Stem cell homing-based tissue engineering using bioactive materials

Yinxian YU , Binbin SUN , Chengqing YI , Xiumei MO

Front. Mater. Sci. ›› 2017, Vol. 11 ›› Issue (2) : 93 -105.

PDF (256KB)
Front. Mater. Sci. ›› 2017, Vol. 11 ›› Issue (2) : 93 -105. DOI: 10.1007/s11706-017-0373-0
REVIEW ARTICLE
REVIEW ARTICLE

Stem cell homing-based tissue engineering using bioactive materials

Author information +
History +
PDF (256KB)

Abstract

Tissue engineering focuses on repairing tissue and restoring tissue functions by employing three elements: scaffolds, cells and biochemical signals. In tissue engineering, bioactive material scaffolds have been used to cure tissue and organ defects with stem cell-based therapies being one of the best documented approaches. In the review, different biomaterials which are used in several methods to fabricate tissue engineering scaffolds were explained and show good properties (biocompatibility, biodegradability, and mechanical properties etc.) for cell migration and infiltration. Stem cell homing is a recruitment process for inducing the migration of the systemically transplanted cells, or host cells, to defect sites. The mechanisms and modes of stem cell homing-based tissue engineering can be divided into two types depending on the source of the stem cells: endogenous and exogenous. Exogenous stem cell-based bioactive scaffolds have the challenge of long-term culturing in vitro and for endogenous stem cells the biochemical signal homing recruitment mechanism is not clear yet. Although the stem cell homing-based bioactive scaffolds are attractive candidates for tissue defect therapies, based on in vitrostudies and animal tests, there is still a long way before clinical application.

Keywords

stem cell homing / cell migration / cell proliferation / tissue engineering / scaffold / biochemical signals

Cite this article

Download citation ▾
Yinxian YU, Binbin SUN, Chengqing YI, Xiumei MO. Stem cell homing-based tissue engineering using bioactive materials. Front. Mater. Sci., 2017, 11(2): 93-105 DOI:10.1007/s11706-017-0373-0

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Nucera SBiziato DDe Palma M. The interplay between macrophages and angiogenesis in development, tissue injury and regeneration. The International Journal of Developmental Biology201155(4–5): 495–503

[2]

Tanaka HSugimoto HYoshioka T. Role of granulocyte elastase in tissue injury in patients with septic shock complicated by multiple-organ failure. Annals of Surgery1991213(1): 81–85

[3]

Chancellor M BHuard JCapelli C. Rapid preparation of stem cell matrices for use in tissue and organ treatment and repair. European Patent, EP1372398, 2013-07-10

[4]

Schrier R WParikh C R. Comparison of renal injury in myeloablative autologous, myeloablative allogeneic and non-myeloablative allogeneic haematopoietic cell transplantation. Nephrology, Dialysis, Transplantation200520(4): 678–683

[5]

Battiston BGeuna SFerrero M. Nerve repair by means of tubulization: literature review and personal clinical experience comparing biological and synthetic conduits for sensory nerve repair. Microsurgery200525(4): 258–267

[6]

Wiria F ELeong K FChua C K. Poly-ε-caprolactone/hydroxyapatite for tissue engineering scaffold fabrication via selective laser sintering. Acta Biomaterialia20073(1): 1–12

[7]

Luo YShoichet M S. A photolabile hydrogel for guided three-dimensional cell growth and migration. Nature Materials20043(4): 249–253

[8]

Atala A. Engineering tissues, organs and cells. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine20071(2): 83–96

[9]

Hutmacher D WSittinger MRisbud M V. Scaffold-based tissue engineering: rationale for computer-aided design and solid free-form fabrication systems. Trends in Biotechnology200422(7): 354–362

[10]

Meinel LKarageorgiou VFajardo R. Bone tissue engineering using human mesenchymal stem cells: effects of scaffold material and medium flow. Annals of Biomedical Engineering200432(1): 112–122

[11]

Giannobile W V. Periodontal tissue engineering by growth factors. Bone199619(1 Suppl): 23–37

[12]

Ito Y. Tissue engineering by immobilized growth factors. Materials Science and Engineering C19986(4): 267–274

[13]

Gallagher K ALiu Z JXiao M. Diabetic impairments in NO-mediated endothelial progenitor cell mobilization and homing are reversed by hyperoxia and SDF-1α. The Journal of Clinical Investigation2007117(5): 1249–1259

[14]

Wojakowski WKucia MMilewski K. The role of CXCR4/SDF-1, CD117/SCF, and c-met/HGF chemokine signalling in the mobilization of progenitor cells and the parameters of the left ventricular function, remodelling, and myocardial perfusion following acute myocardial infarction. European Heart Journal Supplements200810(suppl K): K16–K23

[15]

Schenk SMal NFinan A. Monocyte chemotactic protein-3 is a myocardial mesenchymal stem cell homing factor. Stem Cells200725(1): 245–251

[16]

Chen F MZhang MWu Z F. Toward delivery of multiple growth factors in tissue engineering. Biomaterials201031(24): 6279–6308

[17]

Brody SPandit A. Approaches to heart valve tissue engineering scaffold design. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials200783B(1): 16–43

[18]

Gao CWan YYang C. Preparation and characterization of bacterial cellulose sponge with hierarchical pore structure as tissue engineering scaffold. Journal of Porous Materials201118(2): 139–145

[19]

Jha B SAyres C EBowman J R. Electrospun collagen: a tissue engineering scaffold with unique functional properties in a wide variety of applications.Journal of Nanomaterials2011, (15): 367–371

[20]

Zhu HJi JShen J. Biomacromolecules electrostatic self-assembly on 3-dimensional tissue engineering scaffold. Biomacromolecules20045(5): 1933–1939

[21]

McManus M CBoland E DSimpson D G. Electrospun fibrinogen: feasibility as a tissue engineering scaffold in a rat cell culture model. Journal of Biomedical Materials Research Part A200781(2): 299–309

[22]

Chen Q ZThompson I DBoccaccini A R. 45S5 Bioglass-derived glass–ceramic scaffolds for bone tissue engineering. Biomaterials200627(11): 2414–2425

[23]

Xu TMiszuk J MZhao Y. Electrospun polycaprolactone 3D nanofibrous scaffold with interconnected and hierarchically structured pores for bone tissue engineering. Advanced Healthcare Materials20154(15): 2238–2246

[24]

Yin G BZhang Y ZWang S D. Study of the electrospun PLA/silk fibroin-gelatin composite nanofibrous scaffold for tissue engineering. Journal of Biomedical Materials Research Part A201093(1): 158–163 

[25]

Sakimura KMatsumoto TMiyamoto C. Effects of insulin-like growth factor I on transforming growth factor β1 induced chondrogenesis of synovium-derived mesenchymal stem cells cultured in a polyglycolic acid scaffold. Cells, Tissues, Organs2006183(2): 55–61

[26]

Ma ZGao CGong Y. Cartilage tissue engineering PLLA scaffold with surface immobilized collagen and basic fibroblast growth factor. Biomaterials200526(11): 1253–1259

[27]

Park S ALee S HKim W D. Fabrication of porous polycaprolactone/hydroxyapatite (PCL/HA) blend scaffolds using a 3D plotting system for bone tissue engineering. Bioprocess and Biosystems Engineering201134(4): 505–513

[28]

Kim S HKwon J HChung M S. Fabrication of a new tubular fibrous PLCL scaffold for vascular tissue engineering. Journal of Biomaterials Science. Polymer Edition200617(12): 1359–1374

[29]

Rockwood D NPreda R CYücel T. Materials fabrication from Bombyx mori silk fibroin. Nature Protocols20116(10): 1612–1631

[30]

Yang J WZhang Y FSun Z Y. Dental pulp tissue engineering with bFGF-incorporated silk fibroin scaffolds. Journal of Biomaterials Applications201530(2): 221–229

[31]

Zhang KWang HHuang C. Fabrication of silk fibroin blended P(LLA-CL) nanofibrous scaffolds for tissue engineering. Journal of Biomedical Materials Research Part A201093(3): 984–993

[32]

Prabhakaran M PVenugopal J RChyan T T. Electrospun biocomposite nanofibrous scaffolds for neural tissue engineering. Tissue Engineering Part A200814(11): 1787–1797

[33]

Courtney TSacks M SStankus J. Design and analysis of tissue engineering scaffolds that mimic soft tissue mechanical anisotropy. Biomaterials200627(19): 3631–3638

[34]

Burdick J AAnseth K S. Photoencapsulation of osteoblasts in injectable RGD-modified PEG hydrogels for bone tissue engineering. Biomaterials200223(22): 4315–4323

[35]

Sill T Jvon Recum H A. Electrospinning: applications in drug delivery and tissue engineering. Biomaterials200829(13): 1989–2006

[36]

Huang Z MZhang Y ZKotaki M. A review on polymer nanofibers by electrospinning and their applications in nanocomposites. Composites Science and Technology200363(15): 2223–2253

[37]

Jin H JChen JKarageorgiou V. Human bone marrow stromal cell responses on electrospun silk fibroin mats. Biomaterials200425(6): 1039–1047

[38]

Panseri SCunha CLowery J. Electrospun micro- and nanofiber tubes for functional nervous regeneration in sciatic nerve transections. BMC Biotechnology20088(1): 39

[39]

Wang C YLiu J JFan C Y. The effect of aligned core–shell nanofibres delivering NGF on the promotion of sciatic nerve regeneration. Journal of Biomaterials Science: Polymer Edition201223(1–4): 167–184

[40]

Keshaw HThapar NBurns A J. Microporous collagen spheres produced via thermally induced phase separation for tissue regeneration. Acta Biomaterialia20106(3): 1158–1166

[41]

Chun K WCho K CKim S H. Controlled release of plasmid DNA from biodegradable scaffolds fabricated using a thermally-induced phase-separation method. Journal of Biomaterials Science: Polymer Edition200415(11): 1341–1353

[42]

Ma HHu JMa P X. Polymer scaffolds for small-diameter vascular tissue engineering. Advanced Functional Materials201020(17): 2833–2841

[43]

Kim MKim G H. Electrohydrodynamic direct printing of PCL/collagen fibrous scaffolds with a core/shell structure for tissue engineering applications. Chemical Engineering Journal2015279: 317–326

[44]

Lee J WChoi Y JYong W J. Development of a 3D cell printed construct considering angiogenesis for liver tissue engineering. Biofabrication20168(1): 015007

[45]

Goole JAmighi K. 3D printing in pharmaceutics: A new tool for designing customized drug delivery systems. International Journal of Pharmaceutics2016499(1–2): 376–394160;

[46]

Beltrami A PBarlucchi LTorella D. Adult cardiac stem cells are multipotent and support myocardial regeneration. Cell2003114(6): 763–776

[47]

Daley G QScadden D T. Prospects for stem cell-based therapy. Cell2008132(4): 544–548

[48]

Sieveking D PNg M K C. Cell therapies for therapeutic angiogenesis: back to the bench. Vascular Medicine200914(2): 153–166

[49]

Bajada SMazakova IRichardson J B. Updates on stem cells and their applications in regenerative medicine. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine20082(4): 169–183

[50]

Teo A K KVallier L. Emerging use of stem cells in regenerative medicine. The Biochemical Journal2010428(1): 11–23

[51]

Quesenberry P JBecker P S. Stem cell homing: rolling, crawling, and nesting. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America199895(26): 15155–15157

[52]

Khaldoyanidi S. Directing stem cell homing. Cell Stem Cell20082(3): 198–200

[53]

Nakatomi HKuriu TOkabe S. Regeneration of hippocampal pyramidal neurons after ischemic brain injury by recruitment of endogenous neural progenitors. Cell2002110(4): 429–441

[54]

Méndez-Ferrer SMichurina T VFerraro F. Mesenchymal and haematopoietic stem cells form a unique bone marrow niche. Nature2010466(7308): 829–834

[55]

Chen F MZhang JZhang M. A review on endogenous regenerative technology in periodontal regenerative medicine. Biomaterials201031(31): 7892–7927

[56]

Gomillion C TBurg K J L. Stem cells and adipose tissue engineering. Biomaterials200627(36): 6052–6063

[57]

Salcedo LSopko NJiang H H. Chemokine upregulation in response to anal sphincter and pudendal nerve injury: potential signals for stem cell homing. International Journal of Colorectal Disease201126(12): 1577–1581

[58]

Ko I KLee S JAtala AIn situ tissue regeneration through host stem cell recruitment. Experimental & Molecular Medicine201345(11): e57

[59]

Zhou BHan Z CPoon M C. Mesenchymal stem/stromal cells (MSC) transfected with stromal derived factor 1 (SDF-1) for therapeutic neovascularization: enhancement of cell recruitment and entrapment. Medical Hypotheses200768(6): 1268–1271

[60]

Butler J MGuthrie S MKoc M. SDF-1 is both necessary and sufficient to promote proliferative retinopathy. The Journal of Clinical Investigation2005115(1): 86–93

[61]

Zernecke ASchober ABot I. SDF-1α/CXCR4 axis is instrumental in neointimal hyperplasia and recruitment of smooth muscle progenitor cells. Circulation Research200596(7): 784–791

[62]

Thevenot PNair AShen J. The effect of incorporation of SDF-1α into PLGA scaffolds on stem cell recruitment and the inflammatory response. Biomaterials201031(14): 3997–4008

[63]

Riccardo LPlanell J AMateos-Timoneda M A. Role of ECM/peptide coatings on SDF-1α triggered mesenchymal stromal cell migration from microcarriers for cell therapy. Acta Biomaterialia201518: 59–67

[64]

Nakamura TNishizawa THagiya M. Molecular cloning and expression of human hepatocyte growth factor. Nature1989342(6248): 440–443

[65]

Patel M BPothula S PXu Z. The role of the hepatocyte growth factor/c-MET pathway in pancreatic stellate cell-endothelial cell interactions: anti-angiogenic implications in pancreatic cancer. Carcinogenesis201435(8): S9

[66]

Neuss SBecher EWöltje M. Functional expression of HGF and HGF receptor/c-met in adult human mesenchymal stem cells suggests a role in cell mobilization, tissue repair, and wound healing. Stem Cells200422(3): 405–414

[67]

Schenk SMal NFinan A. Monocyte chemotactic protein-3 is a myocardial mesenchymal stem cell homing factor. Stem Cells200725(1): 245–251

[68]

De Becker AVan Hummelen PBakkus M. Migration of culture-expanded human mesenchymal stem cells through bone marrow endothelium is regulated by matrix metalloproteinase-2 and tissue inhibitor of metalloproteinase-3. Haematologica200792(4): 440–449

[69]

Border W ANoble N A. Transforming growth factor β in tissue fibrosis. The New England Journal of Medicine1994331(19): 1286–1292

[70]

Huang QGoh J CHutmacher D WIn vivo mesenchymal cell recruitment by a scaffold loaded with transforming growth factor β1 and the potential for in situ chondrogenesis. Tissue Engineering20028(3): 469–482

[71]

Ferrara NDavis-Smyth T. The biology of vascular endothelial growth factor. Endocrine Reviews199718(1): 4–25

[72]

Aiello L PAvery R LArrigg P G. Vascular endothelial growth factor in ocular fluid of patients with diabetic retinopathy and other retinal disorders. The New England Journal of Medicine1994331(22): 1480–1487

[73]

Elçin Y MDixit VGitnick G. Extensive in vivo angiogenesis following controlled release of human vascular endothelial cell growth factor: implications for tissue engineering and wound healing. Artificial Organs200125(7): 558–565

[74]

Kim S HHur WKim J E. Self-assembling peptide nanofibers coupled with neuropeptide substance P for bone tissue engineering. Tissue Engineering Part A201521(7–8): 1237–1246

[75]

Zhao LWeir M DXu H H K. An injectable calcium phosphate-alginate hydrogel-umbilical cord mesenchymal stem cell paste for bone tissue engineering. Biomaterials201031(25): 6502–6510

[76]

Olmos Buitrago JPerez R AEl-Fiqi A. Core–shell fibrous stem cell carriers incorporating osteogenic nanoparticulate cues for bone tissue engineering. Acta Biomaterialia201528: 183–192

[77]

Yilgor PSousa R AReis R L. 3D plotted PCL scaffolds for stem cell based bone tissue engineering. Macromolecular Symposia2008269(1): 92–99

[78]

Ye CHu PMa M X. PHB/PHBHHx scaffolds and human adipose-derived stem cells for cartilage tissue engineering. Biomaterials200930(26): 4401–4406

[79]

Lee C HCook J LMendelson A. Regeneration of the articular surface of the rabbit synovial joint by cell homing: a proof of concept study. Lancet2010376(9739): 440–448

[80]

Erggelet CEndres MNeumann K. Formation of cartilage repair tissue in articular cartilage defects pretreated with microfracture and covered with cell-free polymer-based implants. Journal of Orthopaedic Research200927(10): 1353–1360

[81]

Wang ATang ZPark I H. Induced pluripotent stem cells for neural tissue engineering. Biomaterials201132(22): 5023–5032

[82]

Zhuang Y MHuojia MXu H. Effects of transforming growth factor-β_3 and dental pulp stem cells in repairing rabbit facial nerve injury. Journal of Chinese Practical Diagnosis and Therapy2015, (7) (in Chinese)

[83]

Zhu TTang QShen Y. An acellular cerebellar biological scaffold: Preparation, characterization, biocompatibility and effects on neural stem cells. Brain Research Bulletin2015113: 48–57

[84]

Jin GPrabhakaran M PRamakrishna S. Stem cell differentiation to epidermal lineages on electrospun nanofibrous substrates for skin tissue engineering. Acta Biomaterialia20117(8): 3113–3122

[85]

Healy K EGuldberg R E. Bone tissue engineering. Journal of Musculoskeletal & Neuronal Interactions20077(4): 328–330

[86]

Barnes BBoden S DLouis-Ugbo J. Lower dose of rhBMP-2 achieves spine fusion when combined with an osteoconductive bulking agent in non-human primates. Spine200530(10): 1127–1133

[87]

Goekoop-Ruiterman Y P Mde Vries-Bouwstra J KAllaart C F. Clinical and radiographic outcomes of four different treatment strategies in patients with early rheumatoid arthritis (the Best study): a randomized, controlled trial. Arthritis and Rheumatology200552(11): 3381–3390

[88]

Ko I KLee S JAtala AIn situ tissue regeneration through host stem cell recruitment. Experimental & Molecular Medicine201345(11): e57

[89]

Sirko SNeitz AMittmann T. Focal laser-lesions activate an endogenous population of neural stem/progenitor cells in the adult visual cortex. Brain2009132(8): 2252–2264

[90]

Jayarama Reddy VRadhakrishnan SRavichandran R. Nanofibrous structured biomimetic strategies for skin tissue regeneration. Wound Repair and Regeneration201321(1): 1–16

[91]

Kamel R AOng J FEriksson E. Tissue engineering of skin. Journal of the American College of Surgeons2013217(3): 533–555

[92]

Ma KLiao SHe L. Effects of nanofiber/stem cell composite on wound healing in acute full-thickness skin wounds. Tissue Engineering Part A201117(9–10): 1413–1424

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (256KB)

1789

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/