RESEARCH ARTICLE

Prediction of C-glycosylated apigenin (vitexin) biosynthesis in Ficus deltoidea based on plant proteins identified by LC-MS/MS

  • Farah Izana Abdullah 1,2 ,
  • Lee Suan Chua , 1,2 ,
  • Zaidah Rahmat 3
Expand
  • 1. Metabolites Profiling Laboratory, Institute of Bioproduct Development, Universiti Teknologi Malaysia, 81310 UTM Skudai, Johor Bahru, Johor, Malaysia
  • 2. Department of Bioprocess and Polymer Engineering, Faculty of Chemical and Energy Engineering, Universiti Teknologi Malaysia, 81310 UTM Skudai, Johor Bahru, Johor, Malaysia
  • 3. Department of Biotechnology and Medical Engineering, Faculty of Biosciences & Medical Engineering, Universiti Teknologi Malaysia, 81310 UTM Skudai, Johor Bahru, Johor, Malaysia

Received date: 11 Sep 2017

Accepted date: 28 Nov 2017

Published date: 10 Jan 2018

Copyright

2017 Higher Education Press and Springer-Verlag GmbH Germany, part of Springer Nature

Abstract

BACKGROUND: Plant secondary metabolites act as defence molecules to protect plants from biotic and abiotic stresses. In particular, C-glycosylated flavonoids are more stable and reactive than their O-glycosylated counterparts. Therefore, vitexin (apigenin 8-C glucoside) present in Ficus deltoidea is well-known for its antioxidant, anti-inflammatory, and antidiabetic properties.

METHODS: Phenol based extraction was used to extract proteins (0.05% yield) with less plant pigments. This can be seen from clear protein bands in gel electrophoresis. In-gel trypsin digestion was subsequently carried out and analysed for the presence of peptides by LC-MS/MS.

RESULTS: Thirteen intact proteins are identified on a 12% polyacrylamide gel. The mass spectra matching was found to have 229 proteins, and 11.4% of these were involved in secondary metabolism. Proteins closely related to vitexin biosynthesis are listed and their functions are explained mechanistically. Vitexin synthesis is predicted to involve plant polyketide chalcone synthase, isomerization by chalcone isomerase, oxidation by cytochrome P450 to convert flavanone to flavone, and transfer of sugar moiety by C-glycosyltransferase, followed by dehydration to produce flavone-8-C-glucosides.

CONCLUSIONS: Phenol based extraction, followed by gel electrophoresis and LC-MS/MS could identify proteome explaining vitexin biosynthesis in F. deltoidea. Many transferases including β-1,3-galactosyltransferase 2 and glycosyl hydrolase family 10 protein were detected in this study. This explains the importance of transferase family proteins in C-glycosylated apigenin biosynthesis in medicinal plant.

Cite this article

Farah Izana Abdullah , Lee Suan Chua , Zaidah Rahmat . Prediction of C-glycosylated apigenin (vitexin) biosynthesis in Ficus deltoidea based on plant proteins identified by LC-MS/MS[J]. Frontiers in Biology, 2017 , 12(6) : 448 -458 . DOI: 10.1007/s11515-017-1472-0

Acknowledgements

The authors would like to thank theMinistry of Higher Education for their financial support under theHiCoE grant (4J263) to carry out this project.

Compliance with ethics guidelines

Farah Izana Abdullah, Lee Suan Chua,and Zaidah Rahmat declare that they have no conflicts of interest.
1
Adam Z, Khamis  S, Ismail A ,  Hamid M  (2012). Ficus deltoidea: A potential alternative medicine fordiabetes mellitus. Evid Based ComplementAlternat Med, 2012: 632763

DOI PMID

2
Afrin S, Huang  J J, Luo  Z Y (2015). JA-mediated transcriptionalregulation of secondary metabolism in medicinal plants. Sci Bull, 60(12): 1062–1072

DOI

3
Akashi T, Aoki  T, Ayabe S  (2005). Molecular and biochemical characterization of 2-hydroxyisoflavanone dehydratase. Involvementof carboxylesterase-like proteins in leguminous isoflavone biosynthesis. Plant Physiol, 137(3): 882–891

DOI PMID

4
Akashi T, Fukuchi-Mizutani  M, Aoki T ,  Ueyama Y ,  Yonekura-Sakakibara K ,  Tanaka Y ,  Kusumi T ,  Ayabe S  (1999). Molecular cloning and biochemical characterization of a novel cytochromeP450, flavone synthase II, that catalyzes direct conversion of flavanonesto flavones. Plant Cell Physiol, 40(11): 1182–1186

DOI PMID

5
Akey D L, Razelun  J R, Tehranisa  J, Sherman D H ,  Gerwick W H ,  Smith J L  (2010). Crystal structures of dehydratase domains from the curacin polyketide biosyntheticpathway. Structure, 18(1): 94–105

DOI PMID

6
Alejandro S, Lee  Y, Tohge T ,  Sudre D ,  Osorio S ,  Park J, Bovet  L, Lee Y ,  Geldner N ,  Fernie A R ,  Martinoia E  (2012). AtABCG29 is a monolignol transporter involved in lignin biosynthesis. Curr Biol, 22(13): 1207–1212

DOI PMID

7
Austin M B, Noel  J P (2003). The chalcone synthase superfamily of type III polyketide synthases. Nat Prod Rep, 20(1): 79–110

DOI PMID

8
Azemin A, Dharmaraj  S, Hamdan M R ,  Mat N, Ismail  Z, Khamsah S M  (2014). Discriminating Ficus deltoidea var. bornensis from Different Localities by HPTLC and FTIR Fingerprinting. J Appl Pharm Sci, 4: 69–75

9
Bak S, Beisson  F, Bishop G ,  Hamberger B ,  Höfer R ,  Paquette S  (2011). Cytochromes P450. Arab B, e0144 

DOI

10
Bednar R A, Hadcock  J R (1988). Purification and characterization of chalcone isomerasefrom soybeans. J Biol Chem, 263(20): 9582–9588

PMID

11
Bernhoft A, Siem  H, Bjertness E ,  Meltzer M ,  Flaten T ,  Holmsen E  (2010). Bioactive compounds in plants–benefits and risks for man and animals. in Proceedings from a Symposium Held at The Norwegian Academy of Science and Letters,Novus forlag, Oslo

12
Bradford M M (1976). A rapid and sensitive method forthe quantitation of microgram quantities of protein utilizing theprinciple of protein-dye binding. Anal Biochem, 72(1-2): 248–254

DOI PMID

13
Brazier-Hicks M, Edwards  R (2013). Metabolic engineering of the flavone-C-glycoside pathwayusing polyprotein technology. Metab Eng, 16: 11–20

DOI PMID

14
Brazier-Hicks M, Evans  K M, Cunningham  O D, Hodgson  D R W, Steel  P G, Edwards  R (2008). Catabolism of glutathioneconjugates in Arabidopsis thaliana. Role in metabolic reactivation of the herbicide safener fenclorim. J Biol Chem, 283(30): 21102–21112

DOI PMID

15
Brazier-Hicks M, Evans  K M, Gershater  M C, Puschmann  H, Steel P G ,  Edwards R  (2009). The C-glycosylation of flavonoids in cereals. J Biol Chem, 284(27): 17926–17934

DOI PMID

16
Bungaruang L, Gutmann  A, Nidetzky B  (2013). Leloir glycosyltransferases and natural product glycosylation: Biocatalyticsynthesis of the C-glucoside nothofagin, a major antioxidant of redbushherbal tea. Adv Synth Catal, 355(14-15): 2757–2763

DOI PMID

17
Cheng H, Li  L, Cheng S ,  Cao F, Wang  Y, Yuan H  (2011). Molecular cloning and function assay of a chalcone isomerase gene (GbCHI) from Ginkgo biloba. Plant Cell Rep, 30(1): 49–62

DOI PMID

18
Choo C Y, Sulong  N Y, Man  F, Wong T W  (2012). Vitexin and isovitexin from the Leaves of Ficus deltoidea with in-vivo α-glucosidase inhibition. J Ethnopharmacol, 142(3): 776–781

DOI PMID

19
Courts F L, Williamson  G (2015). Critical Reviews in Food Science and Nutrition The occurrence,fate and biological activities of C- glycosyl flavonoids in the humandiet. Crit Rev Food Sci Nutr, 55(10): 1352–1367

DOI PMID

20
Crosby K C, Pietraszewska-Bogiel  A, Gadella T W J  Jr,  Winkel B S J  (2011). Förster resonance energy transfer demonstrates a flavonoid metabolon in livingplant cells that displays competitive interactions between enzymes. FEBS Lett, 585(14): 2193–2198

DOI PMID

21
Crozier A, Jaganath  I B, Clifford  M N (2009). Dietary phenolics: chemistry, bioavailability and effects on health. Nat Prod Rep, 26(8): 1001–1043

DOI PMID

22
Day A J, Gee  J M, DuPont  M S, Johnson  I T, Williamson  G (2003). Absorption of quercetin-3-glucoside and quercetin-4′-glucoside in the ratsmall intestine: the role of lactase phlorizin hydrolase and the sodium-dependentglucose transporter. Biochem Pharmacol, 65(7): 1199–1206 

DOI PMID

23
Dey S, Corina Vlot  A (2015). Ethylene responsive factors in the orchestration ofstress responses in monocotyledonous plants. Front Plant Sci, 6: 640

DOI PMID

24
Dixon D P, Hawkins  T, Hussey P J ,  Edwards R  (2009). Enzyme activities and subcellular localization of members of the Arabidopsis glutathione transferasesuperfamily. J Exp Bot, 60(4): 1207–1218

DOI PMID

25
Du Y, Chu  H, Chu I K ,  Lo C (2010a). CYP93G2 is a flavanone 2-hydroxylase required for C-glycosyl-flavonebiosynthesis in rice. Plant Physiol, 154(1):324–33

26
Du Y, Chu  H, Wang M ,  Chu I K ,  Lo C (2010b). Identificationof flavone phytoalexins and a pathogen-inducible flavone synthaseII gene (SbFNSII) in sorghum. J Exp Bot, 61(4): 983–994

DOI PMID

27
Dürr C, Hoffmeister  D, Wohlert S E ,  Ichinose K ,  Weber M ,  Von Mulert U ,  Thorson J S ,  Bechthold A  (2004). The glycosyltransferase UrdGT2 catalyzes both C- andO-glycosidic sugar transfers. Angew Chem Int Ed Engl, 43(22): 2962–2965

DOI PMID

28
Dzolin S, Ahmad  R, Zain M M ,  Ismail M I  (2015). Flavonoid distribution in four varieties of Ficus deltoidea (Jack). J Med Plant Herb Ther Res, 3: 1–9

29
El Amrani A, Barakate  A, Askari B M ,  Li X, Roberts  A G, Ryan  M D, Halpin  C (2004). Coordinate expression and independentsubcellular targeting of multiple proteins from a single transgene. Plant Physiol, 135(1): 16–24

DOI PMID

30
Falcone Ferreyra M L ,  Rodriguez E ,  Casas M I ,  Labadie G ,  Grotewold E ,  Casati P  (2013). Identification of a bifunctional maize C- and O-glucosyltransferase. J Biol Chem, 288(44): 31678–31688

DOI PMID

31
Farsi E, Shafaei  A, Hor S Y ,  Ahamed M B K ,  Fei M, Attitalla  I H (2011). Correlation between enzymes inhibitory effects and antioxidant activities of standardizedfractions of methanolic extract obtained from Ficus deltoidea leaves. Afr J Biotechnol, 10(67): 15184–15194

DOI

32
François I E J A ,  Van Hemelrijck W ,  Aerts A M ,  Wouters P F J ,  Proost P ,  Broekaert W F ,  Cammue B P A  (2004). Processing in Arabidopsis thaliana of a heterologous polyprotein resulting indifferential targeting of the individual plant defensins. Plant Sci, 166(1): 113–121

DOI

33
Ha S H, Liang  Y S, Jung  H, Ahn M J ,  Suh S C ,  Kweon S J ,  Kim D H ,  Kim Y M ,  Kim J K  (2010). Application of two bicistronic systems involving 2Aand IRES sequences to the biosynthesis of carotenoids in rice endosperm. Plant Biotechnol J, 8(8): 928–938

DOI PMID

34
Hakamatsuka T, Mori  K, Ishida S ,  Ebizuka Y ,  Sankawa U  (1998). Purification of 2-hydroxyisoflavanone dehydratase from the Cell Cultures of Pueraria lobata. Phytochemistry, 49(2): 497–505

DOI

35
Halpin C, Cooke  S E, Barakate  A, El Amrani A ,  Ryan M D  (1999). Self-processing 2A-polyproteins--a system for co-ordinate expression of multiple proteinsin transgenic plants. Plant J, 17(4): 453–459

DOI PMID

36
Hasegawa K, Cowan  A B, Nakatsuji  N, Suemori H  (2007). Efficient multicistronic expression of a transgene inhuman embryonic stem cells. Stem Cells, 25(7): 1707–1712

DOI PMID

37
He M, Min  J W, Kong  W L, He  X H, Li  J X, Peng  B W (2016). A review on the pharmacological effectsof vitexin and isovitexin. Fitoterapia, 115: 74–85

DOI PMID

38
Hicks M A, Barber  A E 2nd, Giddings  L A, Caldwell  J, O’Connor S E ,  Babbitt P C  (2011). The evolution of function in strictosidine synthase-like proteins. Proteins, 79(11): 3082–3098

DOI PMID

39
Isaacson T, Damasceno  C M B, Saravanan  R S, He  Y, Catalá C ,  Saladié M ,  Rose J K  (2006). Sample extraction techniques for enhanced proteomic analysis of plant tissues. Nat Protoc, 1(2): 769–774

DOI PMID

40
Ishihara A, Ogura  Y, Tebayashi S ,  Iwamura H  (2002). Jasmonate-induced changes in flavonoid metabolism inbarley (Hordeum vulgare) leaves. Biosci Biotechnol Biochem, 66(10): 2176–2182

DOI PMID

41
Ishikawa F, Haushalter  R W, Burkart  M D (2012). Dehydratase-specific probes for fatty acid and polyketide synthases. J Am Chem Soc, 134(2): 769–772

DOI PMID

42
Jiménez C R ,  Huang L ,  Qiu Y, Burlingame  A L (2001). Searching sequence databases overthe internet: protein identification using MS-Fit. Curr Protoc Protein Sci, Chapter 16: 5

PMID

43
Kaltenbach M, Schröder  G, Schmelzer E ,  Lutz V, Schröder  J (1999). Flavonoid hydroxylase from Catharanthus roseus: cDNA,heterologous expression, enzyme properties and cell-type specificexpression in plants. Plant J, 19(2): 183–193

DOI PMID

44
Kašparová M ,  Siatka T  (2014). Production of flavonoids and isoflavonoids in jasmonic acid-induced red clover suspension cultures. Ceska Slov Farm, 63(1): 17–21

PMID

45
Kerscher F, Franz  G (1987). Biosynthesis of Vitexin and Isovitexin : Enzymatic Synthesis of theC-Glucosylflavones Vitexin and Isovitexin with an Enzyme Preparationfrom Fagopyrum esculentum M. Seedlings. Z Naturforsch C, 42: 519–524

46
Kramell R, Miersch  O, Atzorn R ,  Parthier B ,  Wasternack C  (2000). Octadecanoid-derived alteration of gene expression andthe “oxylipin signature” in stressed barley leaves. Implicationsfor different signaling pathways. Plant Physiol, 123(1): 177–188

DOI PMID

47
Laemmli U K (1970). Cleavage of structural proteins duringthe assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227(5259): 680–685

DOI PMID

48
Le Roy J, Huss  B, Creach A ,  Hawkins S ,  Neutelings G  (2016). Glycosylation Is a Major Regulator of Phenylpropanoid Availability and BiologicalActivity in Plants. Front Plant Sci, 7: 735

DOI PMID

49
Li Y, Dodge  G J, Fiers  W D, Fecik  R A, Smith  J L, Aldrich  C C (2015). Functional Characterization of aDehydratase Domain from the Pikromycin Polyketide Synthase. J Am Chem Soc, 137(22): 7003–7006

DOI PMID

50
Luley-Goedl C, Nidetzky  B (2011). Glycosides as compatible solutes: biosynthesis and applications. Nat Prod Rep, 28(5): 875–896

DOI PMID

51
Lussier F X, Colatriano  D, Wiltshire Z ,  Page J E ,  Martin V J J  (2013). Engineering microbes for plant polyketide biosynthesis. Comput Struct Biotechnol J, 3(4): e201210020

DOI PMID

52
Martens S, Mithöfer  A (2005). Flavones and flavone synthases. Phytochemistry, 66(20): 2399–2407

DOI PMID

53
Mierziak J, Kostyn  K, Kulma A  (2014). Flavonoids as important molecules of plant interactions with the environment. Molecules, 19(10): 16240–16265

DOI PMID

54
Misbah H, Aziz  A A, Aminudin  N (2013). Antidiabetic and antioxidant properties of Ficus deltoidea fruit extracts and fractions. BMC Complement Altern Med, 13(1): 118

DOI PMID

55
Mizutani M, Sato  F (2011). Unusual P450 reactions in plant secondary metabolism. Arch Biochem Biophys, 507(1): 194–203

DOI PMID

56
Mohd K S, Rosli  A S, Azemin  A, Mat N ,  Zakaria A J  (2016). Comprehensive Biological Activities Evaluation and Quantification of Marker Compoundsof Ficus deltoiea Jack Varieties. Int J Pharmacogn Phytochem Res, 8: 1698–1708

57
Morant M, Bak  S, Møller B L ,  Werck-Reichhart D  (2003). Plant cytochromes P450: tools for pharmacology, plant protection and phytoremediation. Curr Opin Biotechnol, 14(2): 151–162

DOI PMID

58
Nagatomo Y, Usui  S, Ito T ,  Kato A, Shimosaka  M, Taguchi G  (2014). Purification, molecular cloning and functional characterization of flavonoid C-glucosyltransferases from Fagopyrum esculentum M. (buckwheat) cotyledon. Plant J, 80(3): 437–448

DOI PMID

59
Pauwels L, Inzé  D, Goossens A  (2009). Jasmonate-inducible gene: What does it mean? Trends Plant Sci, 14(2): 87–91

DOI PMID

60
Praveena R, Sadasivam  K, Kumaresan R ,  Deepha V ,  Sivakumar R  (2013). Experimental and DFT studies on the antioxidant activityof a C-glycoside from Rhynchosia capitata. Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc, 103: 442–452

DOI PMID

61
Rawat P, Kumar  M, Sharan K ,  Chattopadhyay N ,  Maurya R  (2009). Ulmosides A and B: flavonoid 6-C-glycosides from Ulmus wallichiana, stimulatingosteoblast differentiation assessed by alkaline phosphatase. Bioorg Med Chem Lett, 19(16): 4684–4687

DOI PMID

62
Saito K, Yonekura-Sakakibara  K, Nakabayashi R ,  Higashi Y ,  Yamazaki M ,  Tohge T ,  Fernie A R  (2013). The flavonoid biosynthetic pathway in Arabidopsis: structural and genetic diversity. Plant Physiol Biochem, 72: 21–34

DOI PMID

63
Schaller F (2001). Enzymes of the biosynthesis of octadecanoid-derivedsignalling molecules. J Exp Bot, 52(354): 11–23

DOI PMID

64
Shafaei A, Farsi  E, Ismail Z ,  Asmawi M Z  (2012). Quantitative High Performance Thin-Layer ChromatographyMethod for Analysis of Vitexin and Isovitexin in Extracts of Leavesof Ficus deltoidea. Asian J Chem, 24: 2286

65
Shevchenko A, Tomas  H, Havlis J ,  Olsen J V ,  Mann M (2006). In-geldigestion for mass spectrometric characterization of proteins andproteomes. Nat Protoc, 1(6): 2856–2860

DOI PMID

66
Stafford H A (1991). Flavonoid evolution: an enzymic approach. Plant Physiol, 96(3): 680–685

DOI PMID

67
University of California (2017). Ms-Fit. Available at: http://prospector.ucsf.edu/prospector/cgi-bin/msform.cgi?form=msfitstandard.

68
Väisänen E E ,  Smeds A I ,  Fagerstedt K V ,  Teeri T H ,  Willför S M ,  Kärkönen A  (2015). Coniferyl alcohol hinders the growth of tobacco BY-2 cells and Nicotianabenthamiana seedlings. Planta, 242(3): 747–760

DOI PMID

69
Wu J, Zaleski  T J, Valenzano  C, Khosla C ,  Cane D E  (2005). Polyketide double bond biosynthesis. Mechanistic analysis of thedehydratase-containing module 2 of the picromycin/methymycin polyketidesynthase. J Am Chem Soc, 127(49): 17393–17404

DOI PMID

70
Xiao J, Capanoglu  E, Jassbi A R ,  Miron A  (2016). Advance on the flavonoid C-glycosides and health benefits. Crit Rev Food Sci Nutr, 56(sup1 Suppl 1): S29–S45

DOI PMID

71
Xiao J, Chen  T, Cao H  (2015). Flavonoid glycosylation and biological benefits. Biotechnol Adv, 

DOI PMID

72
Xu F, Li  L, Zhang W ,  Cheng H ,  Sun N, Cheng  S, Wang Y  (2012). Isolation, characterization, and function analysis of a flavonolsynthase gene from Ginkgo biloba. Mol Biol Rep, 39(3): 2285–2296

DOI PMID

73
Yang C Q, Fang  X, Wu X M ,  Mao Y B ,  Wang L J ,  Chen X Y  (2012). Transcriptional regulation of plant secondary metabolism. J Integr Plant Biol, 54(10): 703–712

DOI PMID

74
Yonekura-Sakakibara K ,  Hanada K  (2011). An evolutionary view of functional diversity in family1 glycosyltransferases. Plant J, 66(1): 182–193

DOI PMID

75
Yonekura-Sakakibara K ,  Tohge T ,  Matsuda F ,  Nakabayashi R ,  Takayama H ,  Niida R ,  Watanabe-Takahashi A ,  Inoue E ,  Saito K  (2008). Comprehensive flavonol profiling and transcriptome coexpression analysis leadingto decoding gene-metabolite correlations in Arabidopsis. Plant Cell, 20(8): 2160–2176

DOI PMID

76
Zhai R, Wang  Z, Zhang S ,  Meng G, Song  L, Wang Z ,  Li P, Ma  F, Xu L  (2016). Two MYB transcription factors regulate flavonoid biosynthesis inpear fruit (Pyrus bretschneideri Rehd.). J Exp Bot, 67(5): 1275–1284

DOI PMID

77
Zhang X, Abrahan  C, Colquhoun T A ,  Liu C and Sciences A (2017). A proteolytic regulator controlling chalcone synthasestability and flavonoid biosynthesis in Arabidopsis. Plant Cell Online, tpc-00855

DOI

78
Zhao J, Davis  L C, Verpoorte  R (2005). Elicitor signal transductionleading to production of plant secondary metabolites. Biotechnol Adv, 23(4): 283–333

DOI PMID

79
Zunoliza A, Khalid  H, Zhari I ,  Rasadah M A  (2009). Anti-inflammatory activity of standardised extractsof leaves of three varieties of Ficus deltoidea. Int J Pharm Clin Res, 1: 100–105

Outlines

/