009, 30(26): 4401–4406
CrossRef Pubmed Google scholar
[79]
Lee C H, Cook J L, Mendelson A, . Regeneration of the articular surface of the rabbit synovial joint by cell homing: a proof of concept study. Lancet, 2010, 376(9739): 440–448
CrossRef Pubmed Google scholar
[80]
Erggelet C, Endres M, Neumann K, . Formation of cartilage repair tissue in articular cartilage defects pretreated with microfracture and covered with cell-free polymer-based implants. Journal of Orthopaedic Research, 2009, 27(10): 1353–1360
CrossRef Pubmed Google scholar
[81]
Wang A, Tang Z, Park I H, . Induced pluripotent stem cells for neural tissue engineering. Biomaterials, 2011, 32(22): 5023–5032
CrossRef Pubmed Google scholar
[82]
Zhuang Y M, Huojia M, Xu H, . Effects of transforming growth factor-β_3 and dental pulp stem cells in repairing rabbit facial nerve injury. Journal of Chinese Practical Diagnosis and Therapy, 2015, (7) (in Chinese)
[83]
Zhu T, Tang Q, Shen Y, . An acellular cerebellar biological scaffold: Preparation, characterization, biocompatibility and effects on neural stem cells. Brain Research Bulletin, 2015, 113: 48–57
CrossRef Pubmed Google scholar
[84]
Jin G, Prabhakaran M P, Ramakrishna S. Stem cell differentiation to epidermal lineages on electrospun nanofibrous substrates for skin tissue engineering. Acta Biomaterialia, 2011, 7(8): 3113–3122
CrossRef Pubmed Google scholar
[85]
Healy K E, Guldberg R E. Bone tissue engineering. Journal of Musculoskeletal & Neuronal Interactions, 2007, 7(4): 328–330
Pubmed
[86]
Barnes B, Boden S D, Louis-Ugbo J, . Lower dose of rhBMP-2 achieves spine fusion when combined with an osteoconductive bulking agent in non-human primates. Spine, 2005, 30(10): 1127–1133
CrossRef Pubmed Google scholar
[87]
Goekoop-Ruiterman Y P M, de Vries-Bouwstra J K, Allaart C F, . Clinical and radiographic outcomes of four different treatment strategies in patients with early rheumatoid arthritis (the Best study): a randomized, controlled trial. Arthritis and Rheumatology, 2005, 52(11): 3381–3390
CrossRef Pubmed Google scholar
[88]
Ko I K, Lee S J, Atala A, . In situ tissue regeneration through host stem cell recruitment. Experimental & Molecular Medicine, 2013, 45(11): e57
CrossRef Pubmed Google scholar
[89]
Sirko S, Neitz A, Mittmann T, . Focal laser-lesions activate an endogenous population of neural stem/progenitor cells in the adult visual cortex. Brain, 2009, 132(8): 2252–2264
CrossRef Pubmed Google scholar
[90]
Jayarama Reddy V, Radhakrishnan S, Ravichandran R, . Nanofibrous structured biomimetic strategies for skin tissue regeneration. Wound Repair and Regeneration, 2013, 21(1): 1–16
CrossRef Pubmed Google scholar
[91]
Kamel R A, Ong J F, Eriksson E, . Tissue engineering of skin. Journal of the American College of Surgeons, 2013, 217(3): 533–555
CrossRef Pubmed Google scholar
[92]
Ma K, Liao S, He L, . Effects of nanofiber/stem cell composite on wound healing in acute full-thickness skin wounds. Tissue Engineering Part A, 2011, 17(9–10): 1413–1424
CrossRef Pubmed Google scholar

Acknowledgement

This research was supported by the National Natural Science Foundation of China (Grant No. 81371979).

RIGHTS & PERMISSIONS

2017 Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg
AI Summary AI Mindmap
PDF(256 KB)

Accesses

Citations

Detail

Sections
Recommended

/