Rapid Diagnostic Test of Rabies Using Rat Gasser's Ganglion Neurinoma Cell Culture (RGGN-1)

Abstract

The results of the comparative study of the diagnostic efficacy of the method of isolation of street rabies virus using rat Gasser‘s ganglion neurinoma cell culture (RGGN-1) and biological tests on white mice are presented. It is shown that the method of virus isolation using RGGN-1 cell culture is not inferior in the sensitivity to the classic bioassay on white mice and has obvious advantages, such as reducing the time of diagnosis (up to 3 days using RGGN-1 compared to 30 days using white mice) and its cost-effectiveness. Method of cell line RGGN-1infection is recommended for inclusion in the Standards for the rapid diagnosis of rabies and isolation street rabies virus, which should be considered as a possible replacement of bioassays on white mice. Rapid diagnosis of rabies using RGGN-1 cell culture will provide early diagnosis of rabies in animals to reduce the risk of disease in human and animals.

Keywords

rabies / express diagnostics / RGGN-1cell / culture

References

[1] Гулюкин М.И., Ведерников В.А. Ситуация уже кризисная. Ветеринарная жизнь 2008; 12: 6-8.

[2] Ведерников В.А., Гулюкин М.И., Рождественский И.К. и др. Обзор эпизоотической ситуации по бешенству в Российской Федерации в 2007 году и I полугодии 2008 г. Москва; 2008.

[3] Ведерников В.А., Шабейкин А.А., Гулюкин А.М. и др. Аналитический обзор мероприятий по профилактике и борьбе с бешенством животных в Российской Федерации. Департамент ветеринарии. Москва; 2014.

[4] Иванов А.В., Хисматуллина Н.А., Гулюкин А.М. Эпизоотоло-гический и иммунологический надзор за бешенством. Ветеринарный врач 2010; 4(17): 3-6.

[5] Грибенча С.В., Львов Д.К. Рабдовирусы. В кн.: Медицинская вирусология. Москва: МИА; 2008: 586-94.

[6] Санитарно-эпидемиологические правила «Профилактика бешенства среди людей». Утверждены постановлением Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 06.05.2010 г. № 54.

[7] Государственный стандарт СССР. Животные сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики бешенства. ГОСТ 26075-84 (СТ СЭВ 3452-81). Москва; 1984.

[8] Meslin F.-X., Kaplan M.M., Koprowski H., editors. Laboratory techniques in rabies, 4th ed. Geneva: WHO; 1996.

[9] Barrat J., Barrat M.J., Picard M. et al. Diagnostic de la rage sur culture cellulaire, comparaison des resultants de I'inoculation au neuroblastome murin et de I'inoculation a la souris. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 1986; 11: 207-14.

[10] Webster W.A. A tissue culture infection test in routine rabies diagnosis. Can. J. Vet. Res. 1987; 51: 367-9.

[11] Amano T., Rioheison E., Nirenberg M. Neurotransmitter synthesis by neuroblastoma clons. PNAS USA 1972; 69: 258-63.

[12] Breakfield X.O. Neuroblasmitter metabolism in murin neuroblastoma cells. Life Sci. 1976; 18: 267-78.

[13] Smith A.L., Tignor G.H., Emmons R.W. et al. Isolation of field rabies virus strains in CER and murine neuroblastoma cell cultures. Intervirology 1978; 9(6): 359-61.

[14] Rudd R.G., Trimarchi C.V., Abelseth M.K. Tissue culture technique for the isolation of street strain rabies virus. J. Clin. Microbiol. 1980; 12: 590-3.

[15] Rudd R.J., Trimachi C.V. Comparison of sensitivity of BHK-21 and murine neuroblastoma cells in the isolation of a street strain rabies virus. J. Clin. Microbiol. 1987; 25: 145-68.

[16] Portnoi D., Favre S, Sureau E.P. Use of Neuroblastoma cells (MNB) for the isolation of street rabies virus from field speciment. Human Services Public Health Service Center for Disease Control. USA; 1982: 35-6.

[17] Авцын А.П., Кармышева В.Я., Кондакова Л.И. и др. Новая нейрогенная клеточная линия НГУК-1 и ее применение в биотехнологии и медико-биологических исследованиях. Культивирование клеток животных и человека. Тез. докл. II Всесоюз. совещ. Пущино; 1985: 75-6.

[18] Татаров А.Г., Хисматуллина Н.А., Селимов М.А. и др. Выделение рабического вируса и экспресс-диагностика бешенства в культуре перевиваемых клеток невриномы Гассерова узла крысы. Вопросы вирусологии 1987; 6: 619-21.

[19] Хисматуллина Н.А. Разработка и усовершенствование лабораторных методов диагностики бешенства [диссертация]. Казань; 1989.

[20] Юсупов Р.Х., Хисматуллина Н.А., Селимов М.А. и др. Оценка эффективности методов выделения уличных штаммов вируса бешенства в биологических системах. Ветеринария 1989; 4: 27-9.

[21] Хисматуллина Н.А., Юсупов Р.Х., Селимов М.А. и др. Разработка средств и методов иммунологического мониторинга при бешенстве. Вопросы вирусологии 2001; 5: 45-8.

[22] Иванов А.В., Хисматуллина Н.А, Чернов А.Н. и др. Бешенство: этиология, эпизоотология, диагностика: учебно - методическое пособие в иллюстрациях. Москва: Колос; 2010.

[23] Хисматуллина Н.А., Юсупов Р.Х., Янбарисова С.Р. и др. Методические указания по лабораторной диагностике бешенства. Казань; утверждены ДВ МСХ и П РФ 14.05.1997.

[24] Селимов М.А., Клюева Е.В., Семенова Е.В. и др. Применение метода флуоресцирующих антител для индикации вируса бешенства на культуре клеток. В кн.: Вопросы борьбы с бешенством. Москва: Медицина; 1963.

[25] Михайловский В.В. Материалы по выращиванию уличного вируса в культуре ткани [диссертация]. Москва; 1967.

[26] Atanasiu P., Favre S., Collombier M. Multiplication du virus de la rage fixe sur cellules gliales en culture at apparition d'inclusions specifiques intracytoplasmiques. Application au diagnostic de la rage. C.R. Acad. Sci. 1961; 252: 2029-31.

[27] Грибенча С.В., Козлов А.Ю., Костина Л.В. и др. Получение моноклональных антител к нуклеопротеину вируса бешенства. Вопросы вирусологии 2013; 5: 38-43.

RIGHTS & PERMISSIONS

Eco-Vector