A new rabbit model of implant-related biofilm infection: development and evaluation

Cheng-Bing CHU , Hong ZENG , Ding-Xia SHEN , Hui WANG , Ji-Fang WANG , Fu-Zhai CUI

Front. Mater. Sci. ›› 2016, Vol. 10 ›› Issue (1) : 80 -89.

PDF (775KB)
Front. Mater. Sci. ›› 2016, Vol. 10 ›› Issue (1) : 80 -89. DOI: 10.1007/s11706-016-0324-1
RESEARCH ARTICLE
RESEARCH ARTICLE

A new rabbit model of implant-related biofilm infection: development and evaluation

Author information +
History +
PDF (775KB)

Abstract

This study is to establish a rabbit model for human prosthetic joint infection and biofilm formation. Thirty-two healthy adult rabbits were randomly divided into four groups and implanted with stainless steel screws and ultra-high molecular weight polyethylene (UHMWPE) washers in the non-articular surface of the femoral lateral condyle of the right hind knees. The rabbit knee joints were inoculated with 1 mL saline containing 0, 102, 103, 104 CFU of Staphylococcus epidermidis (S. epidermidis) isolated from the patient with total knee arthroplasty (TKA) infection, respectively. On the 14th postoperative day, the UHMWPE washers from the optimal 103 CFU group were further examined. The SEM examination showed a typical biofilm construction that circular S. epidermidis were embedded in a mucous-like matrix. In addition, the LCSM examination showed that the biofilm consisted of the polysaccharide stained bright green fluorescence and S. epidermidis radiating red fluorescence. Thus, we successfully create a rabbit model for prosthetic joint infection and biofilm formation, which should be valuable for biofilm studies.

Keywords

implant / infection / biofilm / model / rabbit

Cite this article

Download citation ▾
Cheng-Bing CHU, Hong ZENG, Ding-Xia SHEN, Hui WANG, Ji-Fang WANG, Fu-Zhai CUI. A new rabbit model of implant-related biofilm infection: development and evaluation. Front. Mater. Sci., 2016, 10(1): 80-89 DOI:10.1007/s11706-016-0324-1

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Kurtz S MLau EWatson H. Economic burden of periprosthetic joint infection in the United States. The Journal of Arthroplasty201227(8 Suppl): 61–65

[2]

Haenle MSkripitz CMittelmeier W. Economic impact of infected total hip arthroplasty in the German diagnosis-related groups system. Der Orthopade201241(6): 467–476

[3]

Haenle MSkripitz CMittelmeier W. Economic impact of infected total knee arthroplasty. The Scientific World Journal2012, (1): 196515

[4]

Kurtz S MLau ESchmier J. Infection burden for hip and knee arthroplasty in the United States. The Journal of Arthroplasty200823(7): 984–991

[5]

Del Pozo J LPatel R. Clinical practice. Infection associated with prosthetic joints. The New England Journal of Medicine2009361(8): 787–794

[6]

Phillips J ECrane T PNoy M. The incidence of deep prosthetic infections in a specialist orthopaedic hospital: a 15-year prospective survey. The Journal of Bone and Joint Surgery (British Volume)200688B(7): 943–948

[7]

Pulido LGhanem EJoshi A. Periprosthetic joint infection: the incidence, timing, and predisposing factors. Clinical Orthopaedics and Related Research2008466(7): 1710–1715

[8]

Jämsen EVaronen MHuhtala H. Incidence of prosthetic joint infections after primary knee arthroplasty. The Journal of Arthroplasty201025(1): 87–92

[9]

Kurtz SOng KLau E. Projections of primary and revision hip and knee arthroplasty in the United States from 2005 to 2030. The Journal of Bone and Joint Surgery (American Volume)200789(4): 780–785

[10]

Kurtz S MLau ESchmier J. Infection burden for hip and knee arthroplasty in the United States. The Journal of Arthroplasty200823(7): 984–991

[11]

Vuong COtto M. Staphylococcus epidermidis infections. Microbes and Infection20024(4): 481–489

[12]

Zimmerli WTrampuz AOchsner P E. Prosthetic-joint infections. The New England Journal of Medicine2004351(16): 1645–1654

[13]

Costerton WVeeh RShirtliff M. The application of biofilm science to the study and control of chronic bacterial infections. Journal of Clinical Investigation2003112(10): 1466–1477

[14]

Høiby NCiofu OJohansen H K. The clinical impact of bacterial biofilms. International Journal of Oral Science20113(2): 55–65

[15]

Percival S LHill K EMalic S. Antimicrobial tolerance and the significance of persister cells in recalcitrant chronic wound biofilms. Wound Repair and Regeneration201119(1): 1–9

[16]

Srinivasan AUppuluri PLopez-Ribot J. Development of a high-throughput Candida albicans biofilm chip. PLoS ONE20116(4): e19036

[17]

Zimmerli WMoser C. Pathogenesis and treatment concepts of orthopaedic biofilm infections. FEMS Immunology and Medical Microbiology201265(2): 158–168

[18]

Geipel U. Pathogenic organisms in hip joint infections. International Journal of Medical Sciences20096(5): 234–240

[19]

Pandey RBerendt A RAthanasou N A. Histological and microbiological findings in non-infected and infected revision arthroplasty tissues. Archives of Orthopaedic and Trauma Surgery2000120(10): 570–574

[20]

Talsma S S. Biofilms on medical devices. Home Healthcare Nurse200725(9): 589–594

[21]

Otto M. Staphylococcal biofilms. Current Topics in Microbiology and Immunology2008322: 207–228

[22]

Otto MStaphylococcus epidermidis — the ‘accidental’ pathogen. Nature Reviews: Microbiology20097(8): 555–567

[23]

Pribaz J RBernthal N MBilli F. Mouse model of chronic post-arthroplasty infection: noninvasive in vivo bioluminescence imaging to monitor bacterial burden for long-term study. Journal of Orthopaedic Research201230(3): 335–340

[24]

Scherr T DLindgren K ESchaeffer C R. Mouse model of post-arthroplasty Staphylococcus epidermidis joint infection. Methods in Molecular Biology20141106: 173–181

[25]

Søe N HJensen N VNürnberg B M. A novel knee prosthesis model of implant-related osteomyelitis in rats. Acta Orthopaedica201384(1): 92–97

[26]

Bernthal N MStavrakis A IBilli F. A mouse model of post-arthroplasty Staphylococcus aureus joint infection to evaluate in vivo the efficacy of antimicrobial implant coatings. PLoS ONE20105(9): e12580

[27]

Belmatoug NCrémieux A CBleton R. A new model of experimental prosthetic joint infection due to methicillin-resistant Staphylococcus aureus: a microbiologic, histopathologic, and magnetic resonance imaging characterization. The Journal of Infectious Diseases1996174(2): 414–417

[28]

Lucke MSchmidmaier GSadoni S. A new model of implant-related osteomyelitis in rats. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials200367B(1): 593–602

[29]

Craig M RPoelstra K ASherrell J C. A novel total knee arthroplasty infection model in rabbits. Journal of Orthopaedic Research200523(5): 1100–1104

[30]

Isenberg H DClinical Microbiology Procedure Handbook. 1st ed. Washington, DC: American Society for Microbiology1992

[31]

Steckelberg J MOsmon D R. Prosthetic joint infection. In: Waldvogel F A, ed. Infections Associated with Indwelling Medical Devices. 3rd ed. Washington, DC: ASM Press2000, 173–205

[32]

Montanaro LSpeziale PCampoccia D. Scenery of Staphylococcus implant infections in orthopedics. Future Microbiology20116(11): 1329–1349

[33]

Hellmark BSöderquist BUnemo M. Comparison of Staphylococcus epidermidis isolated from prosthetic joint infections and commensal isolates in regard to antibiotic susceptibility, agr type, biofilm production, and epidemiology. International Journal of Medical Microbiology2013303(1): 32–39

[34]

Chen-Charpentier B MStanescu D. Biofilm growth on medical implants with randomness. Mathematical and Computer Modelling201154(7–8): 1682–1686

[35]

Sendi PBanderet FGraber P. Clinical comparison between exogenous and haematogenous periprosthetic joint infections caused by Staphylococcus aureus. Clinical Microbiology and Infection201117(7): 1098–1100

[36]

Berbari E FHanssen A DDuffy M C. Risk factors for prosthetic joint infection: case-control study. Clinical Infectious Diseases199827(5): 1247–1254

[37]

Zimmerli WSendi P. Pathogenesis of implant-associated infection: the role of the host. Seminars in Immunopathology201133(3): 295–306

[38]

Rodet A. Physiologie pathologique – étudeexpérimentalesurl’ostéomyeliteinfectieuse. C R Acad Sci188599: 569–571

[39]

Zurexperimentellenerzeugungosteomyelitischerherde L EArch Klin Chir189448: 181–200

[40]

Rissing J PBuxton T BWeinstein R S. Model of experimental chronic osteomyelitis in rats. Infection & Immunity198547(3): 581–586

[41]

Fukushima NYokoyama KSasahara T. Establishment of rat model of acute staphylococcal osteomyelitis: relationship between inoculation dose and development of osteomyelitis. Archives of Orthopaedic & Trauma Surgery2005125(3): 169–176

[42]

Ofluoglu E AZileli MAydin D. Implant-related infection model in rat spine. Archives of Orthopaedic and Trauma Surgery2007127(5): 391–396

[43]

Poultsides L APapatheodorou L KKarachalios T S. Novel model for studying hematogenous infection in an experimental setting of implant-related infection by a community-acquired methicillin-resistant S. aureus strain. Journal of Orthopaedic Research200826(10): 1355–1362

[44]

Vogelyl H CDhertl W J AFleer A. The infected orthopaedic implant. An animal model to study the mechanisms of haematogenous infection of cementless implant materials. Euro-pean Journal of Orthopaedic Surgery & Traumatology19966(2): 91–95

[45]

Boles B RHorswill A R. Staphylococcal biofilm disassembly. Trends in Microbiology201119(9): 449–455

[46]

Mack DBecker PChatterjee I. Mechanisms of biofilm formation in Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus aureus: functional molecules, regulatory circuits, and adaptive responses. International Journal of Medical Microbiology2004294(2–3): 203–212

[47]

Stewart SBarr SEngiles J. Vancomycin-modified implant surface inhibits biofilm formation and supports bone-healing in an infected osteotomy model in sheep: a proof-of-concept study. The Journal of Bone and Joint Surgery (American Volume)201294(15): 1406–1415

[48]

Alt VLips K SHenkenbehrens C. A new animal model for implant-related infected non-unions after intramedullary fixation of the tibia in rats with fluorescent in situ hybridization of bacteria in bone infection. Bone201148(5): 1146–1153

[49]

Montanaro LPoggi AVisai L. Extracellular DNA in biofilms. The International Journal of Artificial Organs201134(9): 824–831

[50]

Cue DLei M GLee C Y. Genetic regulation of the intercellular adhesion locus in staphylococci. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology20122: 38

[51]

Foster T JGeoghegan J AGanesh V K. Adhesion, invasion and evasion: the many functions of the surface proteins of Staphylococcus aureus. Nature Reviews: Microbiology201312(1): 49–62

[52]

Stoodley PKathju SHu F Z. Molecular and imaging techniques for bacterial biofilms in joint arthroplasty infections. Clinical Orthopaedics and Related Research2005437: 31–40

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (775KB)

1300

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/