Community and hospital acquired methicillin resistant Staphylococcus aureus efficiently retain the Van A determinant

Abstract

Dissemination of vancomycin resistance from hospital to community strains is a serious threat to public health. Our study aimed to provide evidence for transmission of Van A type resistance from the hospital to the community. Wild-type community and hospital associated methicillin resistant Staphylococcus aureus strains were studied in vitro and in a model that mimicked a natural environment to ascertain their ability to acquire and maintain the vancomycin resistance determinant (Van A gene) from vancomycin resistant Enterococcus faecalis. Fitness was assessed and the cost of Van A acquisition and retention was estimated. In vitro mating experiments were carried out using a filter mating technique and a model of a natural water body environment. Transfer of resistance was carried out in two different conditions: restricted and favorable. Transconjugants were confirmed by E test and PCR using specific primer sets. Growth kinetics and fitness measurements were done by spectrometric analysis. Using the in vitro filter mating technique, high transfer frequencies that ranged from 0.7 × 10^–3(0.0006) to 3.1 × 10^–4(0.00011) were recorded, with the highest transfer frequencies for CA MRSA (thermosensitively homogenous) (0.7 × 10^–3), and 1.2 × 10^–4 to 2.4 × 10^–6 in the model. HA MRSA (homogenous) showed a greater capacity (3.6 × 10^–4) to receive the Van A gene, while CA MRSA showed a reduced ability to maintain the gene after serial subcultures. CA and HA thermosensitively heterogeneous MRSA transconjugants exhibited higher growth rates. The present study provides evidence for the enhanced ability of CA and HA MRSA clones to acquire and maintain Van A type resistance.

Key words： Van A resistance; MRSA; fitness; growth kinetics; resistance transfer

Acknowledgements

AK and ABB acknowledge the Ph.D. fellowship support provided by the University Grant Commission, New Delhi. AK thanks Preeti Ranawat (Ph.D. Scholar) and researchers at the laboratory of Microbiology, Department of Botany and Microbiology, Hemwati Nandan Bahuguna Garhwal University, for assistance with experiments and in developing the environmental model. Thanks are due to Miss Poonam Silori for critically reviewing the manuscript.

None of the authors declare any conflicts.

References

1 Aligholi M, Emaneini M, Jabalameli F, Shahsavan S, Dabiri H, Sedaght H (2008). Emergence of high-level vancomycin-resistant Staphylococcus aureus in the Imam Khomeini Hospital in Tehran. Med Princ Pract, 17(5): 432–434

PMID

2 Annear D I (1968). The effect of temperature on resistance of Staphylococcus aureus to methicillin and some other antibioics. Med J Aust, 1(11): 444–446

PMID

3 Arthur M, Molinas C, Depardieu F, Courvalin P (1993). Characterization of Tn1546, a Tn3-related transposon conferring glycopeptide resistance by synthesis of depsipeptide peptidoglycan precursors in Enterococcus faecium BM4147. J Bacteriol, 175(1): 117–127

PMID

4 Arthur M, Reynolds P, Courvalin P (1996). Glycopeptide resistance in enterococci. Trends Microbiol, 4(10): 401–407

PMID

5 Chang S, Sievert D M, Hageman J C, Boulton M L, Tenover F C, Downes F P, Shah S, Rudrik J T, Pupp G R, Brown W J, Cardo D, Fridkin S K, and the Vancomycin-Resistant Staphylococcus aureus Investigative Team (2003). Infection with vancomycin-resistant Staphylococcus aureus containing the vanA resistance gene. N Engl J Med, 348(14): 1342–1347

PMID

6 Courvalin P (2006). Vancomycin resistance in gram-positive cocci. Clin Infect Dis, 42(Suppl 1): S25–S34

PMID

7 Cui L, Ma X, Sato K, Okuma K, Tenover F C, Mamizuka E M, Gemmell C G, Kim M N, Ploy M C, El-Solh N, Ferraz V, Hiramatsu K (2003). Cell wall thickening is a common feature of vancomycin resistance in Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol, 41(1): 5–14

PMID

8 de la Cruz F, Davies J (2000). Horizontal gene transfer and the origin of species: lessons from bacteria. Trends Microbiol, 8(3): 128–133

PMID

9 Ender M, McCallum N, Adhikari R, Berger-Bächi B (2004). Fitness cost of SCCmec and methicillin resistance levels in Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother, 48(6): 2295–2297

PMID

10 Farrag N, Eltringham I, Liddy H(1996).Vancomycin-dependent Enterococcus faecalis. Lancet348:1581–1582

11 Foucault M L, Courvalin P, Grillot-Courvalin C (2009). Fitness cost of VanA-type vancomycin resistance in methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother, 53(6): 2354–2359

PMID

12 Hartman B J, Tomasz A (1986). Expression of methicillin resistance in heterogeneous strains of Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother, 29(1): 85–92

PMID

13 Hiramatsu K, Hanaki H, Ino T, Yabuta K, Oguri T, Tenover F C (1997). Methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinical strain with reduced vancomycin susceptibility. J Antimicrob Chemother, 40(1): 135–136

PMID

14 Howden B P, Davies J K, Johnson P D, Stinear T P, Grayson M L (2010). Reduced vancomycin susceptibility in Staphylococcus aureus, including vancomycin-intermediate and heterogeneous vancomycin-intermediate strains: resistance mechanisms, laboratory detection, and clinical implications. Clin Microbiol Rev, 23(1): 99–139

PMID

15 International Working Group on the Classification of Staphylococcal Cassette Chromosome Elements (IWG-SCC) (2009). Classification of staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec): guidelines for reporting novel SCCmec elements. Antimicrob Agents Chemother, 53(12): 4961–4967

PMID

16 Kacica M,McDonald L C , and the Centers for Disease Control and Prevention (CDC) (2004). Vancomycin-resistant Staphylococcus aureus—New York, 2004. MMWR Morb Mortal Wkly Rep, 53(15): 322–323

PMID

17 Kainthola A, Bhatt A B (2013). Population based Prevalence of Community Acquired Methicillin Resistant Staphylococcus aureus in Community  Settings of  Srinagar  Garhwal,  India.  RRST,  5(1):  60–62

18 Kirkpatrick B D, Harrington S M, Smith D, Marcellus D, Miller C, Dick J, Karanfil L, Perl T M (1999). An outbreak of vancomycin-dependent Enterococcus faecium in a bone marrow transplant unit. Clin Infect Dis, 29(5): 1268–1273

PMID

19 Klare I, Collatz E, Al-Obeid S, Wagner J, Rodloff AC, Witte W(1992). Glykopeptidresistenz bei Enterococcus faecium aus Besiedlungen und Infectionen von Patienten aus Intensivstationen Berliner Kliniken und einem Transplantationszentrum. ZAC Z. Antimikrob Antineoplast Chemother10:45–53.

20 Leclercq R, Derlot E, Duval J, Courvalin P (1988). Plasmid-mediated resistance to vancomycin and teicoplanin in Enterococcus faecium. N Engl J Med, 319(3): 157–161

PMID

21 Matsuo M, Hishinuma T, Katayama Y, Cui L, Kapi M, Hiramatsu K (2011). Mutation of RNA polymerase beta subunit (rpoB) promotes hVISA-to-VISA phenotypic conversion of strain Mu3. Antimicrob Agents Chemother, 55(9): 4188–4195

PMID

22 Miller D, Urdaneta V, Weltman A, Park S, and the Centers for Disease Control and Prevention (CDC) (2002). Vancomycin-resistant Staphylococcus aureus—Pennsylvania, 2002. MMWR Morb Mortal Wkly Rep, 51(40): 902

PMID

23 Noble W C, Virani Z, Cree R G A (1992). Co-transfer of vancomycin and other resistance genes from Enterococcus faecalis NCTC 12201 to Staphylococcus aureus. FEMS Microbiol Lett, 72(2): 195–198

PMID

24 Noto M J, Fox P M, Archer G L (2008). Spontaneous deletion of the methicillin resistance determinant, mecA, partially compensates for the fitness cost associated with high-level vancomycin resistance in Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother, 52(4): 1221–1229

PMID

25 Périchon B, Courvalin P (2009). VanA-type vancomycin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother, 53(11): 4580–4587

PMID

26 Saha B, Singh A K, Ghosh A, Bal M (2008). Identification and characterization of a vancomycin-resistant Staphylococcus aureus isolated from Kolkata (South Asia). J Med Microbiol, 57(Pt 1): 72–79

PMID

27 Sievert D M, Boulton M L, Stolman G, Johnson D, Stobierski M G, Downes F P, Somsel P A, Rudrik J T, Brown W, Hafeez W, Lundstrom T, Flanagan E, Johnson R, Mitchell J, Chang S, and the Centers for Disease Control and Prevention (CDC) (2002). Staphylococcus aureus resistant to vancomycin—United States, 2002. MMWR Morb Mortal Wkly Rep, 51(26): 565–567

PMID

28 Tenover F C, Weigel L M, Appelbaum P C, McDougal L K, Chaitram J, McAllister S, Clark N, Killgore G, O’Hara C M, Jevitt L, Patel J B, Bozdogan B (2004). Vancomycin-resistant Staphylococcus aureus isolate from a patient in Pennsylvania. Antimicrob Agents Chemother, 48(1): 275–280

PMID

29 Uttley A H C, Collins C H, Naidoo J, George R C (1988). Vancomycin-resistant enterococci. Lancet, 1(8575-6): 57–58

PMID

30 Van Bambeke F, Chauvel M, Reynolds P E, Fraimow H S, Courvalin P (1999). Vancomycin-dependent Enterococcus faecalis clinical isolates and revertant mutants. Antimicrob Agents Chemother, 43(1): 41–47

PMID

31 Weigel L M, Donlan R M, Shin D H, Jensen B, Clark N C, McDougal L K, Zhu W, Musser K A, Thompson J, Kohlerschmidt D, Dumas N, Limberger R J, Patel J B (2007). High-level vancomycin-resistant Staphylococcus aureus isolates associated with a polymicrobial biofilm. Antimicrob Agents Chemother, 51(1): 231–238

PMID

32 Zhu W, Clark N C, McDougal L K, Hageman J, McDonald L C, Patel J B (2008). Vancomycin-resistant Staphylococcus aureus isolates associated with Inc18-like vanA plasmids in Michigan. Antimicrob Agents Chemother, 52(2): 452–457

PMID