Salicylic acid-mediated plant defense: Recent developments, missing links, and future outlook

Ian Arthur Palmer , Zhenhua Shang , Zheng Qing Fu

Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (4) : 258 -270.

PDF (476KB)
Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (4) : 258 -270. DOI: 10.1007/s11515-017-1460-4
REVIEW
REVIEW

Salicylic acid-mediated plant defense: Recent developments, missing links, and future outlook

Author information +
History +
PDF (476KB)

Abstract

BACKGROUND: Plant pathogens are responsible for many of history’s greatest famines. Understanding how plants defend themselves against pathogens is crucial to preventing future famines. Salicylic acid (SA)-mediated plant defense is a key defense pathway, which plants use to defend against biotrophic and hemi-biotrophic pathogens. As a master regulator of SA-mediated plant defense, NPR1 interacts with TGA and WRKY transcription factor families, individual members of which positively or negatively regulate plant defense.

OBJECTIVE:In this review we describe the recent developments and predict future directions of research on the involvement of circadian rhythm-, autophagy-, and viral RNA silencing-related genes in SA-mediated plant defense on SA, on plant defense, the induction effects of PR proteins, and the mechanisms by which NPR1 regulates defense-related genes.

METHODS:We performed an extensive search of current and past literature using the PubMed, Google Scholar, and Google search engines. Our search terms included: “SA-mediated plant defense,” and “NPR1 [AND] salicylic acid.” Other search terms, wildcards, and Boolean operators were paired with “NPR1” or “plant defense” as needed to research more detailed information related to specific topics covered within this review. We also used Google to search for, “economic impact citrus greening,” “aspirin,” “Irish potato famine,” and “rice blast,” among other terms, to gather background information on the history and impact of plant diseases, and the historical use of aspirin.

RESULTS:Of 148 sources found, 132 were directly related to plant defense. The remaining sources are related to the historical and economic impact of plant diseases and the historical use and mechanism of action of aspirin or salicylate. All reviewed sources have been documented in the references section.

CONCLUSION:The topic of salicylic acid-mediated plant defense is broad, and new research is expanding our understanding of this topic quickly. In this review, we give a basic overview of the historical economic impact of plant diseases, and how an understanding of SA-mediated plant defense can prevent future famines. We provide a basic overview of plant defense, then discuss how SA acts as a defense signaling molecule.We discuss how SA regulates NPR1, which goes on to activate expression of SA-related genes includingPRgenes. Later, we discuss current research topics, including the role of NPR1 and SA in autophagy, circadian rhythmicity, viral gene silencing, SA biosynthesis, and SAR. We also discuss the potential roles of PR proteins, other SA binding proteins, WRKY and TGA family transcription factors, Elongator, and ER transport proteins in plant defense. Finally, we discuss the potential future routes that research into this topic could take, in order to further our understanding of role SA plays in plant defense.

Keywords

salicylic acid / plant defense / SA-mediated defense

Cite this article

Download citation ▾
Ian Arthur Palmer, Zhenhua Shang, Zheng Qing Fu. Salicylic acid-mediated plant defense: Recent developments, missing links, and future outlook. Front. Biol., 2017, 12(4): 258-270 DOI:10.1007/s11515-017-1460-4

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Agriculture, U.S.D.o . and  N.A.S.Service (2015). Citrus Fruits 2015 Summary (September 2015)

[2]

Alabadí DYanovsky  M JMás  PHarmer S L Kay S A  (2002). Critical role for CCA1 and LHY in maintaining circadian rhythmicity in Arabidopsis. Curr Biol12(9): 757–761 

[3]

Alamillo J MSaénz  PGarcía J A  (2006). Salicylic acid-mediated and RNA-silencing defense mechanisms cooperate in the restriction of systemic spread of plum pox virus in tobacco. Plant J48(2): 217–227

[4]

An CDing  YZhang X Wang CMou  Z (2016). Elongator plays a positive role in exogenous NAD-induced defense responses in ArabidopsisMol Plant Microbe Interact29(5): 396–404160;

[5]

An CMou  Z (2011). Salicylic acid and its function in plant immunity. J Integr Plant Biol53(6): 412–428160;

[6]

Anand AUppalapati  S RRyu  C MAllen  S NKang  LTang Y Mysore K S  (2008). Salicylic acid and systemic acquired resistance play a role in attenuating crown gall disease caused by Agrobacterium tumefaciens. Plant Physiol146(2): 703–715160;

[7]

Attaran EZeier  T EGriebel  TZeier J  (2009). Methyl salicylate production and jasmonate signaling are not essential for systemic acquired resistance in ArabidopsisPlant Cell21(3): 954–971160;

[8]

Axtell M JMcNellis  T WMudgett  M BHsu  C SStaskawicz  B J (2001). Mutational analysis of the Arabidopsis RPS2 disease resistance gene and the corresponding pseudomonas syringae avrRpt2 avirulence gene. Mol Plant Microbe Interact14(2): 181–188 160;

[9]

Bhattacharjee SHalane  M KKim  S HGassmann  W (2011). Pathogen effectors target Arabidopsis EDS1 and alter its interactions with immune regulators. Science334(6061): 1405–1408160;

[10]

Billington R A Bruzzone S De Flora A Genazzani A A Koch-Nolte F Ziegler M Zocchi E (2006). Emerging functions of extracellular pyridine nucleotides. Mol Med12(11-12): 324–327

[11]

Boller TFelix  G (2009). A renaissance of elicitors: perception of microbe-associated molecular patterns and danger signals by pattern-recognition receptors. Annu Rev Plant Biol60(1): 379–406160;

[12]

Cameron RZaton  K (2004). Intercellular salicylic acid accumulation is important for age-related resistance in Arabidopsis to Pseudomonas syringaePhysiol Mol Plant Pathol65(4): 197–209

[13]

Campos LGranell  PTárraga S López-Gresa P Conejero V Bellés J M Rodrigo I Lisón P  (2014). Salicylic acid and gentisic acid induce RNA silencing-related genes and plant resistance to RNA pathogens. Plant Physiol Biochem77: 35–43160;

[14]

Carr J PBeachy  R NKlessig  D F (1989). Are the PR1 proteins of tobacco involved in genetically engineered resistance to TMV? Virology169(2): 470–473

[15]

Carviel J LAl-Daoud  FNeumann M Mohammad A Provart N J Moeder W Yoshioka K Cameron R K  (2009). Forward and reverse genetics to identify genes involved in the age-related resistance response in Arabidopsis thalianaMol Plant Pathol10(5): 621–634160;

[16]

Carviel J LWilson  D CIsaacs  MCarella P Catana V Golding B Weretilnyk E A Cameron R K  (2014). Investigation of intercellular salicylic acid accumulation during compatible and incompatible Arabidopsis-Pseudomonas syringae interactions using a fast neutron-generated mutant allele of EDS5 identified by genetic mapping and whole-genome sequencing. PLoS One9(3): e88608160;

[17]

Chai JLiu  JZhou J Xing D (2014). Mitogen-activated protein kinase 6 regulates NPR1 gene expression and activation during leaf senescence induced by salicylic acid. J Exp Bot65(22): 6513–6528160;

[18]

Chen CChen  Z (2002). Potentiation of developmentally regulated plant defense response by AtWRKY18, a pathogen-induced Arabidopsis transcription factor. Plant Physiol129(2): 706–716160;

[19]

Chen FD’Auria  J CTholl  DRoss J R Gershenzon J Noel J P Pichersky E  (2003). An Arabidopsis thaliana gene for methylsalicylate biosynthesis, identified by a biochemical genomics approach, has a role in defense. Plant J36(5): 577–588160;

[20]

Cheng WMunkvold  K RGao  HMathieu J Schwizer S Wang SYan  Y BWang  JMartin G B Chai J (2011). Structural analysis of Pseudomonas syringae AvrPtoB bound to host BAK1 reveals two similar kinase-interacting domains in a type III Effector. Cell Host Microbe10(6): 616–626160;

[21]

Choi H WManohar  MManosalva P Tian MMoreau  MKlessig D F  (2016). Activation of plant innate immunity by extracellular high mobility group Box 3 and its inhibition by salicylic acid. PLoS Pathog12(3): e1005518160;

[22]

Colaneri A CTunc-Ozdemir  MHuang J P Jones A M  (2014). Growth attenuation under saline stress is mediated by the heterotrimeric G protein complex. BMC Plant Biol14(1): 129–139160;

[23]

Curto MCamafeita  ELopez J A Maldonado A M Rubiales D Jorrín J V  (2006). A proteomic approach to study pea (Pisum sativum) responses to powdery mildew (Erysiphe pisi). Proteomics6(S1 Suppl 1): S163–S174160;

[24]

De Meyer G H M  (1997). Salicylic acid produced by the Rhizobacterium Pseudomonas aeruginosa 7NSK2 induces resistance to leaf infection by Botrytis cinerea on Bean., Gent, Belgium: Phytopathology.

[25]

Dean J VMohammed  L AFitzpatrick  T (2005). The formation, vacuolar localization, and tonoplast transport of salicylic acid glucose conjugates in tobacco cell suspension cultures. Planta221(2): 287–296160;

[26]

Dean J V M Mills J D  (2004). Uptake of salicylic acid 2-O-beta-D-glucose into soybean tonoplast vesicles by an ATP-binding cassette transporter-type mechanism. Physiol Plant120(4): 603–612160;

[27]

Delaney T P (2005). Salicylic Acid. In: Davies P J (Ed.), Plant Hormones: Biosynthesis, Signal Tranduction, Action!, Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands. pp. 635–653

[28]

Delaney T PUknes  SVernooij B Friedrich L Weymann K Negrotto D Gaffney T Gut-Rella M Kessmann H Ward ERyals  J (1994). A central role of salicylic acid in plant disease resistance. Science266(5188): 1247–1250160;

[29]

Després CChubak  CRochon A Clark R Bethune T Desveaux D Fobert P R  (2003). The Arabidopsis NPR1 disease resistance protein is a novel cofactor that confers redox regulation of DNA binding activity to the basic domain/leucine zipper transcription factor TGA1. Plant Cell15(9): 2181–2191160;

[30]

Després CDeLong  CGlaze S Liu EFobert  P R (2000). The Arabidopsis NPR1/NIM1 protein enhances the DNA binding activity of a subgroup of the TGA family of bZIP transcription factors. Plant Cell12(2): 279–290160;

[31]

DeWitt D Lel-Harith  E AKraemer  S AAndrews  M JYao  E FArmstrong  R LSmith  W L (1990). The aspirin and heme-binding sites of ovine and murine prostaglandin endoperoxide synthases. J Biol Chem265(9): 5192–5198

[32]

Ding YDommel  MMou Z  (2016). Abscisic acid promotes proteasome-mediated degradation of the transcription coactivator NPR1 in Arabidopsis thaliana. Plant J86(1): 20–34

[33]

Dong JChen  CChen Z  (2003). Expression profiles of the Arabidopsis WRKY gene superfamily during plant defense response. Plant Mol Biol51(1): 21–37160;

[34]

Durrant W EDong  X (2004). Systemic acquired resistance. Annu Rev Phytopathol42(1): 185–209160;

[35]

Edgar R SGreen  E WZhao  Yvan Ooijen G Olmedo M Qin XXu  YPan M Valekunja U K Feeney K A Maywood E S Hastings M H Baliga N S Merrow M Millar A J Johnson C H Kyriacou C P O’Neill J S Reddy A B  (2012). Peroxiredoxins are conserved markers of circadian rhythms. Nature485(7399): 459–464

[36]

Eulgem TRushton  P JRobatzek  SSomssich I E  (2000). The WRKY superfamily of plant transcription factors. Trends Plant Sci5(5): 199–206160;

[37]

Eulgem TSomssich  I E (2007). Networks of WRKY transcription factors in defense signaling. Curr Opin Plant Biol10(4): 366–371

[38]

Falk AFeys  B JFrost  L NJones  J DDaniels  M JParker  J E(1999). EDS1, an essential component of R gene-mediated disease resistance in Arabidopsis has homology to eukaryotic lipases. Proc Natl Acad Sci USA96(6): 3292–3297

[39]

Fan WDong  X (2002). In vivo interaction between NPR1 and transcription factor TGA2 leads to salicylic acid-mediated gene activation in ArabidopsisPlant Cell14(6): 1377–1389160;

[40]

Feys B JMoisan  L JNewman  M AParker  J E (2001). Direct interaction between the Arabidopsis disease resistance signaling proteins, EDS1 and PAD4. EMBO J20(19): 5400–5411160;

[41]

Feys B J,Wiermer  MBhat R A Moisan L J Medina-Escobar N Neu CCabral  AParker J E  (2005). Arabidopsis SENESCENCE-ASSOCIATED GENE101 stabilizes and signals within an ENHANCED DISEASE SUSCEPTIBILITY1 complex in plant innate immunity. Plant Cell17(9): 2601–2613160;

[42]

Fragnière C Serrano M Abou-Mansour E Métraux J P L’Haridon F  (2011). Salicylic acid and its location in response to biotic and abiotic stress. FEBS Lett585(12): 1847–1852160;

[43]

Fu JKreibich  G (2000). Retention of subunits of the oligosaccharyltransferase complex in the endoplasmic reticulum. J Biol Chem275(6): 3984–3990

[44]

Fu Z QDong  X (2013). Systemic acquired resistance: turning local infection into global defense. Annu Rev Plant Biol64(1): 839–863160;

[45]

Gamir JDarwiche  RVan't Hof P Choudhary V Stumpe M Schneiter R Mauch F (2017). The sterol-binding activity of PATHOGENESIS-RELATED PROTEIN 1 reveals the mode of action of an antimicrobial protein. The Plant Journal89(3):502–509

[46]

Glazebrook J (2005). Contrasting mechanisms of defense against biotrophic and necrotrophic pathogens. Annu Rev Phytopathol43(1): 205–227160;

[47]

Goldfine A BFonseca  VJablonski K A Chen Y D Tipton L Staten M A Shoelson S E , and the Targeting Inflammation Using Salsalate in Type 2 Diabetes Study Team (2013). Salicylate (salsalate) in patients with type 2 diabetes: a randomized trial. Ann Intern Med159(1): 1–12160;

[48]

Govrin E M L Levine A  (2002). Infection of Arabidopsis with a necrotrophic pathogen, Botrytis cinerea, elicits various defense responses but does not induce systemic acquired resistance (SAR). Plant Mol Biol48(3): 267–276160;

[49]

Gráda Ó C (2007). Ireland's Great Famine. Dublin: University College Dublin Press

[50]

Hanaoka HNoda  TShirano Y Kato THayashi  HShibata D Tabata S Ohsumi Y  (2002). Leaf senescence and starvation-induced chlorosis are accelerated by the disruption of an Arabidopsis autophagy gene. Plant Physiol129(3): 1181–1193160;

[51]

Harmer S L(2009). The circadian system in higher plants. Annu Rev Plant Biol60(1): 357–377160;

[52]

Hawley S AFullerton  M DRoss  F ASchertzer  J DChevtzoff  CWalker K J Peggie M W Zibrova D Green K A Mustard K J Kemp B E Sakamoto K Steinberg G R Hardie D G  (2012). The ancient drug salicylate directly activates AMP-activated protein kinase. Science336(6083): 918–922160;

[53]

Heidrich KWirthmueller  LTasset C Pouzet C Deslandes L Parker J E  (2011). Arabidopsis EDS1 connects pathogen effector recognition to cell compartment-specific immune responses. Science334(6061): 1401–1404 160;

[54]

Huang JGu  MLai Z Fan BShi  KZhou Y H Yu J Q Chen Z (2010). Functional analysis of the Arabidopsis PAL gene family in plant growth, development, and response to environmental stress. Plant Physiol153(4): 1526–1538160;

[55]

Ishikawa A (2009). The Arabidopsis G-protein -subunit is required for defense response against Agrobacterium tumefaciensBiosci Biotechnol Biochem73(1): 47–52 

[56]

Jakoby MWeisshaar  BDröge-Laser W Vicente-Carbajosa J Tiedemann J Kroj TParcy  F, and the bZIP Research Group (2002). bZIP transcription factors in ArabidopsisTrends Plant Sci7(3): 106–111160;

[57]

Jelenska JYao  NVinatzer B A Wright C M Brodsky J L Greenberg J T  (2007). A J domain virulence effector of Pseudomonas syringae remodels host chloroplasts and suppresses defenses. Curr Biol17(6): 499–508160;

[58]

Ji L HDing  S W (2001). The suppressor of transgene RNA silencing encoded by Cucumber mosaic virus interferes with salicylic acid-mediated virus resistance. Mol Plant Microbe Interact14(6): 715–724160;

[59]

Jirage DTootle  T LReuber  T LFrost  L NFeys  B JParker  J EAusubel  F MGlazebrook  J (1999). Arabidopsis thaliana PAD4 encodes a lipase-like gene that is important for salicylic acid signaling. Proc Natl Acad Sci USA96(23): 13583–13588

[60]

Jovel JWalker  MSanfaçon H  (2011). Salicylic acid-dependent restriction of Tomato ringspot virus spread in tobacco is accompanied by a hypersensitive response, local RNA silencing, and moderate systemic resistance. Mol Plant Microbe Interact24(6): 706–718

[61]

Kasprzewska A (2003). Plant chitinases--regulation and function. Cell Mol Biol Lett8(3): 809–824

[62]

Kauffmann SLegrand  MGeoffroy P Fritig B  (1987). Biological function of; pathogenesis-related’ proteins: four PR proteins of tobacco have 1,3-β-glucanase activity. EMBO J6(11): 3209–3212

[63]

Kim H SDelaney  T P (2002). Over-expression of TGA5, which encodes a bZIP transcription factor that interacts with NIM1/NPR1, confers SAR-independent resistance in Arabidopsis thaliana to Peronospora parasiticaPlant J32(2): 151–163160;

[64]

Kim S HKwon  S IBhattacharjee  SGassmann W  (2009). Regulation of defense gene expression by Arabidopsis SRFR1. Plant Signal Behav4(2): 149–150

[65]

Klopffleisch KPhan  NAugustin K Bayne R S Booker K S Botella J R Carpita N C Carr TChen  J GCooke  T RFrick-Cheng  AFriedman E J Fulk BHahn  M GJiang  KJorda L Kruppe L Liu CLorek  JMcCann M C Molina A Moriyama E N Mukhtar M S Mudgil Y Pattathil S Schwarz J Seta STan  MTemp U Trusov Y Urano D Welter B Yang JPanstruga  RUhrig J F Jones A M  (2011). Arabidopsis G-protein interactome reveals connections to cell wall carbohydrates and morphogenesis. Mol Syst Biol7(1): 532160;

[66]

Kong QSun  TQu N Ma JLi  MCheng Y T Zhang Q Wu DZhang  ZZhang Y  (2016). Two redundant receptor-like cytoplasmic kinases function downstream of pattern recognition receptors to regulate activation of SA biosynthesis. Plant Physiol171(2): 1344–1354 

[67]

Kopp EGhosh  S (1994). Inhibition of NF-kappa B by sodium salicylate and aspirin. Science265(5174): 956–959160;

[68]

Kunta MSétamou  MSkaria M Rascoe J E Li WNakhla  M Kda Graça  J V (2012). First report of citrus huanglongbing in Texas. Phytopathology102: S4

[69]

Kwon S IKim  S HBhattacharjee  SNoh J J Gassmann W  (2009). SRFR1, a suppressor of effector-triggered immunity, encodes a conserved tetratricopeptide repeat protein with similarity to transcriptional repressors. Plant J57(1): 109–119160;

[70]

Lee SRojas  C MIshiga  YPandey S Mysore K S  (2013). Arabidopsis heterotrimeric G-proteins play a critical role in host and nonhost resistance against Pseudomonas syringae pathogens. PLoS One8(12): e82445160;

[71]

Legrand MKauffmann  SGeoffroy P Fritig B  (1987). Biological function of pathogenesis-related proteins: Four tobacco pathogenesis-related proteins are chitinases. Proc Natl Acad Sci USA84(19): 6750–6754

[72]

Li JBrader  GPalva E T  (2004). The WRKY70 transcription factor: a node of convergence for jasmonate-mediated and salicylate-mediated signals in plant defense. Plant Cell16(2): 319–331

[73]

Lin K HLin  K H (1956THE CITRUS HUANG LUNG BIN (GREENING) DISEASE IN CHINAActa Phytopathologica Sinica, Vol. II, Part 1, No. I, and Part 2, p. 1–11 and 14–38

[74]

Liu JDing  PSun T Nitta Y Dong OHuang  XYang W Li XBotella  JRZhang Y .(2013). Heterotrimeric G Proteins Serve as a Converging Point in Multiple Receptor-Like Kinases. Plant Physiol161(4):: 2146–2158

[75]

Liu LSonbol  F MHuot  BGu Y Withers J Mwimba M Yao JHe  S YDong  X (2016). Salicylic acid receptors activate jasmonic acid signalling through a non-canonical pathway to promote effector-triggered immunity. Nat Commun7:13099160;

[76]

Lorek JGriebel  TJones A M Kuhn HPanstruga  R (2013). The role of Arabidopsis heterotrimeric G-protein subunits in MLO2 function and MAMP-triggered immunity. Mol Plant Microbe Interact26(9): 991–1003

[77]

Lu HGreenberg  J THoluigue  L (2016). Editorial: Salicylic acid signaling networks. Front Plant Sci7: 238

[78]

Lu S XKnowles  S MAndronis  COng M S Tobin E M  (2009). CIRCADIAN CLOCK ASSOCIATED1 and LATE ELONGATED HYPOCOTYL function synergistically in the circadian clock of Arabidopsis. Plant Physiol150(2): 834–843

[79]

Mackey DBelkhadir  YAlonso J M Ecker J R Dangl J L  (2003). Arabidopsis RIN4 is a target of the type III virulence effector AvrRpt2 and modulates RPS2-mediated resistance. Cell112(3): 379–389160;

[80]

Maeda KHoujyou  YKomatsu T Hori HKodaira  TIshikawa A  (2009). AGB1 and PMR5 contribute to PEN2-mediated preinvasion resistance to Magnaporthe oryzae in Arabidopsis thalianaMol Plant Microbe Interact22(11): 1331–1340

[81]

Mangelsen EKilian  JBerendzen K W Kolukisaoglu U H Harter K Jansson C Wanke D  (2008). Phylogenetic and comparative gene expression analysis of barley (Hordeum vulgare) WRKY transcription factor family reveals putatively retained functions between monocots and dicots. BMC Genomics28(9):194

[82]

Mauch-Mani BSlusarenko  A J(1996). Production of salicylic acid precursors is a major function of phenylalanine ammonia-lyase in the resistance of Arabidopsis to Peronospora parasiticaPlant Cell8(2): 203–212

[83]

McClung C R (2008). Comes a time. Curr Opin Plant Biol11(5): 514–520160;

[84]

Miao YLaun  TZimmermann P Zentgraf U  (2004). Targets of the WRKY53 transcription factor and its role during leaf senescence in Arabidopsis. Plant Mol Biol55(6): 853–867160;

[85]

Mitsuhara IIwai  TSeo S Yanagawa Y Kawahigasi H Hirose S Ohkawa Y Ohashi Y  (2008). Characteristic expression of twelve rice PR1 family genes in response to pathogen infection, wounding, and defense-related signal compounds (121/180). Mol Genet Genomics279(4): 415–427 160;

[86]

Mizoguchi TWheatley  KHanzawa Y Wright L Mizoguchi M Song H R Carré I A Coupland G  (2002). LHY and CCA1 are partially redundant genes required to maintain circadian rhythms in Arabidopsis. Dev Cell2(5): 629–641160;

[87]

Mosher SMoeder  WNishimura N Jikumaru Y Joo S H Urquhart W Klessig D F Kim S K Nambara E Yoshioka K  (2010). The lesion-mimic mutant cpr22 shows alterations in abscisic acid signaling and abscisic acid insensitivity in a salicylic acid-dependent manner. Plant Physiol152(4): 1901–1913

[88]

Mou ZFan  WDong X  (2003). Inducers of plant systemic acquired resistance regulate NPR1 function through redox changes. Cell113(7): 935–944160;

[89]

Munch DRodriguez  EBressendorff S Park O K Hofius D Petersen M  (2014). Autophagy deficiency leads to accumulation of ubiquitinated proteins, ER stress, and cell death in ArabidopsisAutophagy10(9): 1579–1587 160;

[90]

Myers R L(2007). The 100 most important chemical compounds: a reference guide. p. 10–12.

[91]

Nawrath CHeck  SParinthawong N Métraux J P  (2002). EDS5, an essential component of salicylic acid-dependent signaling for disease resistance in Arabidopsis, is a member of the MATE transporter family. Plant Cell14(1): 275–286160;

[92]

Ndamukong IAbdallat  A AThurow  CFode B Zander M Weigel R Gatz C (2007). SA-inducible Arabidopsis glutaredoxin interacts with TGA factors and suppresses JA-responsive PDF1.2 transcription. Plant J50(1): 128–139160;

[93]

Nobuta KOkrent  R AStoutemyer  MRodibaugh N Kempema L Wildermuth M C Innes R W  (2007). The GH3 acyl adenylase family member PBS3 regulates salicylic acid-dependent defense responses in ArabidopsisPlant Physiol144(2): 1144–1156160;

[94]

Pajerowska-Mukhtar K M Emerine D K Mukhtar M S  (2013). Tell me more: roles of NPRs in plant immunity. Trends Plant Sci18(7): 402–411160;

[95]

Parker J EHolub  E BFrost  L NFalk  AGunn N D Daniels M J  (1996). Characterization of eds1, a mutation in Arabidopsis suppressing resistance to Peronospora parasitica specified by several different RPP genes. Plant Cell8(11): 2033–2046

[96]

Pieterse C M J Van der Does D Zamioudis C Leon-Reyes A Van Wees S C  (2012). Hormonal modulation of plant immunity. Annu Rev Cell Dev Biol28(1): 489–521160;

[97]

Pontier DMiao  Z HLam  E (2001). Trans-dominant suppression of plant TGA factors reveals their negative and positive roles in plant defense responses. Plant J27(6): 529–538160;

[98]

Preston F EWhipps  SJackson C A French A J Wyld P J Stoddard C J  (1981). Inhibition of prostacyclin and platelet thromboxane A2 after low-dose aspirin. N Engl J Med304(2): 76–79

[99]

Prins T WTudzynski  Pvon Tiedemann ATudzynski B Have A T Hansen M E Tenberge K van Kan J A L (2000). Infection Strategies of Botrytis cinerea and related necrotrophic pathogens. Fungal Pathology: p. 33–64

[100]

Raskin I (1992). Role of salicylic acid in plants. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol43(1): 439–462

[101]

Raskin ISkubatz  HTang W Meeuse B J D  (1990). Salicylic acid levels in thermogenic and non-thermogenic plants. Ann Bot (Lond)66(4): 369–373

[102]

Ross D(2002). Ireland: History of a Nation. Glasgow: Geddes& Grosset.

[103]

Saleh AWithers  JMohan R Marqués J Gu YYan  SZavaliev R Nomoto M Tada YDong  X (2015). Posttranslational modifications of the master transcriptional regulator NPR1 enable dynamic but tight control of plant immune responses. Cell Host Microbe18(2): 169–182

[104]

Scardaci S C(2016). Rice Blast: A New Disease in California. (Web Document)April 5.

[105]

Shine M BYang  J WEl-Habbak  MNagyabhyru P Fu D Q Navarre D Ghabrial S Kachroo P Kachroo A  (2016). Cooperative functioning between phenylalanine ammonia lyase and isochorismate synthase activities contributes to salicylic acid biosynthesis in soybean. New Phytologist212(3):627–636

[106]

Shulaev VSilverman  PRaskin I  (1997). Methyl salicylate–an airborn signal in pathogen resistance. Nature, (6618): 718–721

[107]

Slaymaker D H Navarre D A Clark D del Pozo  O Martin G B Klessig D F  (2002). The tobacco salicylic acid-binding protein 3 (SABP3) is the chloroplast carbonic anhydrase, which exhibits antioxidant activity and plays a role in the hypersensitive defense response. Proc Natl Acad Sci USA99(18): 11640–11645160;

[108]

Smith W LGaravito  R MDeWitt  D L (1996). Prostaglandin endoperoxide H synthases (cyclooxygenases)-1 and-2. J Biol Chem271(52): 33157–33160160;

[109]

Spoel S HJohnson  J SDong  X (2007). Regulation of tradeoffs between plant defenses against pathogens with different lifestyles. Proc Natl Acad Sci USA104(47): 18842–18847160;

[110]

Spoel S HMou  ZTada Y Spivey N W Genschik P Dong X (2009). Proteasome-mediated turnover of the transcription coactivator NPR1 plays dual roles in regulating plant immunity. Cell137(5): 860–872

[111]

Spoel S HMou  ZZhang X Pieterse C M J Dong X (2006). Regulatory Roles of NPR1 in Plant Defense: Regulation and Function. Utrecht University Repository

[112]

Strawn M AMarr  S KInoue  KInada N Zubieta C Wildermuth M C  (2007). Arabidopsis isochorismate synthase functional in pathogen-induced salicylate biosynthesis exhibits properties consistent with a role in diverse stress responses. J Biol Chem282(8): 5919–5933160;

[113]

Tada YSpoel  S HPajerowska-Mukhtar  KMou Z Song JWang  CZuo J Dong X (2008). Plant immunity requires conformational changes [corrected] of NPR1 via S-nitrosylation and thioredoxins. Science321(5891): 952–956160;

[114]

Talbot N J(2003). On the trail of a cereal killer: Exploring the biology of Magnaporthe griseaAnnu Rev Microbiol57(1): 177–202160;

[115]

Spreen T H (2012). The Economic Impact of HLB on the Florida Citrus Industry, in Food and Resource Economics. University of Florida

[116]

Tian Mvon Dahl  C CLiu  P PFriso  Gvan Wijk K J Klessig D F  (2012). The combined use of photoaffinity labeling and surface plasmon resonance-based technology identifies multiple salicylic acid-binding proteins. Plant J, 72(6): 1027–1038

[117]

Torres M AMorales  JSánchez-Rodríguez  CMolina A Dangl J L  (2013). Functional interplay between Arabidopsis NADPH oxidases and heterotrimeric G protein. Mol Plant Microbe Interact26(6): 686–694160;

[118]

Trombetta E S Parodi A J  (2003). Quality control and protein folding in the secretory pathway. Annu Rev Cell Dev Biol19(1): 649–676160;

[119]

Tsuda KKatagiri  F (2010). Comparing signaling mechanisms engaged in pattern-triggered and effector-triggered immunity. Curr Opin Plant Biol13(4): 459–465160;

[120]

Tully J PHill  A EAhmed  H MWhitley  RSkjellum A Mukhtar M S  (2014). Expression-based network biology identifies immune-related functional modules involved in plant defense. BMC Genomics15(1): 421160;

[121]

Van der Does D Leon-Reyes A Koornneef A Van Verk M C Rodenburg N Pauwels L Goossens A Körbes A P Memelink J Ritsema T Van Wees S C Pieterse C M  (2013). Salicylic acid suppresses jasmonic acid signaling downstream of SCFCOI1-JAZ by targeting GCC promoter motifs via transcription factor ORA59. Plant Cell25(2): 744–761160;

[122]

van Loon L C Rep MPieterse  C M (2006). Significance of inducible defense-related proteins in infected plants. Annu Rev Phytopathol44(1): 135–162160;

[123]

van Verk M C Neeleman L Bol J F Linthorst H J  (2011). Tobacco transcription factor NtWRKY12 interacts with TGA2.2 in vitro and  in vivoFront Plant Sci2(32): 32

[124]

Vitale ADenecke  J (1999). The endoplasmic reticulum-gateway of the secretory pathway. Plant Cell11(4): 615–628

[125]

Wagner SStuttmann  JRietz S Guerois R Brunstein E Bautor J Niefind K Parker J E  (2013). Structural basis for signaling by exclusive EDS1 heteromeric complexes with SAG101 or PAD4 in plant innate immunity. Cell Host Microbe14(6): 619–630160;

[126]

Wang DAmornsiripanitch  NDong X  (2006). A genomic approach to identify regulatory nodes in the transcriptional network of systemic acquired resistance in plants. PLoS Pathog2(11): e123160;

[127]

Wang DWeaver  N DKesarwani  MDong X  (2005). Induction of protein secretory pathway is required for systemic acquired resistance. Science308(5724): 1036–1040160;

[128]

Wang G YShi  J LNg  GBattle S L Zhang C Lu H (2011). Circadian clock-regulated phosphate transporter PHT4;1 plays an important role in Arabidopsis defense. Mol Plant4(3): 516–526

[129]

Wang WBarnaby  J YTada  YLi H Tör M Caldelari D Lee D U Fu X D Dong X (2011b). Timing of plant immune responses by a central circadian regulator. Nature470(7332): 110–114160;

[130]

Wiermer MFeys  B JParker  J E (2005). Plant immunity: the EDS1 regulatory node. Curr Opin Plant Biol8(4): 383–389160;

[131]

Wu C TLeubner-Metzger  GMeins F Jr Bradford K J  (2001). Class I -1,3-glucanase and chitinase are expressed in the micropylar endosperm of tomato seeds prior to radicle emergence. Plant Physiol126(3): 1299–1313160;

[132]

Wu LChen  HCurtis C Fu Z Q  (2014). Go in for the kill: How plants deploy effector-triggered immunity to combat pathogens. Virulence5(7): 710–721160;

[133]

Xiang CMiao  ZLam E  (1997). DNA-binding properties, genomic organization and expression pattern of TGA6, a new member of the TGA family of bZIP transcription factors in Arabidopsis thalianaPlant Mol Biol34(3): 403–415 

[134]

Yi S YKwon  S Y (2014). How does SA signaling link the Flg22 responses? Plant Signal Behav9(11): e972806160;

[135]

Yi S YMin  S RKwon  S Y (2015). NPR1 is instrumental in priming for the Enhanced flg22-induced MPK3 and MPK6 activation. Plant Pathol J31(2): 192–194160;

[136]

Yin M JYamamoto  YGaynor R B  (1998). The anti-inflammatory agents aspirin and salicylate inhibit the activity of I(kappa)B kinase-beta. Nature396(6706): 77–80160;

[137]

Yoshimoto KJikumaru  YKamiya Y Kusano M Consonni C Panstruga R Ohsumi Y Shirasu K  (2009). Autophagy negatively regulates cell death by controlling NPR1-dependent salicylic acid signaling during senescence and the innate immune response in ArabidopsisPlant Cell21(9): 2914–2927160;

[138]

Yu DChen  CChen Z  (2001). Evidence for an important role of WRKY DNA binding proteins in the regulation of NPR1 gene expression. Plant Cell13(7): 1527–1540160;

[139]

Zeng WHe  S Y (2010). A prominent role of the flagellin receptor FLAGELLIN-SENSING2 in mediating stomatal response to Pseudomonas syringae pv tomato DC3000 in ArabidopsisPlant Physiol153(3): 1188–1198

[140]

Zhang CXie  QAnderson R G Ng GSeitz  N CPeterson  TMcClung C R McDowell J M Kong DKwak  J MLu  H (2013). Crosstalk between the circadian clock and innate immunity in Arabidopsis. PLoS Pathog9(6): e1003370

[141]

Zhang XMou  Z (2009). Extracellular pyridine nucleotides induce PR gene expression and disease resistance in ArabidopsisPlant J57(2): 302–312

[142]

Zhang YFan  WKinkema M Li XDong  X (1999). Interaction of NPR1 with basic leucine zipper protein transcription factors that bind sequences required for salicylic acid induction of the PR-1 gene. Proc Natl Acad Sci USA96(11): 6523–6528

[143]

Zheng ZQamar  S AChen  ZMengiste T  (2006). Arabidopsis WRKY33 transcription factor is required for resistance to necrotrophic fungal pathogens. Plant J48(4): 592–605160;

[144]

Zhou J MTrifa  YSilva H Pontier D Lam EShah  JKlessig D F  (2000). NPR1 differentially interacts with members of the TGA/OBF family of transcription factors that bind an element of the PR-1 gene required for induction by salicylic acid. Mol Plant Microbe Interact13(2): 191–202160;

[145]

Zhou MWang  WKarapetyan S Mwimba M Marqués J Buchler N E Dong X (2015). Redox rhythm reinforces the circadian clock to gate immune response. Nature523(7561): 472–476160;

[146]

Zhu SJeong  R DVenugopal  S CLapchyk  LNavarre D Kachroo A Kachroo P  (2011). SAG101 forms a ternary complex with EDS1 and PAD4 and is required for resistance signaling against turnip crinkle virus. PLoS Pathog7(11): e1002318160;

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (476KB)

2054

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/