Prediction of C-glycosylated apigenin (vitexin) biosynthesis in Ficus deltoidea based on plant proteins identified by LC-MS/MS

Farah Izana Abdullah , Lee Suan Chua , Zaidah Rahmat

Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (6) : 448 -458.

PDF (552KB)
Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (6) : 448 -458. DOI: 10.1007/s11515-017-1472-0
RESEARCH ARTICLE
RESEARCH ARTICLE

Prediction of C-glycosylated apigenin (vitexin) biosynthesis in Ficus deltoidea based on plant proteins identified by LC-MS/MS

Author information +
History +
PDF (552KB)

Abstract

BACKGROUND: Plant secondary metabolites act as defence molecules to protect plants from biotic and abiotic stresses. In particular, C-glycosylated flavonoids are more stable and reactive than their O-glycosylated counterparts. Therefore, vitexin (apigenin 8-C glucoside) present in Ficus deltoidea is well-known for its antioxidant, anti-inflammatory, and antidiabetic properties.

METHODS: Phenol based extraction was used to extract proteins (0.05% yield) with less plant pigments. This can be seen from clear protein bands in gel electrophoresis. In-gel trypsin digestion was subsequently carried out and analysed for the presence of peptides by LC-MS/MS.

RESULTS: Thirteen intact proteins are identified on a 12% polyacrylamide gel. The mass spectra matching was found to have 229 proteins, and 11.4% of these were involved in secondary metabolism. Proteins closely related to vitexin biosynthesis are listed and their functions are explained mechanistically. Vitexin synthesis is predicted to involve plant polyketide chalcone synthase, isomerization by chalcone isomerase, oxidation by cytochrome P450 to convert flavanone to flavone, and transfer of sugar moiety by C-glycosyltransferase, followed by dehydration to produce flavone-8-C-glucosides.

CONCLUSIONS: Phenol based extraction, followed by gel electrophoresis and LC-MS/MS could identify proteome explaining vitexin biosynthesis in F. deltoidea. Many transferases including β-1,3-galactosyltransferase 2 and glycosyl hydrolase family 10 protein were detected in this study. This explains the importance of transferase family proteins in C-glycosylated apigenin biosynthesis in medicinal plant.

Keywords

C-glycosylation / vitexin / apigenin 8-C glucoside / proteins / peptides / LC-MS/MS

Cite this article

Download citation ▾
Farah Izana Abdullah, Lee Suan Chua, Zaidah Rahmat. Prediction of C-glycosylated apigenin (vitexin) biosynthesis in Ficus deltoidea based on plant proteins identified by LC-MS/MS. Front. Biol., 2017, 12(6): 448-458 DOI:10.1007/s11515-017-1472-0

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Adam ZKhamis  SIsmail A Hamid M (2012). Ficus deltoidea: A potential alternative medicine fordiabetes mellitus. Evid Based ComplementAlternat Med2012: 632763

[2]

Afrin SHuang  J JLuo  Z Y (2015). JA-mediated transcriptionalregulation of secondary metabolism in medicinal plants. Sci Bull60(12): 1062–1072

[3]

Akashi TAoki  TAyabe S (2005). Molecular and biochemical characterization of 2-hydroxyisoflavanone dehydratase. Involvementof carboxylesterase-like proteins in leguminous isoflavone biosynthesis. Plant Physiol137(3): 882–891

[4]

Akashi TFukuchi-Mizutani  MAoki T Ueyama Y Yonekura-Sakakibara K Tanaka Y Kusumi T Ayabe S (1999). Molecular cloning and biochemical characterization of a novel cytochromeP450, flavone synthase II, that catalyzes direct conversion of flavanonesto flavones. Plant Cell Physiol40(11): 1182–1186

[5]

Akey D LRazelun  J RTehranisa  JSherman D H Gerwick W H Smith J L (2010). Crystal structures of dehydratase domains from the curacin polyketide biosyntheticpathway. Structure18(1): 94–105

[6]

Alejandro SLee  YTohge T Sudre D Osorio S Park JBovet  LLee Y Geldner N Fernie A R Martinoia E (2012). AtABCG29 is a monolignol transporter involved in lignin biosynthesis. Curr Biol22(13): 1207–1212

[7]

Austin M BNoel  J P (2003). The chalcone synthase superfamily of type III polyketide synthases. Nat Prod Rep20(1): 79–110

[8]

Azemin ADharmaraj  SHamdan M R Mat NIsmail  ZKhamsah S M (2014). Discriminating Ficus deltoidea var. bornensis from Different Localities by HPTLC and FTIR Fingerprinting. J Appl Pharm Sci4: 69–75

[9]

Bak SBeisson  FBishop G Hamberger B Höfer R Paquette S (2011). Cytochromes P450. Arab B, e0144 

[10]

Bednar R AHadcock  J R (1988). Purification and characterization of chalcone isomerasefrom soybeans. J Biol Chem263(20): 9582–9588

[11]

Bernhoft ASiem  HBjertness E Meltzer M Flaten T Holmsen E (2010). Bioactive compounds in plants–benefits and risks for man and animals. in Proceedings from a Symposium Held at The Norwegian Academy of Science and Letters,Novus forlag, Oslo

[12]

Bradford M M (1976). A rapid and sensitive method forthe quantitation of microgram quantities of protein utilizing theprinciple of protein-dye binding. Anal Biochem72(1-2): 248–254

[13]

Brazier-Hicks MEdwards  R (2013). Metabolic engineering of the flavone-C-glycoside pathwayusing polyprotein technology. Metab Eng16: 11–20

[14]

Brazier-Hicks MEvans  K MCunningham  O DHodgson  D R WSteel  P GEdwards  R (2008). Catabolism of glutathioneconjugates in Arabidopsis thaliana. Role in metabolic reactivation of the herbicide safener fenclorim. J Biol Chem283(30): 21102–21112

[15]

Brazier-Hicks MEvans  K MGershater  M CPuschmann  HSteel P G Edwards R (2009). The C-glycosylation of flavonoids in cereals. J Biol Chem284(27): 17926–17934

[16]

Bungaruang LGutmann  ANidetzky B (2013). Leloir glycosyltransferases and natural product glycosylation: Biocatalyticsynthesis of the C-glucoside nothofagin, a major antioxidant of redbushherbal tea. Adv Synth Catal355(14-15): 2757–2763

[17]

Cheng HLi  LCheng S Cao FWang  YYuan H (2011). Molecular cloning and function assay of a chalcone isomerase gene (GbCHI) from Ginkgo biloba. Plant Cell Rep30(1): 49–62

[18]

Choo C YSulong  N YMan  FWong T W (2012). Vitexin and isovitexin from the Leaves of Ficus deltoidea with in-vivo α-glucosidase inhibition. J Ethnopharmacol142(3): 776–781

[19]

Courts F LWilliamson  G (2015). Critical Reviews in Food Science and Nutrition The occurrence,fate and biological activities of C- glycosyl flavonoids in the humandiet. Crit Rev Food Sci Nutr55(10): 1352–1367

[20]

Crosby K CPietraszewska-Bogiel  AGadella T W J Jr,  Winkel B S J (2011). Förster resonance energy transfer demonstrates a flavonoid metabolon in livingplant cells that displays competitive interactions between enzymes. FEBS Lett585(14): 2193–2198

[21]

Crozier AJaganath  I BClifford  M N (2009). Dietary phenolics: chemistry, bioavailability and effects on health. Nat Prod Rep26(8): 1001–1043

[22]

Day A JGee  J MDuPont  M SJohnson  I TWilliamson  G (2003). Absorption of quercetin-3-glucoside and quercetin-4′-glucoside in the ratsmall intestine: the role of lactase phlorizin hydrolase and the sodium-dependentglucose transporter. Biochem Pharmacol65(7): 1199–1206 

[23]

Dey SCorina Vlot  A (2015). Ethylene responsive factors in the orchestration ofstress responses in monocotyledonous plants. Front Plant Sci6: 640

[24]

Dixon D PHawkins  THussey P J Edwards R (2009). Enzyme activities and subcellular localization of members of the Arabidopsis glutathione transferasesuperfamily. J Exp Bot60(4): 1207–1218

[25]

Du YChu  HChu I K Lo C (2010a). CYP93G2 is a flavanone 2-hydroxylase required for C-glycosyl-flavonebiosynthesis in rice. Plant Physiol154(1):324–33

[26]

Du YChu  HWang M Chu I K Lo C (2010b). Identificationof flavone phytoalexins and a pathogen-inducible flavone synthaseII gene (SbFNSII) in sorghum. J Exp Bot61(4): 983–994

[27]

Dürr CHoffmeister  DWohlert S E Ichinose K Weber M Von Mulert U Thorson J S Bechthold A (2004). The glycosyltransferase UrdGT2 catalyzes both C- andO-glycosidic sugar transfers. Angew Chem Int Ed Engl43(22): 2962–2965

[28]

Dzolin SAhmad  RZain M M Ismail M I (2015). Flavonoid distribution in four varieties of Ficus deltoidea (Jack). J Med Plant Herb Ther Res3: 1–9

[29]

El Amrani ABarakate  AAskari B M Li XRoberts  A GRyan  M DHalpin  C (2004). Coordinate expression and independentsubcellular targeting of multiple proteins from a single transgene. Plant Physiol135(1): 16–24

[30]

Falcone Ferreyra M L Rodriguez E Casas M I Labadie G Grotewold E Casati P (2013). Identification of a bifunctional maize C- and O-glucosyltransferase. J Biol Chem288(44): 31678–31688

[31]

Farsi EShafaei  AHor S Y Ahamed M B K Fei MAttitalla  I H (2011). Correlation between enzymes inhibitory effects and antioxidant activities of standardizedfractions of methanolic extract obtained from Ficus deltoidea leaves. Afr J Biotechnol10(67): 15184–15194

[32]

François I E J A Van Hemelrijck W Aerts A M Wouters P F J Proost P Broekaert W F Cammue B P A (2004). Processing in Arabidopsis thaliana of a heterologous polyprotein resulting indifferential targeting of the individual plant defensins. Plant Sci166(1): 113–121

[33]

Ha S HLiang  Y SJung  HAhn M J Suh S C Kweon S J Kim D H Kim Y M Kim J K (2010). Application of two bicistronic systems involving 2Aand IRES sequences to the biosynthesis of carotenoids in rice endosperm. Plant Biotechnol J8(8): 928–938

[34]

Hakamatsuka TMori  KIshida S Ebizuka Y Sankawa U (1998). Purification of 2-hydroxyisoflavanone dehydratase from the Cell Cultures of Pueraria lobata. Phytochemistry49(2): 497–505

[35]

Halpin CCooke  S EBarakate  AEl Amrani A Ryan M D (1999). Self-processing 2A-polyproteins--a system for co-ordinate expression of multiple proteinsin transgenic plants. Plant J17(4): 453–459

[36]

Hasegawa KCowan  A BNakatsuji  NSuemori H (2007). Efficient multicistronic expression of a transgene inhuman embryonic stem cells. Stem Cells25(7): 1707–1712

[37]

He MMin  J WKong  W LHe  X HLi  J XPeng  B W (2016). A review on the pharmacological effectsof vitexin and isovitexin. Fitoterapia115: 74–85

[38]

Hicks M ABarber  A E 2nd, Giddings  L ACaldwell  JO’Connor S E Babbitt P C (2011). The evolution of function in strictosidine synthase-like proteins. Proteins79(11): 3082–3098

[39]

Isaacson TDamasceno  C M BSaravanan  R SHe  YCatalá C Saladié M Rose J K (2006). Sample extraction techniques for enhanced proteomic analysis of plant tissues. Nat Protoc1(2): 769–774

[40]

Ishihara AOgura  YTebayashi S Iwamura H (2002). Jasmonate-induced changes in flavonoid metabolism inbarley (Hordeum vulgare) leaves. Biosci Biotechnol Biochem66(10): 2176–2182

[41]

Ishikawa FHaushalter  R WBurkart  M D (2012). Dehydratase-specific probes for fatty acid and polyketide synthases. J Am Chem Soc134(2): 769–772

[42]

Jiménez C R Huang L Qiu YBurlingame  A L (2001). Searching sequence databases overthe internet: protein identification using MS-Fit. Curr Protoc Protein SciChapter 16: 5

[43]

Kaltenbach MSchröder  GSchmelzer E Lutz VSchröder  J (1999). Flavonoid hydroxylase from Catharanthus roseus: cDNA,heterologous expression, enzyme properties and cell-type specificexpression in plants. Plant J19(2): 183–193

[44]

Kašparová M Siatka T (2014). Production of flavonoids and isoflavonoids in jasmonic acid-induced red clover suspension cultures. Ceska Slov Farm63(1): 17–21

[45]

Kerscher FFranz  G (1987). Biosynthesis of Vitexin and Isovitexin : Enzymatic Synthesis of theC-Glucosylflavones Vitexin and Isovitexin with an Enzyme Preparationfrom Fagopyrum esculentum M. Seedlings. Z Naturforsch C42: 519–524

[46]

Kramell RMiersch  OAtzorn R Parthier B Wasternack C (2000). Octadecanoid-derived alteration of gene expression andthe “oxylipin signature” in stressed barley leaves. Implicationsfor different signaling pathways. Plant Physiol123(1): 177–188

[47]

Laemmli U K (1970). Cleavage of structural proteins duringthe assembly of the head of bacteriophage T4. Nature227(5259): 680–685

[48]

Le Roy JHuss  BCreach A Hawkins S Neutelings G (2016). Glycosylation Is a Major Regulator of Phenylpropanoid Availability and BiologicalActivity in Plants. Front Plant Sci7: 735

[49]

Li YDodge  G JFiers  W DFecik  R ASmith  J LAldrich  C C (2015). Functional Characterization of aDehydratase Domain from the Pikromycin Polyketide Synthase. J Am Chem Soc137(22): 7003–7006

[50]

Luley-Goedl CNidetzky  B (2011). Glycosides as compatible solutes: biosynthesis and applications. Nat Prod Rep28(5): 875–896

[51]

Lussier F XColatriano  DWiltshire Z Page J E Martin V J J (2013). Engineering microbes for plant polyketide biosynthesis. Comput Struct Biotechnol J3(4): e201210020

[52]

Martens SMithöfer  A (2005). Flavones and flavone synthases. Phytochemistry66(20): 2399–2407

[53]

Mierziak JKostyn  KKulma A (2014). Flavonoids as important molecules of plant interactions with the environment. Molecules19(10): 16240–16265

[54]

Misbah HAziz  A AAminudin  N (2013). Antidiabetic and antioxidant properties of Ficus deltoidea fruit extracts and fractions. BMC Complement Altern Med13(1): 118

[55]

Mizutani MSato  F (2011). Unusual P450 reactions in plant secondary metabolism. Arch Biochem Biophys507(1): 194–203

[56]

Mohd K SRosli  A SAzemin  AMat N Zakaria A J (2016). Comprehensive Biological Activities Evaluation and Quantification of Marker Compoundsof Ficus deltoiea Jack Varieties. Int J Pharmacogn Phytochem Res8: 1698–1708

[57]

Morant MBak  SMøller B L Werck-Reichhart D (2003). Plant cytochromes P450: tools for pharmacology, plant protection and phytoremediation. Curr Opin Biotechnol14(2): 151–162

[58]

Nagatomo YUsui  SIto T Kato AShimosaka  MTaguchi G (2014). Purification, molecular cloning and functional characterization of flavonoid C-glucosyltransferases from Fagopyrum esculentum M. (buckwheat) cotyledon. Plant J80(3): 437–448

[59]

Pauwels LInzé  DGoossens A (2009). Jasmonate-inducible gene: What does it mean? Trends Plant Sci14(2): 87–91

[60]

Praveena RSadasivam  KKumaresan R Deepha V Sivakumar R (2013). Experimental and DFT studies on the antioxidant activityof a C-glycoside from Rhynchosia capitata. Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc103: 442–452

[61]

Rawat PKumar  MSharan K Chattopadhyay N Maurya R (2009). Ulmosides A and B: flavonoid 6-C-glycosides from Ulmus wallichiana, stimulatingosteoblast differentiation assessed by alkaline phosphatase. Bioorg Med Chem Lett19(16): 4684–4687

[62]

Saito KYonekura-Sakakibara  KNakabayashi R Higashi Y Yamazaki M Tohge T Fernie A R (2013). The flavonoid biosynthetic pathway in Arabidopsis: structural and genetic diversity. Plant Physiol Biochem72: 21–34

[63]

Schaller F (2001). Enzymes of the biosynthesis of octadecanoid-derivedsignalling molecules. J Exp Bot52(354): 11–23

[64]

Shafaei AFarsi  EIsmail Z Asmawi M Z (2012). Quantitative High Performance Thin-Layer ChromatographyMethod for Analysis of Vitexin and Isovitexin in Extracts of Leavesof Ficus deltoidea. Asian J Chem24: 2286

[65]

Shevchenko ATomas  HHavlis J Olsen J V Mann M (2006). In-geldigestion for mass spectrometric characterization of proteins andproteomes. Nat Protoc1(6): 2856–2860

[66]

Stafford H A (1991). Flavonoid evolution: an enzymic approach. Plant Physiol96(3): 680–685

[67]

University of California (2017). Ms-Fit. Available at: 

[68]

Väisänen E E Smeds A I Fagerstedt K V Teeri T H Willför S M Kärkönen A (2015). Coniferyl alcohol hinders the growth of tobacco BY-2 cells and Nicotianabenthamiana seedlings. Planta242(3): 747–760

[69]

Wu JZaleski  T JValenzano  CKhosla C Cane D E (2005). Polyketide double bond biosynthesis. Mechanistic analysis of thedehydratase-containing module 2 of the picromycin/methymycin polyketidesynthase. J Am Chem Soc127(49): 17393–17404

[70]

Xiao JCapanoglu  EJassbi A R Miron A (2016). Advance on the flavonoid C-glycosides and health benefits. Crit Rev Food Sci Nutr56(sup1 Suppl 1): S29–S45

[71]

Xiao JChen  TCao H (2015). Flavonoid glycosylation and biological benefits. Biotechnol Adv

[72]

Xu FLi  LZhang W Cheng H Sun NCheng  SWang Y (2012). Isolation, characterization, and function analysis of a flavonolsynthase gene from Ginkgo biloba. Mol Biol Rep39(3): 2285–2296

[73]

Yang C QFang  XWu X M Mao Y B Wang L J Chen X Y (2012). Transcriptional regulation of plant secondary metabolism. J Integr Plant Biol54(10): 703–712

[74]

Yonekura-Sakakibara K Hanada K (2011). An evolutionary view of functional diversity in family1 glycosyltransferases. Plant J66(1): 182–193

[75]

Yonekura-Sakakibara K Tohge T Matsuda F Nakabayashi R Takayama H Niida R Watanabe-Takahashi A Inoue E Saito K (2008). Comprehensive flavonol profiling and transcriptome coexpression analysis leadingto decoding gene-metabolite correlations in Arabidopsis. Plant Cell20(8): 2160–2176

[76]

Zhai RWang  ZZhang S Meng GSong  LWang Z Li PMa  FXu L (2016). Two MYB transcription factors regulate flavonoid biosynthesis inpear fruit (Pyrus bretschneideri Rehd.). J Exp Bot67(5): 1275–1284

[77]

Zhang XAbrahan  CColquhoun T A Liu C and Sciences A (2017). A proteolytic regulator controlling chalcone synthasestability and flavonoid biosynthesis in ArabidopsisPlant Cell Online, tpc-00855

[78]

Zhao JDavis  L CVerpoorte  R (2005). Elicitor signal transductionleading to production of plant secondary metabolites. Biotechnol Adv23(4): 283–333

[79]

Zunoliza AKhalid  HZhari I Rasadah M A (2009). Anti-inflammatory activity of standardised extractsof leaves of three varieties of Ficus deltoidea. Int J Pharm Clin Res1: 100–105

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag GmbH Germany, part of Springer Nature

AI Summary AI Mindmap
PDF (552KB)

1251

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/