Epigenetic regulators sculpt the plastic brain

Ji-Song Guan , Hong Xie , San-Xiong Liu

Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (5) : 317 -332.

PDF (559KB)
Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (5) : 317 -332. DOI: 10.1007/s11515-017-1465-z
REVIEW
REVIEW

Epigenetic regulators sculpt the plastic brain

Author information +
History +
PDF (559KB)

Abstract

BACKGROUND: Epigenetic regulation is a level of transcriptional regulation that occurs in addition to the genetic programming found in biological systems. In the brain, the epigenetic machinery gives the system an opportunity to adapt to a given environment to help not only the individual but also the species survive and expand. However, such a regulatory system has risks, as mutations resulting from epigenetic regulation can cause severe neurological or psychiatric disorders.

OBJECTIVE: Here, we review the most recent findings regarding the epigenetic mechanisms that control the activity-dependent gene transcription leading to synaptic plasticity and brain function and the defects in these mechanisms that lead to neurological disorders.

METHODS: A search was carried out systematically, searching all relevant publications up to June 2017, using the PubMed search engine. The following keywords were used: “activity induced epigenetic,” “gene transcription,” and “neurological disorders.”

RESULTS: A wide range of studies focused on the roles of epigenetics in transgenerational inheritance, neural differentiation, neural circuit assembly and brain diseases. Thirty-one articles focused specifically on activity-induced epigenetic modifications that regulated gene transcription and memory formation and consolidation.

CONCLUSION: Activity-dependent epigenetic mechanisms of gene expression regulation contribute to basic neuronal physiology, and defects were associated with an elevated risk for brain disorders.

Keywords

epigenetic / activity-dependent gene expression / memory / neurological diseases

Cite this article

Download citation ▾
Ji-Song Guan, Hong Xie, San-Xiong Liu. Epigenetic regulators sculpt the plastic brain. Front. Biol., 2017, 12(5): 317-332 DOI:10.1007/s11515-017-1465-z

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Devor AAndreassen  O AWang  YMäki-Marttunen T, Smeland O B Fan C C Schork A J Holland D Thompson W K Witoelar A Chen C H Desikan R S McEvoy L K Djurovic S Greengard P Svenningsson P Einevoll G T Dale A M  (2017). Genetic evidence for role of integration of fast and slow neurotransmission in schizophrenia. Mol Psychiatry22(6): 792–801

[2]

De Rubeis SHe  XGoldberg A P Poultney C S Samocha K Cicek A E Kou YLiu  LFromer M Walker S Singh T Klei LKosmicki  JShih-Chen F Aleksic B Biscaldi M Bolton P F Brownfeld J M Cai JCampbell  N GCarracedo  AChahrour M H Chiocchetti A G Coon HCrawford  E LCurran  S RDawson  GDuketis E Fernandez B A Gallagher L Geller E Guter S J Hill R S Ionita-Laza J Jimenz Gonzalez P Kilpinen H Klauck S M Kolevzon A Lee ILei  ILei J Lehtimäki T Lin C F Ma’ayan A Marshall C R McInnes A L Neale B Owen M J Ozaki N Parellada M Parr J R Purcell S Puura K Rajagopalan D Rehnström K Reichenberg A Sabo ASachse  MSanders S J Schafer C Schulte-Rüther M Skuse D Stevens C Szatmari P Tammimies K Valladares O Voran A Li-San W Weiss L A Willsey A J Yu T W Yuen R K Cook E H Freitag C M Gill MHultman  C MLehner  TPalotie A Schellenberg G D Sklar P State M W Sutcliffe J S Walsh C A Scherer S W Zwick M E Barett J C Cutler D J Roeder K Devlin B Daly M J Buxbaum J D , and the DDD Study, and the Homozygosity Mapping Collaborative for Autism, and the UK10K Consortium (2014). Synaptic, transcriptional and chromatin genes disrupted in autism. Nature515(7526): 209–215

[3]

Stessman H AXiong  BCoe B P Wang THoekzema  KFenckova M Kvarnung M Gerdts J Trinh S Cosemans N Vives L Lin JTurner  T NSanten  GRuivenkamp C Kriek M van Haeringen A Aten EFriend  KLiebelt J Barnett C Haan EShaw  MGecz J Anderlid B M    Nordgren A Lindstrand A Schwartz C Kooy R F Vandeweyer G Helsmoortel C Romano C Alberti A Vinci M Avola E Giusto S Courchesne E Pramparo T Pierce K Nalabolu S Amaral D G Scheffer I E    Delatycki M B Lockhart P J Hormozdiari F Harich B Castells-Nobau A Xia KPeeters  HNordenskjöld MSchenck A Bernier R A Eichler E E  (2017). Targeted sequencing identifies 91 neurodevelopmental-disorder risk genes with autism and developmental-disability biases. Nat Genet49(4): 515–526

[4]

Guan J SHaggarty  S JGiacometti  EDannenberg J H Joseph N Gao JNieland  T JZhou  YWang X Mazitschek R Bradner J E DePinho R A Jaenisch R Tsai L H  (2009). HDAC2 negatively regulates memory formation and synaptic plasticity. Nature459(7243): 55–60

[5]

Gräff JRei  DGuan J S Wang W Y Seo JHennig  K MNieland  T JFass  D MKao  P FKahn  MSu S C Samiei A Joseph N Haggarty S J Delalle I Tsai L H  (2012). An epigenetic blockade of cognitive functions in the neurodegenerating brain. Nature483(7388): 222–226

[6]

Waddington C H  (2012). The epigenotype. 1942. Int J Epidemiol41(1): 10–13

[7]

Bird A (2007). Perceptions of epigenetics. Nature447(7143): 396–398

[8]

Bird A (2002). DNA methylation patterns and epigenetic memory. Genes Dev16(1): 6–21

[9]

Laird P W (2003). The power and the promise of DNA methylation markers. Nat Rev Cancer3(4): 253–266

[10]

Ramsahoye B H Biniszkiewicz D Lyko FClark  VBird A P Jaenisch R  (2000). Non-CpG methylation is prevalent in embryonic stem cells and may be mediated by DNA methyltransferase 3a. Proc Natl Acad Sci USA97(10): 5237–5242

[11]

Matzke M ABirchler  J A (2005). RNAi-mediated pathways in the nucleus. Nat Rev Genet6(1): 24–35

[12]

Jenuwein TAllis  C D (2001). Translating the histone code. Science293(5532): 1074–1080

[13]

Kouzarides T (2007). Chromatin modifications and their function. Cell128(4): 693–705

[14]

Pusarla R HBhargava  P (2005). Histones in functional diversification. Core histone variants. FEBS J272(20): 5149–5168

[15]

Talbert P BHenikoff  S (2010). Histone variants--ancient wrap artists of the epigenome. Nat Rev Mol Cell Biol11(4): 264–275

[16]

Becker P BHörz  W (2002). ATP-dependent nucleosome remodeling. Annu Rev Biochem71(1): 247–273

[17]

Clapier C RCairns  B R (2009). The biology of chromatin remodeling complexes. Annu Rev Biochem78(1): 273–304

[18]

Borrelli ENestler  E JAllis  C DSassone-Corsi  P (2008). Decoding the epigenetic language of neuronal plasticity. Neuron60(6): 961–974

[19]

Roth T LSweatt  J D (2009). Regulation of chromatin structure in memory formation. Curr Opin Neurobiol19(3): 336–342

[20]

Sweatt J D (2016). GENE EXPRESSION. Chromatin controls behavior. Science353(6296): 218–219

[21]

Zovkic I BSweatt  J D (2015). Memory-Associated Dynamic Regulation of the “Stable” Core of the Chromatin Particle. Neuron87(1): 1–4

[22]

Sweatt J D (2013). The emerging field of neuroepigenetics. Neuron80(3): 624–632

[23]

Kim T KHemberg  MGray J M Costa A M Bear D M Wu JHarmin  D ALaptewicz  MBarbara-Haley K Kuersten S Markenscoff-Papadimitriou E Kuhl DBito  HWorley P F Kreiman G Greenberg M E  (2010). Widespread transcription at neuronal activity-regulated enhancers. Nature465(7295): 182–187

[24]

Sui LWang  YJu L H Chen M (2012). Epigenetic regulation of reelin and brain-derived neurotrophic factor genes in long-term potentiation in rat medial prefrontal cortex. Neurobiol Learn Mem97(4): 425–440

[25]

Malik A NVierbuchen  THemberg M Rubin A A Ling ECouch  C HStroud  HSpiegel I Farh K K Harmin D A Greenberg M E  (2014). Genome-wide identification and characterization of functional neuronal activity-dependent enhancers. Nat Neurosci17(10): 1330–1339

[26]

Gräff JWoldemichael  B TBerchtold  DDewarrat G Mansuy I M  (2012). Dynamic histone marks in the hippocampus and cortex facilitate memory consolidation. Nat Commun3: 991

[27]

Naruse YOh-hashi  KIijima N Naruse M Yoshioka H Tanaka M  (2004). Circadian and light-induced transcription of clock gene Per1 depends on histone acetylation and deacetylation. Mol Cell Biol24(14): 6278–6287

[28]

Martinowich KHattori  DWu H Fouse S He FHu  YFan G Sun Y E  (2003). DNA methylation-related chromatin remodeling in activity-dependent BDNF gene regulation. Science302(5646): 890–893

[29]

Guo J UMa  D KMo  HBall M P Jang M H Bonaguidi M A Balazer J A Eaves H L Xie BFord  EZhang K Ming G L Gao YSong  H (2011). Neuronal activity modifies the DNA methylation landscape in the adult brain. Nat Neurosci14(10): 1345–1351

[30]

Crosio CHeitz  EAllis C D Borrelli E Sassone-Corsi P  (2003). Chromatin remodeling and neuronal response: multiple signaling pathways induce specific histone H3 modifications and early gene expression in hippocampal neurons. J Cell Sci116(Pt 24): 4905–4914

[31]

Levenson J MO’Riordan  K JBrown  K DTrinh  M AMolfese  D LSweatt  J D (2004). Regulation of histone acetylation during memory formation in the hippocampus. J Biol Chem279(39): 40545–40559

[32]

Crosio CCermakian  NAllis C D Sassone-Corsi P  (2000). Light induces chromatin modification in cells of the mammalian circadian clock. Nat Neurosci3(12): 1241–1247

[33]

Dyrvig MHansen  H HChristiansen  S HWoldbye  D PMikkelsen  J DLichota  J (2012). Epigenetic regulation of Arc and c-Fos in the hippocampus after acute electroconvulsive stimulation in the rat. Brain Res Bull88(5): 507–513

[34]

Gupta SKim  S YArtis  SMolfese D L Schumacher A Sweatt J D Paylor R E Lubin F D  (2010). Histone methylation regulates memory formation. J Neurosci30(10): 3589–3599

[35]

Gupta-Agarwal SFranklin  A VDeramus  TWheelock M Davis R L McMahon L L Lubin F D  (2012). G9a/GLP histone lysine dimethyltransferase complex activity in the hippocampus and the entorhinal cortex is required for gene activation and silencing during memory consolidation. J Neurosci32(16): 5440–5453

[36]

Chwang W BO’Riordan  K JLevenson  J MSweatt  J D (2006). ERK/MAPK regulates hippocampal histone phosphorylation following contextual fear conditioning. Learn Mem13(3): 322–328

[37]

Miller C ASweatt  J D (2007). Covalent modification of DNA regulates memory formation. Neuron53(6): 857–869

[38]

Lubin F DRoth  T LSweatt  J D (2008). Epigenetic regulation of BDNF gene transcription in the consolidation of fear memory. J Neurosci28(42): 10576–10586

[39]

Miller C AGavin  C FWhite  J AParrish  R RHonasoge  AYancey C R Rivera I M Rubio M D Rumbaugh G Sweatt J D  (2010). Cortical DNA methylation maintains remote memory. Nat Neurosci13(6): 664–666

[40]

Ma D KJang  M HGuo  J UKitabatake  YChang M L Pow-Anpongkul N Flavell R A Lu BMing  G LSong  H (2009). Neuronal activity-induced Gadd45b promotes epigenetic DNA demethylation and adult neurogenesis. Science323(5917): 1074–1077

[41]

Chen W GChang  QLin Y Meissner A West A E Griffith E C Jaenisch R Greenberg M E  (2003). Derepression of BDNF transcription involves calcium-dependent phosphorylation of MeCP2. Science302(5646): 885–889

[42]

Zhou ZHong  E JCohen  SZhao W N Ho H Y Schmidt L Chen W G Lin YSavner  EGriffith E C Hu LSteen  J AWeitz  C JGreenberg  M E (2006). Brain-specific phosphorylation of MeCP2 regulates activity-dependent Bdnf transcription, dendritic growth, and spine maturation. Neuron52(2): 255–269

[43]

Kaas G AZhong  CEason D E Ross D L Vachhani R V Ming G L King J R Song HSweatt  J D (2013). TET1 controls CNS 5-methylcytosine hydroxylation, active DNA demethylation, gene transcription, and memory formation. Neuron79(6): 1086–1093

[44]

Zhu TLiang  CLi D Tian MLiu  SGao G Guan J S  (2016). Histone methyltransferase Ash1L mediates activity-dependent repression of neurexin-1α. Sci Rep6(1): 26597160;

[45]

Ding XLiu  STian M Zhang W Zhu TLi  DWu J Deng HJia  YXie W Xie HGuan  J S (2017). Activity-induced histone modifications govern Neurexin-1 mRNA splicing and memory preservation. Nat Neurosci20(5): 690–699

[46]

Su YShin  JZhong C Wang SRoychowdhury  PLim J Kim DMing  G LSong  H (2017). Neuronal activity modifies the chromatin accessibility landscape in the adult brain. Nat Neurosci20(3): 476–483

[47]

Rudenko ADawlaty  M MSeo  JCheng A W Meng JLe  TFaull K F Jaenisch R Tsai L H  (2013). Tet1 is critical for neuronal activity-regulated gene expression and memory extinction. Neuron79(6): 1109–1122

[48]

Gräff JJoseph  N FHorn  M ESamiei  AMeng J Seo JRei  DBero A W Phan T X Wagner F Holson E Xu JSun  JNeve R L Mach R H Haggarty S J Tsai L H  (2014). Epigenetic priming of memory updating during reconsolidation to attenuate remote fear memories. Cell156(1-2): 261–276

[49]

Zovkic I BPaulukaitis  B SDay  J JEtikala  D MSweatt  J D (2014). Histone H2A.Z subunit exchange controls consolidation of recent and remote memory. Nature515(7528): 582–586

[50]

Halder RHennion  MVidal R O Shomroni O Rahman R U Rajput A Centeno T P van Bebber F Capece V Garcia Vizcaino J C Schuetz A L Burkhardt S Benito E Navarro Sala M Javan S B Haass C Schmid B Fischer A Bonn S (2016). DNA methylation changes in plasticity genes accompany the formation and maintenance of memory. Nat Neurosci19(1): 102–110 

[51]

Nelson E DKavalali  E TMonteggia  L M (2008). Activity-dependent suppression of miniature neurotransmission through the regulation of DNA methylation. J Neurosci28(2): 395–406

[52]

Rajasethupathy PAntonov  ISheridan R Frey SSander  CTuschl T Kandel E R  (2012). A role for neuronal piRNAs in the epigenetic control of memory-related synaptic plasticity. Cell149(3): 693–707

[53]

Meadows J PGuzman-Karlsson  M CPhillips  SHolleman C Posey J L Day J J Hablitz J J Sweatt J D  (2015). DNA methylation regulates neuronal glutamatergic synaptic scaling. Sci Signal8(382): ra61

[54]

Südhof T C  (2008). Neuroligins and neurexins link synaptic function to cognitive disease. Nature455(7215): 903–911

[55]

Banerjee TChakravarti  D (2011). A peek into the complex realm of histone phosphorylation. Mol Cell Biol31(24): 4858–4873

[56]

Goll M GBestor  T H (2005). Eukaryotic cytosine methyltransferases. Annu Rev Biochem74(1): 481–514

[57]

Su, Y.Shin,  J.Zhong, C.  &  Wang,  S. Neuronal activity modifies the chromatin accessibility landscape in the adult brain. 20, 476–483, doi:10.1038/nn.4494 (2017).

[58]

Guo J USu  YZhong C Ming G L Song H (2011). Emerging roles of TET proteins and 5-hydroxymethylcytosines in active DNA demethylation and beyond. Cell Cycle10(16): 2662–2668

[59]

59 (!!! INVALID CITATION !!!).

[60]

Batsché EYaniv  MMuchardt C  (2006). The human SWI/SNF subunit Brm is a regulator of alternative splicing. Nat Struct Mol Biol13(1): 22–29

[61]

Martinez EPalhan  V BTjernberg  ALymar E S Gamper A M Kundu T K Chait B T Roeder R G  (2001). Human STAGA complex is a chromatin-acetylating transcription coactivator that interacts with pre-mRNA splicing and DNA damage-binding factors in vivo. Mol Cell Biol21(20): 6782–6795

[62]

Cheng DCôté  JShaaban S Bedford M T  (2007). The arginine methyltransferase CARM1 regulates the coupling of transcription and mRNA processing. Mol Cell25(1): 71–83

[63]

Kolasinska-Zwierz P Down TLatorre  ILiu T Liu X S Ahringer J  (2009). Differential chromatin marking of introns and expressed exons by H3K36me3. Nat Genet41(3): 376–381

[64]

Spies NNielsen  C BPadgett  R ABurge  C B (2009). Biased chromatin signatures around polyadenylation sites and exons. Mol Cell36(2): 245–254

[65]

Andersson REnroth  SRada-Iglesias A Wadelius C Komorowski J  (2009). Nucleosomes are well positioned in exons and carry characteristic histone modifications. Genome Res19(10): 1732–1741

[66]

Schwartz SMeshorer  EAst G  (2009). Chromatin organization marks exon-intron structure. Nat Struct Mol Biol16(9): 990–995

[67]

Luco R FPan  QTominaga K Blencowe B J Pereira-Smith O M Misteli T  (2010). Regulation of alternative splicing by histone modifications. Science327(5968): 996–1000

[68]

Nogues GKadener  SCramer P Bentley D Kornblihtt A R  (2002). Transcriptional activators differ in their abilities to control alternative splicing. J Biol Chem277(45): 43110–43114

[69]

Schor I ERascovan  NPelisch F Alló M Kornblihtt A R  (2009). Neuronal cell depolarization induces intragenic chromatin modifications affecting NCAM alternative splicing. Proc Natl Acad Sci USA106(11): 4325–4330

[70]

Sims R J 3rd, Millhouse SChen  C FLewis  B AErdjument-Bromage  HTempst P Manley J L Reinberg D  (2007). Recognition of trimethylated histone H3 lysine 4 facilitates the recruitment of transcription postinitiation factors and pre-mRNA splicing. Mol Cell28(4): 665–676

[71]

Piacentini LFanti  LNegri R Del Vescovo V Fatica A Altieri F Pimpinelli S  (2009). Heterochromatin protein 1 (HP1a) positively regulates euchromatic gene expression through RNA transcript association and interaction with hnRNPs in Drosophila. PLoS Genet5(10): e1000670

[72]

Luco R FAllo  MSchor I E Kornblihtt A R Misteli T  (2011). Epigenetics in alternative pre-mRNA splicing. Cell144(1): 16–26

[73]

Rountree M RBachman  K EHerman  J GBaylin  S B (2001). DNA methylation, chromatin inheritance, and cancer. Oncogene20(24): 3156–3165

[74]

Probst A VDunleavy  EAlmouzni G  (2009). Epigenetic inheritance during the cell cycle. Nat Rev Mol Cell Biol10(3): 192–206

[75]

Okano MBell  D WHaber  D ALi  E (1999). DNA methyltransferases Dnmt3a and Dnmt3b are essential for de novo methylation and mammalian development. Cell99(3): 247–257

[76]

Jia DJurkowska  R ZZhang  XJeltsch A Cheng X  (2007). Structure of Dnmt3a bound to Dnmt3L suggests a model for de novo DNA methylation. Nature449(7159): 248–251

[77]

Pollack YStein  RRazin A Cedar H  (1980). Methylation of foreign DNA sequences in eukaryotic cells. Proc Natl Acad Sci USA77(11): 6463–6467

[78]

Wigler MLevy  DPerucho M  (1981). The somatic replication of DNA methylation. Cell24(1): 33–40

[79]

Gruenbaum YCedar  HRazin A  (1982). Substrate and sequence specificity of a eukaryotic DNA methylase. Nature295(5850): 620–622

[80]

Cheng X (2014). Structural and functional coordination of DNA and histone methylation. Cold Spring Harb Perspect Biol6(8): a018747

[81]

Kimura HShiota  K (2003). Methyl-CpG-binding protein, MeCP2, is a target molecule for maintenance DNA methyltransferase, Dnmt1. J Biol Chem278(7): 4806–4812

[82]

Reik W (2007). Stability and flexibility of epigenetic gene regulation in mammalian development. Nature447(7143): 425–432

[83]

Nakatani YRay-Gallet  DQuivy J P Tagami H Almouzni G  (2004). Two distinct nucleosome assembly pathways: dependent or independent of DNA synthesis promoted by histone H3.1 and H3.3 complexes. Cold Spring Harb Symp Quant Biol69(0): 273–280

[84]

Bannister A J Zegerman P Partridge J F Miska E A Thomas J O Allshire R C Kouzarides T  (2001). Selective recognition of methylated lysine 9 on histone H3 by the HP1 chromo domain. Nature410(6824): 120–124

[85]

Lachner MO’Carroll  DRea S Mechtler K Jenuwein T  (2001). Methylation of histone H3 lysine 9 creates a binding site for HP1 proteins. Nature410(6824): 116–120

[86]

Fritsch LRobin  PMathieu J R Souidi M Hinaux H Rougeulle C Harel-Bellan A Ameyar-Zazoua M Ait-Si-Ali S  (2010). A subset of the histone H3 lysine 9 methyltransferases Suv39h1, G9a, GLP, and SETDB1 participate in a multimeric complex. Mol Cell37(1): 46–56

[87]

Hansen K HHelin  K (2009). Epigenetic inheritance through self-recruitment of the polycomb repressive complex 2. Epigenetics4(3): 133–138

[88]

Margueron RJustin  NOhno K Sharpe M L Son JDrury  W J 3rdVoigt  PMartin S R Taylor W R De Marco V Pirrotta V Reinberg D Gamblin S J  (2009). Role of the polycomb protein EED in the propagation of repressive histone marks. Nature461(7265): 762–767

[89]

Vaute ONicolas  EVandel L Trouche D  (2002). Functional and physical interaction between the histone methyl transferase Suv39H1 and histone deacetylases. Nucleic Acids Res30(2): 475–481

[90]

Scharf A NMeier  KSeitz V Kremmer E Brehm A Imhof A  (2009). Monomethylation of lysine 20 on histone H4 facilitates chromatin maturation. Mol Cell Biol29(1): 57–67

[91]

Fuks FBurgers  W ABrehm  AHughes-Davies L Kouzarides T  (2000). DNA methyltransferase Dnmt1 associates with histone deacetylase activity. Nat Genet24(1): 88–91

[92]

Fujita NWatanabe  SIchimura T Tsuruzoe S Shinkai Y Tachibana M Chiba T Nakao M  (2003). Methyl-CpG binding domain 1 (MBD1) interacts with the Suv39h1-HP1 heterochromatic complex for DNA methylation-based transcriptional repression. J Biol Chem278(26): 24132–24138

[93]

Dietrich JHan  RYang Y Mayer-Pröschel M Noble M  (2006). CNS progenitor cells and oligodendrocytes are targets of chemotherapeutic agents in vitro and in vivo. J Biol5(7): 22

[94]

Mizutani KYoon  KDang L Tokunaga A Gaiano N  (2007). Differential Notch signalling distinguishes neural stem cells from intermediate progenitors. Nature449(7160): 351–355

[95]

Namihira MKohyama  JAbematsu M Nakashima K  (2008). Epigenetic mechanisms regulating fate specification of neural stem cells. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci363(1500): 2099–2109

[96]

Hirabayashi YGotoh  Y (2010). Epigenetic control of neural precursor cell fate during development. Nat Rev Neurosci11(6): 377–388

[97]

Lunyak V VBurgess  RPrefontaine G G Nelson C Sze S H Chenoweth J Schwartz P Pevzner P A Glass C Mandel G Rosenfeld M G  (2002). Corepressor-dependent silencing of chromosomal regions encoding neuronal genes. Science298(5599): 1747–1752

[98]

Ballas NGrunseich  CLu D D Speh J C Mandel G  (2005). REST and its corepressors mediate plasticity of neuronal gene chromatin throughout neurogenesis. Cell121(4): 645–657

[99]

Sikorska MSandhu  J KDeb-Rinker  PJezierski A Leblanc J Charlebois C Ribecco-Lutkiewicz M Bani-Yaghoub M Walker P R  (2008). Epigenetic modifications of SOX2 enhancers, SRR1 and SRR2, correlate with in vitro neural differentiation. J Neurosci Res86(8): 1680–1693

[100]

Sun YNadal-Vicens  MMisono S Lin M Z Zubiaga A Hua XFan  GGreenberg M E  (2001). Neurogenin promotes neurogenesis and inhibits glial differentiation by independent mechanisms. Cell104(3): 365–376

[101]

Takizawa TNakashima  KNamihira M Ochiai W Uemura A Yanagisawa M Fujita N Nakao M Taga T (2001). DNA methylation is a critical cell-intrinsic determinant of astrocyte differentiation in the fetal brain. Dev Cell1(6): 749–758

[102]

Namihira MNakashima  KTaga T  (2004). Developmental stage dependent regulation of DNA methylation and chromatin modification in a immature astrocyte specific gene promoter. FEBS Lett572(1-3): 184–188

[103]

Fan GMartinowich  KChin M H He FFouse  S DHutnick  LHattori D Ge WShen  YWu H ten Hoeve J Shuai K Sun Y E  (2005). DNA methylation controls the timing of astrogliogenesis through regulation of JAK-STAT signaling. Development132(15): 3345–3356

[104]

Brooks P JMarietta  CGoldman D  (1996). DNA mismatch repair and DNA methylation in adult brain neurons. J Neurosci16(3): 939–945

[105]

Wu ZHuang  KYu J Le TNamihira  MLiu Y Zhang J Xue ZCheng  LFan G  (2012). Dnmt3a regulates both proliferation and differentiation of mouse neural stem cells. J Neurosci Res90(10): 1883–1891

[106]

Bai SGhoshal  KDatta J Majumder S Yoon S O Jacob S T  (2005). DNA methyltransferase 3b regulates nerve growth factor-induced differentiation of PC12 cells by recruiting histone deacetylase 2. Mol Cell Biol25(2): 751–766

[107]

Williams R RAzuara  VPerry P Sauer S Dvorkina M Jørgensen H Roix JMcQueen  PMisteli T Merkenschlager M Fisher A G  (2006). Neural induction promotes large-scale chromatin reorganisation of the Mash1 locus. J Cell Sci119(Pt 1): 132–140

[108]

Attia MRachez  CDe Pauw A Avner P Rogner U C  (2007). Nap1l2 promotes histone acetylation activity during neuronal differentiation. Mol Cell Biol27(17): 6093–6102

[109]

Gogolla NLeblanc  J JQuast  K BSüdhof  T CFagiolini  MHensch T K  (2009). Common circuit defect of excitatory-inhibitory balance in mouse models of autism. J Neurodev Disord1(2): 172–181

[110]

Geschwind D H Levitt P  (2007). Autism spectrum disorders: developmental disconnection syndromes. Curr Opin Neurobiol17(1): 103–111

[111]

Wood LShepherd  G M (2010). Synaptic circuit abnormalities of motor-frontal layer 2/3 pyramidal neurons in a mutant mouse model of Rett syndrome. Neurobiol Dis38(2): 281–287

[112]

Ho LCrabtree  G R (2010). Chromatin remodelling during development. Nature463(7280): 474–484

[113]

Ronan J LWu  WCrabtree G R  (2013). From neural development to cognition: unexpected roles for chromatin. Nat Rev Genet14(5): 347–359

[114]

Yamada TYang  YHemberg M Yoshida T Cho H Y Murphy J P Fioravante D Regehr W G Gygi S P Georgopoulos K Bonni A  (2014). Promoter decommissioning by the NuRD chromatin remodeling complex triggers synaptic connectivity in the mammalian brain. Neuron83(1): 122–134

[115]

Yang YYamada  THill K K Hemberg M Reddy N C Cho H Y Guthrie A N Oldenborg A Heiney S A Ohmae S Medina J F Holy T E Bonni A  (2016). Chromatin remodeling inactivates activity genes and regulates neural coding. Science353(6296): 300–305

[116]

Fortin D ASrivastava  TSoderling T R  (2012). Structural modulation of dendritic spines during synaptic plasticity. Neuroscientist18(4): 326–341

[117]

Chen D YBambah-Mukku  DPollonini G Alberini C M  (2012). Glucocorticoid receptors recruit the CaMKIIα-BDNF-CREB pathways to mediate memory consolidation. Nat Neurosci15(12): 1707–1714

[118]

Ding, X.Activity-induced histone modifications govern Neurexin-1 mRNA splicing and memory preservation. 20, 690–699160;(2017).

[119]

Maze IWenderski  WNoh K M Bagot R C Tzavaras N Purushothaman I Elsässer S J Guo YIonete  CHurd Y L Tamminga C A Halene T Farrelly L Soshnev A A Wen DRafii  SBirtwistle M R Akbarian S Buchholz B A Blitzer R D Nestler E J Yuan Z F Garcia B A Shen LMolina  HAllis C D  (2015). Critical Role of Histone Turnover in Neuronal Transcription and Plasticity. Neuron87(1): 77–94

[120]

Levenson J MRoth  T LLubin  F DMiller  C AHuang  I CDesai  PMalone L M Sweatt J D  (2006). Evidence that DNA (cytosine-5) methyltransferase regulates synaptic plasticity in the hippocampus. J Biol Chem281(23): 15763–15773

[121]

Morris M JAdachi  MNa E S Monteggia L M  (2014). Selective role for DNMT3a in learning and memory. Neurobiol Learn Mem115: 30–37

[122]

Mitchnick K A Creighton S O’Hara M Kalisch B E Winters B D  (2015). Differential contributions of de novo and maintenance DNA methyltransferases to object memory processing in the rat hippocampus and perirhinal cortex--a double dissociation. Eur J Neurosci41(6): 773–786

[123]

Kamakaka R TBiggins  S (2005). Histone variants: deviants? Genes Dev19(3): 295–310

[124]

Kendler K S (2001). Twin studies of psychiatric illness: an update. Arch Gen Psychiatry58(11): 1005–1014

[125]

Millan M JAgid  YBrüne M Bullmore E T Carter C S Clayton N S Connor R Davis S Deakin B DeRubeis R J Dubois B Geyer M A Goodwin G M Gorwood P Jay T M Joëls M Mansuy I M Meyer-Lindenberg A Murphy D Rolls E Saletu B Spedding M Sweeney J Whittington M Young L J  (2012). Cognitive dysfunction in psychiatric disorders: characteristics, causes and the quest for improved therapy. Nat Rev Drug Discov11(2): 141–168

[126]

Gibson G (2012). Rare and common variants: twenty arguments. Nat Rev Genet13(2): 135–145

[127]

Eichler E EFlint  JGibson G Kong ALeal  S MMoore  J HNadeau  J H (2010). Missing heritability and strategies for finding the underlying causes of complex disease. Nat Rev Genet11(6): 446–450

[128]

Gershon E SAlliey-Rodriguez  NLiu C  (2011). After GWAS: searching for genetic risk for schizophrenia and bipolar disorder. Am J Psychiatry168(3): 253–256

[129]

So H CGui  A HCherny  S SSham  P C (2011). Evaluating the heritability explained by known susceptibility variants: a survey of ten complex diseases. Genet Epidemiol35(5): 310–317

[130]

BohacekJMansuy  I M(2013).Epigenetic inheritance of disease and disease risk.  Neuropsychopharmacology38: 220–236

[131]

Danchin ÉCharmantier  AChampagne F A Mesoudi A Pujol B Blanchet S  (2011). Beyond DNA: integrating inclusive inheritance into an extended theory of evolution. Nat Rev Genet12(7): 475–486

[132]

Daxinger LWhitelaw  E (2010). Transgenerational epigenetic inheritance: more questions than answers. Genome Res20(12): 1623–1628

[133]

Horsthemke B (2007). Heritable germline epimutations in humans. Nat Genet39(5): 573–574, author reply 575–576

[134]

Sha K (2008). A mechanistic view of genomic imprinting. Annu Rev Genomics Hum Genet9(1): 197–216

[135]

Paoloni-Giacobino A Chaillet J R  (2006). The role of DMDs in the maintenance of epigenetic states. Cytogenet Genome Res113(1-4): 116–121

[136]

Bartolomei M S Ferguson-Smith A C  (2011). Mammalian genomic imprinting. Cold Spring Harb Perspect Biol3(7): a002592

[137]

Feng SJacobsen  S EReik  W (2010). Epigenetic reprogramming in plant and animal development. Science330(6004): 622–627

[138]

Franklin T BRussig  HWeiss I C Gräff J Linder N Michalon A Vizi SMansuy  I M (2010). Epigenetic transmission of the impact of early stress across generations. Biol Psychiatry68(5): 408–415

[139]

Johnson G DLalancette  CLinnemann A K Leduc F Boissonneault G Krawetz S A  (2011). The sperm nucleus: chromatin, RNA, and the nuclear matrix. Reproduction141(1): 21–36

[140]

Hammoud S SNix  D AZhang  HPurwar J Carrell D T Cairns B R  (2009). Distinctive chromatin in human sperm packages genes for embryo development. Nature460(7254): 473–478 

[141]

Puri DDhawan  JMishra R K  (2010). The paternal hidden agenda: Epigenetic inheritance through sperm chromatin. Epigenetics5(5): 386–391

[142]

Brykczynska UHisano  MErkek S Ramos L Oakeley E J Roloff T C Beisel C Schübeler D Stadler M B Peters A H  (2010). Repressive and active histone methylation mark distinct promoters in human and mouse spermatozoa. Nat Struct Mol Biol17(6): 679–687

[143]

Hallmayer JCleveland  STorres A Phillips J Cohen B Torigoe T Miller J Fedele A Collins J Smith K Lotspeich L Croen L A Ozonoff S Lajonchere C Grether J K Risch N  (2011). Genetic heritability and shared environmental factors among twin pairs with autism. Arch Gen Psychiatry68(11): 1095–1102

[144]

Cannon T DKaprio  JLönnqvist J Huttunen M Koskenvuo M  (1998). The genetic epidemiology of schizophrenia in a Finnish twin cohort. A population-based modeling study. Arch Gen Psychiatry55(1): 67–74

[145]

Gatz MPedersen  N LBerg  SJohansson B Johansson K Mortimer J A Posner S F Viitanen M Winblad B Ahlbom A  (1997). Heritability for Alzheimer’s disease: the study of dementia in Swedish twins. J Gerontol A Biol Sci Med Sci52(2): M117–M125

[146]

Fraga M FBallestar  EPaz M F Ropero S Setien F Ballestar M L Heine-Suñer D Cigudosa J C Urioste M Benitez J Boix-Chornet M Sanchez-Aguilera A Ling CCarlsson  EPoulsen P Vaag AStephan  ZSpector T D Wu Y Z Plass C Esteller M  (2005). Epigenetic differences arise during the lifetime of monozygotic twins. Proc Natl Acad Sci USA102(30): 10604–10609

[147]

Gershon ASudheimer  KTirouvanziam R Williams L M O’Hara R  (2013). The long-term impact of early adversity on late-life psychiatric disorders. Curr Psychiatry Rep15(4): 352

[148]

Bagot R CZhang  T YWen  XNguyen T T Nguyen H B Diorio J Wong T P Meaney M J  (2012). Variations in postnatal maternal care and the epigenetic regulation of metabotropic glutamate receptor 1 expression and hippocampal function in the rat. Proc Natl Acad Sci USA109(Suppl 2): 17200–17207

[149]

Zhang T YHellstrom  I CBagot  R CWen  XDiorio J Meaney M J  (2010). Maternal care and DNA methylation of a glutamic acid decarboxylase 1 promoter in rat hippocampus. J Neurosci30(39): 13130–13137

[150]

Roth T LLubin  F DFunk  A JSweatt  J D (2009). Lasting epigenetic influence of early-life adversity on the BDNF gene. Biol Psychiatry65(9): 760–769

[151]

Hashimoto TBergen  S ENguyen  Q LXu  BMonteggia L M Pierri J N Sun ZSampson  A RLewis  D A (2005). Relationship of brain-derived neurotrophic factor and its receptor TrkB to altered inhibitory prefrontal circuitry in schizophrenia. J Neurosci25(2): 372–383

[152]

Jin BTao  QPeng J Soo H M Wu WYing  JFields C R Delmas A L Liu XQiu  JRobertson K D  (2008). DNA methyltransferase 3B (DNMT3B) mutations in ICF syndrome lead to altered epigenetic modifications and aberrant expression of genes regulating development, neurogenesis and immune function. Hum Mol Genet17(5): 690–709

[153]

Jowaed ASchmitt  IKaut O Wüllner U  (2010). Methylation regulates alpha-synuclein expression and is decreased in Parkinson’s disease patients’ brains. J Neurosci30(18): 6355–6359

[154]

Winkelmann JLin  LSchormair B Kornum B R Faraco J Plazzi G Melberg A Cornelio F Urban A E Pizza F Poli FGrubert  FWieland T Graf EHallmayer  JStrom T M Mignot E  (2012). Mutations in DNMT1 cause autosomal dominant cerebellar ataxia, deafness and narcolepsy. Hum Mol Genet21(10): 2205–2210

[155]

Chestnut B AChang  QPrice A Lesuisse C Wong MMartin  L J (2011). Epigenetic regulation of motor neuron cell death through DNA methylation. J Neurosci31(46): 16619–16636

[156]

Amir R EVan den Veyver  I BWan  MTran C Q Francke U Zoghbi H Y  (1999). Rett syndrome is caused by mutations in X-linked MECP2, encoding methyl-CpG-binding protein 2. Nat Genet23(2): 185–188

[157]

Mnatzakanian G N Lohi HMunteanu  IAlfred S E Yamada T MacLeod P J Jones J R Scherer S W Schanen N C Friez M J Vincent J B Minassian B A  (2004). A previously unidentified MECP2 open reading frame defines a new protein isoform relevant to Rett syndrome. Nat Genet36(4): 339–341

[158]

Chen R ZAkbarian  STudor M Jaenisch R  (2001). Deficiency of methyl-CpG binding protein-2 in CNS neurons results in a Rett-like phenotype in mice. Nat Genet27(3): 327–331

[159]

Collins A LLevenson  J MVilaythong  A PRichman  RArmstrong D L Noebels J L David Sweatt J Zoghbi H Y  (2004). Mild overexpression of MeCP2 causes a progressive neurological disorder in mice. Hum Mol Genet13(21): 2679–2689

[160]

Guy JHendrich  BHolmes M Martin J E Bird A (2001). A mouse Mecp2-null mutation causes neurological symptoms that mimic Rett syndrome. Nat Genet27(3): 322–326

[161]

Carney R MWolpert  C MRavan  S AShahbazian  MAshley-Koch A Cuccaro M L Vance J M Pericak-Vance M A  (2003). Identification of MeCP2 mutations in a series of females with autistic disorder. Pediatr Neurol28(3): 205–211

[162]

Kleefstra Tvan Zelst-Stams  W ANillesen  W MCormier-Daire  VHouge G Foulds N van Dooren M Willemsen M H Pfundt R Turner A Wilson M McGaughran J Rauch A Zenker M Adam M P Innes M Davies C López A G Casalone R Weber A Brueton L A Navarro A D Bralo M P Venselaar H Stegmann S P Yntema H G van Bokhoven H Brunner H G  (2009). Further clinical and molecular delineation of the 9q subtelomeric deletion syndrome supports a major contribution of EHMT1 haploinsufficiency to the core phenotype. J Med Genet46(9): 598–606

[163]

Kirov GPocklington  A JHolmans  PIvanov D Ikeda M Ruderfer D Moran J Chambert K Toncheva D Georgieva L Grozeva D Fjodorova M Wollerton R Rees ENikolov  Ivan de Lagemaat  L NBayés  AFernandez E Olason P I Böttcher Y Komiyama N H Collins M O Choudhary J Stefansson K Stefansson H Grant S G Purcell S Sklar P O’Donovan M C Owen M J  (2012). De novo CNV analysis implicates specific abnormalities of postsynaptic signalling complexes in the pathogenesis of schizophrenia. Mol Psychiatry17(2): 142–153

[164]

Roelfsema J H Peters D J  (2007). Rubinstein-Taybi syndrome: clinical and molecular overview. Expert Rev Mol Med9(23): 1–16

[165]

Zollino MOrteschi  DMurdolo M Lattante S Battaglia D Stefanini C Mercuri E Chiurazzi P Neri GMarangi  G (2012). Mutations in KANSL1 cause the 17q21.31 microdeletion syndrome phenotype. Nat Genet44(6): 636–638

[166]

Michelson D J Shevell M I Sherr E H Moeschler J B Gropman A L Ashwal S  (2011). Evidence report: Genetic and metabolic testing on children with global developmental delay: report of the Quality Standards Subcommittee of the American Academy of Neurology and the Practice Committee of the Child Neurology Society. Neurology77(17): 1629–1635

[167]

Adegbola AGao  HSommer S Browning M  (2008). A novel mutation in JARID1C/SMCX in a patient with autism spectrum disorder (ASD). Am J Med Genet A146A(4): 505–511

[168]

Berdasco MRopero  SSetien F Fraga M F Lapunzina P Losson R Alaminos M Cheung N K Rahman N Esteller M  (2009). Epigenetic inactivation of the Sotos overgrowth syndrome gene histone methyltransferase NSD1 in human neuroblastoma and glioma. Proc Natl Acad Sci USA106(51): 21830–21835

[169]

Kleine-Kohlbrecher D Christensen J Vandamme J Abarrategui I Bak MTommerup  NShi X Gozani O Rappsilber J Salcini A E Helin K  (2010). A functional link between the histone demethylase PHF8 and the transcription factor ZNF711 in X-linked mental retardation. Mol Cell38(2): 165–178

[170]

Pereira P MSchneider  APannetier S Heron D Hanauer A  (2010). Coffin-Lowry syndrome. Eur J Hum Genet18(6): 627–633

[171]

Gibson W THood  R LZhan  S HBulman  D EFejes  A PMoore  RMungall A J Eydoux P Babul-Hirji R An JMarra  M AChitayat  DBoycott K M Weaver D D Jones S J , and the FORGE Canada Consortium (2012). Mutations in EZH2 cause Weaver syndrome. Am J Hum Genet90(1): 110–118

[172]

Jones W DDafou  DMcEntagart M Woollard W J Elmslie F V Holder-Espinasse M Irving M Saggar A K Smithson S Trembath R C Deshpande C Simpson M A  (2012). De novo mutations in MLL cause Wiedemann-Steiner syndrome. Am J Hum Genet91(2): 358–364

[173]

Ng S BBigham  A WBuckingham  K JHannibal  M CMcMillin  M JGildersleeve  H IBeck  A ETabor  H KCooper  G MMefford  H CLee  CTurner E H Smith J D Rieder M J Yoshiura K Matsumoto N Ohta TNiikawa  NNickerson D A Bamshad M J Shendure J  (2010). Exome sequencing identifies MLL2 mutations as a cause of Kabuki syndrome. Nat Genet42(9): 790–793

[174]

Campeau P MKim  J CLu  J TSchwartzentruber  J AAbdul-Rahman  O ASchlaubitz  SMurdock D M Jiang M M Lammer E J Enns G M Rhead W J Rowland J Robertson S P Cormier-Daire V Bainbridge M N Yang X J Gingras M C Gibbs R A Rosenblatt D S Majewski J Lee B H  (2012). Mutations in KAT6B, encoding a histone acetyltransferase, cause Genitopatellar syndrome. Am J Hum Genet90(2): 282–289

[175]

Lederer DGrisart  BDigilio M C Benoit V Crespin M Ghariani S C Maystadt I Dallapiccola B Verellen-Dumoulin C  (2012). Deletion of KDM6A, a histone demethylase interacting with MLL2, in three patients with Kabuki syndrome. Am J Hum Genet90(1): 119–124

[176]

Williams S RAldred  M ADer Kaloustian  V MHalal  FGowans G McLeod D R Zondag S Toriello H V Magenis R E Elsea S H  (2010). Haploinsufficiency of HDAC4 causes brachydactyly mental retardation syndrome, with brachydactyly type E, developmental delays, and behavioral problems. Am J Hum Genet87(2): 219–228

[177]

Iossifov IRonemus  MLevy D Wang ZHakker  IRosenbaum J Yamrom B Lee Y H Narzisi G Leotta A Kendall J Grabowska E Ma BMarks  SRodgers L Stepansky A Troge J Andrews P Bekritsky M Pradhan K Ghiban E Kramer M Parla J Demeter R Fulton L L Fulton R S Magrini V J Ye KDarnell  J CDarnell  R BMardis  E RWilson  R KSchatz  M CMcCombie  W RWigler  M (2012). De novo gene disruptions in children on the autistic spectrum. Neuron74(2): 285–299

[178]

Steffan J SBodai  LPallos J Poelman M McCampbell A Apostol B L Kazantsev A Schmidt E Zhu Y Z Greenwald M Kurokawa R Housman D E Jackson G R Marsh J L Thompson L M  (2001). Histone deacetylase inhibitors arrest polyglutamine-dependent neurodegeneration in Drosophila. Nature413(6857): 739–743

[179]

Ferrante R JKubilus  J KLee  JRyu H Beesen A Zucker B Smith K Kowall N W Ratan R R Luthi-Carter R Hersch S M  (2003). Histone deacetylase inhibition by sodium butyrate chemotherapy ameliorates the neurodegenerative phenotype in Huntington’s disease mice. J Neurosci23(28): 9418–9427

[180]

Richards CJones  CGroves L Moss JOliver  C (2015). Prevalence of autism spectrum disorder phenomenology in genetic disorders: a systematic review and meta-analysis. Lancet Psychiatry2(10): 909–916

[181]

Beyer K SBlasi  FBacchelli E Klauck S M Maestrini E Poustka A ,Molecular Genetic Study of Autism C I, and the International Molecular Genetic Study of Autism Consortium (IMGSAC) (2002). Mutation analysis of the coding sequence of the MECP2 gene in infantile autism. Hum Genet111(4-5): 305–309

[182]

Crawford D CAcuna J MSherman S L 2001). FMR1 and the fragile X syndrome: human genome epidemiology review. Genet Med3: 359–371

[183]

Bernier RGolzio  CXiong B Stessman H A Coe B P Penn OWitherspoon  KGerdts J Baker C Vulto-van Silfhout A T Schuurs-Hoeijmakers J H Fichera M Bosco P Buono S Alberti A Failla P Peeters H Steyaert J Vissers L E Francescatto L Mefford H C Rosenfeld J A Bakken T O’Roak B J Pawlus M Moon RShendure  JAmaral D G Lein ERankin  JRomano C de Vries B B Katsanis N Eichler E E  (2014). Disruptive CHD8 mutations define a subtype of autism early in development. Cell158(2): 263–276

[184]

Merner NForgeot d’Arc  BBell S C Maussion G Peng HGauthier  JCrapper L Hamdan F F Michaud J L Mottron L Rouleau G A Ernst C  (2016). A de novo frameshift mutation in chromodomain helicase DNA-binding domain 8 (CHD8): A case report and literature review. Am J Med Genet A170A(5): 1225–1235

[185]

Johansson MRåstam  MBillstedt E Danielsson S Strömland K Miller M Gillberg C  (2006). Autism spectrum disorders and underlying brain pathology in CHARGE association. Dev Med Child Neurol48(1): 40–50

[186]

Smith I MNichols  S LIssekutz  KBlake K , and the Canadian Paediatric Surveillance Program (2005). Behavioral profiles and symptoms of autism in CHARGE syndrome: preliminary Canadian epidemiological data. Am J Med Genet A133A(3): 248–256

[187]

Ladd-Acosta CHansen  K DBriem  EFallin M D Kaufmann W E Feinberg A P  (2014). Common DNA methylation alterations in multiple brain regions in autism. Mol Psychiatry19(8): 862–871

[188]

Nardone SSams  D SReuveni  EGetselter D Oron OKarpuj  MElliott E  (2014). DNA methylation analysis of the autistic brain reveals multiple dysregulated biological pathways. Transl Psychiatry4(9): e433

[189]

Elagoz Yuksel M Yuceturk B Karatas O F Ozen MDogangun  B (2016). The altered promoter methylation of oxytocin receptor gene in autism. J Neurogenet30(3-4): 280–284

[190]

Gregory S GConnelly  J JTowers  A JJohnson  JBiscocho D Markunas C A Lintas C Abramson R K Wright H H Ellis P Langford C F Worley G Delong G R Murphy S K Cuccaro M L Persico A Pericak-Vance M A  (2009). Genomic and epigenetic evidence for oxytocin receptor deficiency in autism. BMC Med7(1): 62

[191]

Jiang Y HSahoo  TMichaelis R C Bercovich D Bressler J Kashork C D Liu QShaffer  L GSchroer  R JStockton  D WSpielman  R SStevenson  R EBeaudet  A L (2004). A mixed epigenetic/genetic model for oligogenic inheritance of autism with a limited role for UBE3A. Am J Med Genet A131(1): 1–10 

[192]

Nagarajan R P Hogart A R Gwye YMartin  M RLaSalle  J M (2006). Reduced MeCP2 expression is frequent in autism frontal cortex and correlates with aberrant MECP2 promoter methylation. Epigenetics1(4): e1–e11

[193]

Zhu LWang  XLi X L Towers A Cao XWang  PBowman R Yang HGoldstein  JLi Y J Jiang Y H  (2014). Epigenetic dysregulation of SHANK3 in brain tissues from individuals with autism spectrum disorders. Hum Mol Genet23(6): 1563–1578

[194]

Shulha H PCheung  IWhittle C Wang JVirgil  DLin C L Guo YLessard  AAkbarian S Weng Z (2012). Epigenetic signatures of autism: trimethylated H3K4 landscapes in prefrontal neurons. Arch Gen Psychiatry69(3): 314–324

[195]

Sun WPoschmann  JCruz-Herrera Del Rosario  RParikshak N N Hajan H S Kumar V Ramasamy R Belgard T G Elanggovan B Wong C C Mill JGeschwind  D HPrabhakar  S (2016). Histone Acetylome-wide Association Study of Autism Spectrum Disorder. Cell167(5): 1385–1397.e11

[196]

Hernandez D G Nalls M A Gibbs J R Arepalli S van der Brug M Chong S Moore M Longo D L Cookson M R Traynor B J Singleton A B  (2011). Distinct DNA methylation changes highly correlated with chronological age in the human brain. Hum Mol Genet20(6): 1164–1172

[197]

Lu HLiu  XDeng Y Qing H (2013). DNA methylation, a hand behind neurodegenerative diseases. Front Aging Neurosci5: 85

[198]

Lu TAron  LZullo J Pan YKim  HChen Y Yang T H Kim H M Drake D Liu X S Bennett D A Colaiácovo M P Yankner B A  (2014). REST and stress resistance in ageing and Alzheimer’s disease. Nature507(7493): 448–454

[199]

De Jager P L Srivastava G Lunnon K Burgess J Schalkwyk L C Yu LEaton  M LKeenan  B TErnst  JMcCabe C Tang ARaj  TReplogle J Brodeur W Gabriel S Chai H S Younkin C Younkin S G Zou FSzyf  MEpstein C B Schneider J A Bernstein B E Meissner A Ertekin-Taner N Chibnik L B Kellis M Mill JBennett  D A (2014). Alzheimer’s disease: early alterations in brain DNA methylation at ANK1, BIN1, RHBDF2 and other loci. Nat Neurosci17(9): 1156–1163

[200]

Lunnon KSmith  RHannon E De Jager P L Srivastava G Volta M Troakes C Al-Sarraj S Burrage J Macdonald R Condliffe D Harries L W Katsel P Haroutunian V Kaminsky Z Joachim C Powell J Lovestone S Bennett D A Schalkwyk L C Mill J (2014). Methylomic profiling implicates cortical deregulation of ANK1 in Alzheimer’s disease. Nat Neurosci17(9): 1164–1170

[201]

Chouliaras LMastroeni  DDelvaux E Grover A Kenis G Hof P R Steinbusch H W Coleman P D Rutten B P van den Hove D L  (2013). Consistent decrease in global DNA methylation and hydroxymethylation in the hippocampus of Alzheimer’s disease patients. Neurobiol Aging34(9): 2091–2099

[202]

Mastroeni DMcKee  AGrover A Rogers J Coleman P D  (2009). Epigenetic differences in cortical neurons from a pair of monozygotic twins discordant for Alzheimer’s disease. PLoS One4(8): e6617

[203]

Wang S COelze  BSchumacher A  (2008). Age-specific epigenetic drift in late-onset Alzheimer’s disease. PLoS One3(7): e2698

[204]

Bakulski K MDolinoy  D CSartor  M APaulson  H LKonen  J RLieberman  A PAlbin  R LHu  HRozek L S  (2012). Genome-wide DNA methylation differences between late-onset Alzheimer’s disease and cognitively normal controls in human frontal cortex. J Alzheimers Dis29(3): 571–588 

[205]

Savas J NMakusky  AOttosen S Baillat D Then FKrainc  DShiekhattar R Markey S P Tanese N  (2008). Huntington’s disease protein contributes to RNA-mediated gene silencing through association with Argonaute and P bodies. Proc Natl Acad Sci USA105(31): 10820–10825

[206]

Buckley N JJohnson  RZuccato C Bithell A Cattaneo E  (2010). The role of REST in transcriptional and epigenetic dysregulation in Huntington’s disease. Neurobiol Dis39(1): 28–39

[207]

Zuccato CTartari  MCrotti A Goffredo D Valenza M Conti L Cataudella T Leavitt B R Hayden M R Timmusk T Rigamonti D Cattaneo E  (2003). Huntingtin interacts with REST/NRSF to modulate the transcription of NRSE-controlled neuronal genes. Nat Genet35(1): 76–83

[208]

Zuccato CBelyaev  NConforti P Ooi LTartari  MPapadimou E MacDonald M Fossale E Zeitlin S Buckley N Cattaneo E  (2007). Widespread disruption of repressor element-1 silencing transcription factor/neuron-restrictive silencer factor occupancy at its target genes in Huntington’s disease. J Neurosci27(26): 6972–6983

[209]

von Schimmelmann M Feinberg P A Sullivan J M Ku S M Badimon A Duff M K Wang ZLachmann  ADewell S Ma’ayan A Han M H Tarakhovsky A Schaefer A  (2016). Polycomb repressive complex 2 (PRC2) silences genes responsible for neurodegeneration. Nat Neurosci19(10): 1321–1330

[210]

Wang FYang  YLin X Wang J Q Wu Y S Xie WWang  DZhu S Liao Y Q Sun QYang  Y GLuo  H RGuo  CHan C Tang T S  (2013). Genome-wide loss of 5-hmC is a novel epigenetic feature of Huntington’s disease. Hum Mol Genet22(18): 3641–3653

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (559KB)

1390

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/