Illuminating the structure and dynamics of chromatin by fluorescence labeling

Shipeng Shao , Lei Chang , Yingping Hou , Yujie Sun

Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (4) : 241 -257.

PDF (4097KB)
Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (4) : 241 -257. DOI: 10.1007/s11515-017-1454-2
REVIEW
REVIEW

Illuminating the structure and dynamics of chromatin by fluorescence labeling

Author information +
History +
PDF (4097KB)

Abstract

BACKGROUND: Visualization of chromosomal loci location and dynamics is crucial for understanding many fundamental intra-nuclear processes such as DNA transcription, replication, and repair.

OBJECTIVE: Here, we will describe the development of fluorescence labeling methods for chromatin imaging, including traditional as well as emerging chromatin labeling techniques in both fixed and live cells. We will also discuss current issues and provide a perspective on future developments and applications of the chromatin labeling technology.

METHODS: A systematic literature search was performed using the PubMed. Studies published over the past 50 years were considered for review. More than 100 articles were cited in this review.

RESULTS: Taking into account sensitivity, specificity, and spatiotemporal resolution, fluorescence labeling and imaging has been the most prevalent approach for chromatin visualization. Among all the fluorescent labeling tools, the adoption of genome editing tools, such as TALE and CRISPR, have great potential for the labeling and imaging of chromatin.

CONCLUSION: Although a number of chromatin labeling techniques are available for both fixed and live cells, much more effort is still clearly required to develop fluorescence labeling methods capable of targeting arbitrary sequences non-intrusively to allow long-term, multiplexing, and high-throughput imaging of genomic loci and chromatin structures. The emerging technological advances will outline a next-generation effort toward the comprehensive delineation of chromatin at single-cell level with single-molecule resolution.

Keywords

chromatin structure and dynamics / FROS / FISH / TALE / CRISPR/Cas9 / single-guide RNA / Suntag / super-resolution imaging

Cite this article

Download citation ▾
Shipeng Shao, Lei Chang, Yingping Hou, Yujie Sun. Illuminating the structure and dynamics of chromatin by fluorescence labeling. Front. Biol., 2017, 12(4): 241-257 DOI:10.1007/s11515-017-1454-2

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Abney J RCutler BFillbach M LAxelrod DScalettar B A (1997). Chromatin dynamics in interphase nuclei and its implications for nuclear structure. J Cell Biol137(7): 1459–1468

[2]

Aizer ABrody YLer L WSonenberg NSinger R HShav-Tal Y (2008). The dynamics of mammalian P body transport, assembly, and disassembly in vivo. Mol Biol Cell19(10): 4154–4166

[3]

Backlund M PJoyner RWeis KMoerner W E (2014). Correlations of three-dimensional motion of chromosomal loci in yeast revealed by the double-helix point spread function microscope. Mol Biol Cell25(22): 3619–3629

[4]

Badique FStamov D RDavidson P MVeuillet MReiter GFreund J NFranz C MAnselme K (2013). Directing nuclear deformation on micropillared surfaces by substrate geometry and cytoskeleton organization. Biomaterials34(12): 2991–3001

[5]

Beliveau B JBoettiger A NAvendaño M SJungmann RMcCole R BJoyce E FKim-Kiselak CBantignies FFonseka C YErceg JHannan M AHoang H GColognori DLee J TShih W MYin PZhuang XWu C T (2015). Single-molecule super-resolution imaging of chromosomes and in situ haplotype visualization using Oligopaint FISH probes. Nat Commun6: 7147

[6]

Beliveau B JJoyce E FApostolopoulos NYilmaz FFonseka C YMcCole R BChang YLi J BSenaratne T NWilliams B RRouillard J MWu C T (2012). Versatile design and synthesis platform for visualizing genomes with Oligopaint FISH probes. Proc Natl Acad Sci USA109(52): 21301–21306

[7]

Belmont A S (2001). Visualizing chromosome dynamics with GFP. Trends Cell Biol11(6): 250–257

[8]

Bertrand EChartrand PSchaefer MShenoy S MSinger R HLong R M (1998). Localization of ASH1 mRNA particles in living yeast. Mol Cell2(4): 437–445

[9]

Bick M DDavidson R L (1974). Total substitution of bromodeoxyuridine for thymidine in the DNA of a bromodeoxyuridine-dependent cell line. Proc Natl Acad Sci USA71(5): 2082–2086

[10]

Bienko MCrosetto NTeytelman LKlemm SItzkovitz Svan Oudenaarden A (2013). A versatile genome-scale PCR-based pipeline for high-definition DNA FISH. Nat Methods10(2): 122–124

[11]

Boch JScholze HSchornack SLandgraf AHahn SKay SLahaye TNickstadt ABonas U (2009). Breaking the code of DNA binding specificity of TAL-type III effectors. Science326(5959): 1509–1512

[12]

Boettiger A NBintu BMoffitt J RWang SBeliveau B JFudenberg GImakaev MMirny L AWu C TZhuang X (2016). Super-resolution imaging reveals distinct chromatin folding for different epigenetic states. Nature529(7586): 418–422

[13]

Bohn MDiesinger PKaufmann RWeiland YMüller PGunkel Mvon Ketteler ALemmer PHausmann MHeermann D WCremer C (2010). Localization microscopy reveals expression-dependent parameters of chromatin nanostructure. Biophys J99(5): 1358–1367

[14]

Bolzer AKreth GSolovei IKoehler DSaracoglu KFauth CMüller SEils RCremer CSpeicher M RCremer T (2005). Three-dimensional maps of all chromosomes in human male fibroblast nuclei and prometaphase rosettes. PLoS Biol3(5): e157

[15]

Chacón M RDelivani PTolić I M (2016). Meiotic Nuclear Oscillations Are Necessary to Avoid Excessive Chromosome Associations. Cell Reports17(6): 1632–1645 160;

[16]

Chakalova LFraser P (2008). Brushed aside and silenced. Dev Cell14(4): 461–462

[17]

Chen BGilbert L ACimini B ASchnitzbauer JZhang WLi G WPark JBlackburn E HWeissman J SQi L SHuang B (2013). Dynamic imaging of genomic loci in living human cells by an optimized CRISPR/Cas system. Cell155(7): 1479–1491

[18]

Chen BHu JAlmeida RLiu HBalakrishnan SCovill-Cooke CLim W AHuang B (2016). Expanding the CRISPR imaging toolset with Staphylococcus aureus Cas9 for simultaneous imaging of multiple genomic loci. Nucleic Acids Res44(8): e75

[19]

Chen B CLegant W RWang KShao LMilkie D EDavidson M WJanetopoulos CWu X SHammer J A 3rd, Liu ZEnglish B PMimori-Kiyosue YRomero D PRitter A TLippincott-Schwartz JFritz-Laylin LMullins R DMitchell D MBembenek J NReymann A CBöhme RGrill S WWang J TSeydoux GTulu U SKiehart D PBetzig E (2014). Lattice light-sheet microscopy: imaging molecules to embryos at high spatiotemporal resolution. Science346(6208): 1257998

[20]

Cheng A WJillette NLee PPlaskon DFujiwara YWang WTaghbalout AWang H (2016). Casilio: a versatile CRISPR-Cas9-Pumilio hybrid for gene regulation and genomic labeling. Cell Res26(2): 254–257

[21]

Chuang C HCarpenter A EFuchsova BJohnson Tde Lanerolle PBelmont A S (2006). Long-range directional movement of an interphase chromosome site. Curr Biol16(8): 825–831

[22]

Cremer MGrasser FLanctôt CMüller SNeusser MZinner RSolovei ICremer T (2008). Multicolor 3D fluorescence in situ hybridization for imaging interphase chromosomes. Methods Mol Biol463: 205–239

[23]

Cremer TCremer C (2001). Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells. Nat Rev Genet2(4): 292–301

[24]

Cremer TKreth GKoester HFink R HHeintzmann RCremer MSolovei IZink DCremer C (2000). Chromosome territories, interchromatin domain compartment, and nuclear matrix: an integrated view of the functional nuclear architecture. Crit Rev Eukaryot Gene Expr10(2): 179–212

[25]

Daigle NEllenberg J (2007). LambdaN-GFP: an RNA reporter system for live-cell imaging. Nat Methods4(8): 633–636

[26]

Dekker J (2017). The 4D Nucleome Project. bioRxiv

[27]

Dekker JMirny L (2016). The 3D Genome as Moderator of Chromosomal Communication. Cell164(6): 1110–1121

[28]

Deng WLee JWang HMiller JReik AGregory P DDean ABlobel G A (2012). Controlling long-range genomic interactions at a native locus by targeted tethering of a looping factor. Cell149(6): 1233–1244

[29]

Deng WShi XTjian RLionnet TSinger R H (2015). CASFISH: CRISPR/Cas9-mediated in situ labeling of genomic loci in fixed cells. Proc Natl Acad Sci USA112(38): 11870–11875

[30]

Dixon J RSelvaraj SYue FKim ALi YShen YHu MLiu J SRen B (2012). Topological domains in mammalian genomes identified by analysis of chromatin interactions. Nature485(7398): 376–380

[31]

Esvelt K MMali PBraff J LMoosburner MYaung S JChurch G M (2013). Orthogonal Cas9 proteins for RNA-guided gene regulation and editing. Nat Methods10(11): 1116–1121

[32]

Fabre P J (2016). Visualizing the HoxD Gene Cluster at the Nanoscale Level. Cold Spring Harb Symp Quant Biol

[33]

Fanucchi SShibayama YBurd SWeinberg M SMhlanga M M (2013). Chromosomal contact permits transcription between coregulated genes. Cell155(3): 606–620

[34]

Finlan L ESproul DThomson IBoyle SKerr EPerry PYlstra BChubb J RBickmore W A (2008). Recruitment to the nuclear periphery can alter expression of genes in human cells. PLoS Genet4(3): e1000039

[35]

Fujita TFujii H (2013). Efficient isolation of specific genomic regions and identification of associated proteins by engineered DNA-binding molecule-mediated chromatin immunoprecipitation (enChIP) using CRISPR. Biochem Biophys Res Commun439(1): 132–136

[36]

Gall J GPardue M L (1969). Formation and detection of RNA-DNA hybrid molecules in cytological preparations. Proc Natl Acad Sci USA63(2): 378–383

[37]

Gebhardt J CSuter D MRoy RZhao Z WChapman A RBasu SManiatis TXie X S (2013). Single-molecule imaging of transcription factor binding to DNA in live mammalian cells. Nat Methods10(5): 421–426

[38]

Gilbert WMüller-Hill B (1966). Isolation of the lac repressor. Proc Natl Acad Sci USA56(6): 1891–1898

[39]

Gratzner H G (1982). Monoclonal antibody to 5-bromo- and 5-iododeoxyuridine: A new reagent for detection of DNA replication. Science218(4571): 474–475

[40]

Grimm J BEnglish B PChen JSlaughter J PZhang ZRevyakin APatel RMacklin J JNormanno DSinger R HLionnet TLavis L D (2015). A general method to improve fluorophores for live-cell and single-molecule microscopy. Nat Methods12(3): 244–250, 3, 250

[41]

Guan JLiu HShi XFeng SHuang B (2017). Tracking multiple genomic elements using correlative CRISPR imaging and sequential DNA FISH. Biophys J112(6): 1077–1084

[42]

Guo YXu QCanzio DShou JLi JGorkin D UJung IWu HZhai YTang YLu YWu YJia ZLi WZhang M QRen BKrainer A RManiatis TWu Q (2015). CRISPR Inversion of CTCF Sites Alters Genome Topology and Enhancer/Promoter Function. Cell162(4): 900–910

[43]

Held MSchmitz M HFischer BWalter TNeumann BOlma M HPeter MEllenberg JGerlich D W (2010). CellCognition: time-resolved phenotype annotation in high-throughput live cell imaging. Nat Methods7(9): 747–754

[44]

Hillen WKlock GKaffenberger IWray L VReznikoff W S (1982). Purification of the TET repressor and TET operator from the transposon Tn10 and characterization of their interaction. J Biol Chem257(11): 6605–6613

[45]

Horvath PBarrangou R (2010). CRISPR/Cas, the immune system of bacteria and archaea. Science327(5962): 167–170

[46]

Hsu P DLander E SZhang F (2014). Development and applications of CRISPR-Cas9 for genome engineering. Cell157(6): 1262–1278

[47]

Hu HZhang HWang SDing MAn HHou YYang XWei WSun YTang C (2017). Live visualization of genomic loci with BiFC-TALE. Sci Rep7: 40192

[48]

Hübner M RSpector D L (2010). Chromatin dynamics. Annu Rev Biophys39(1): 471–489

[49]

Kamiyama DSekine SBarsi-Rhyne BHu JChen BGilbert L AIshikawa HLeonetti M DMarshall W FWeissman J SHuang B (2016). Versatile protein tagging in cells with split fluorescent protein. Nat Commun7: 11046

[50]

Kanda TSullivan K FWahl G M (1998). Histone-GFP fusion protein enables sensitive analysis of chromosome dynamics in living mammalian cells. Curr Biol8(7): 377–385

[51]

Kapuscinski J (1995). DAPI: a DNA-specific fluorescent probe. Biotech Histochem70(5): 220–233

[52]

Kepten EWeron ABronstein IBurnecki KGarini Y (2015). Uniform Contraction-Expansion Description of Relative Centromere and Telomere Motion. Biophys J109(7): 1454–1462

[53]

Kind JPagie LOrtabozkoyun HBoyle Sde Vries S SJanssen HAmendola MNolen L DBickmore W Avan Steensel B (2013). Single-cell dynamics of genome-nuclear lamina interactions. Cell153(1): 178–192

[54]

Kumaran R ISpector D L (2008). A genetic locus targeted to the nuclear periphery in living cells maintains its transcriptional competence. J Cell Biol180(1): 51–65

[55]

Kumaran R IThakar RSpector D L (2008). Chromatin dynamics and gene positioning. Cell132(6): 929–934

[56]

Langer-Safer P RLevine MWard D C (1982). Immunological method for mapping genes on Drosophila polytene chromosomes. Proc Natl Acad Sci USA79(14): 4381–4385

[57]

Larson D RZenklusen DWu BChao J ASinger R H (2011). Real-time observation of transcription initiation and elongation on an endogenous yeast gene. Science332(6028): 475–478

[58]

Levi VRuan QPlutz MBelmont A SGratton E (2005). Chromatin dynamics in interphase cells revealed by tracking in a two-photon excitation microscope. Biophys J89(6): 4275–4285

[59]

Levine M (2014). The contraction of time and space in remote chromosomal interactions. Cell158(2): 243–244

[60]

Levsky J MSinger R H (2003). Fluorescence in situ hybridization: past, present and future. J Cell Sci116(Pt 14): 2833–2838

[61]

Li DShao LChen B CZhang XZhang MMoses BMilkie D EBeach J RHammer J A 3rd, Pasham MKirchhausen TBaird M ADavidson M WXu PBetzig E (2015). ADVANCED IMAGING. Extended-resolution structured illumination imaging of endocytic and cytoskeletal dynamics. Science349(6251): aab3500

[62]

Li JZhang B BRen Y GGu S YXiang Y HDu J L (2015). Intron targeting-mediated and endogenous gene integrity-maintaining knockin in zebrafish using the CRISPR/Cas9 system. Cell Res25(5): 634–637

[63]

Lindhout B IFransz PTessadori FMeckel THooykaas P Jvan der Zaal B J (2007). Live cell imaging of repetitive DNA sequences via GFP-tagged polydactyl zinc finger proteins. Nucleic Acids Res35(16): e107

[64]

Lottersberger FKarssemeijer R ADimitrova Nde Lange T (2015). 53BP1 and the LINC complex promote microtubule-dependent DSB mobility and DNA Repair. Cell163(4): 880–893

[65]

Lucas J SZhang YDudko O KMurre C (2014). 3D trajectories adopted by coding and regulatory DNA elements: first-passage times for genomic interactions. Cell158(2): 339–352

[66]

Ma HNaseri AReyes-Gutierrez PWolfe S AZhang SPederson T (2015). Multicolor CRISPR labeling of chromosomal loci in human cells. Proc Natl Acad Sci USA112(10): 3002–3007

[67]

Ma HReyes-Gutierrez PPederson T (2013). Visualization of repetitive DNA sequences in human chromosomes with transcription activator-like effectors. Proc Natl Acad Sci USA110(52): 21048–21053

[68]

Ma HTu L CNaseri AHuisman MZhang SGrunwald DPederson T (2016). Multiplexed labeling of genomic loci with dCas9 and engineered sgRNAs using CRISPRainbow. Nat Biotechnol34(5): 528–530

[69]

Mali PYang LEsvelt K MAach JGuell MDiCarlo J ENorville J EChurch G M (2013). RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science339(6121): 823–826

[70]

Marshall W FStraight AMarko J FSwedlow JDernburg ABelmont AMurray A WAgard D ASedat J W (1997). Interphase chromosomes undergo constrained diffusional motion in living cells. Curr Biol7(12): 930–939

[71]

Masui OBonnet ILe Baccon PBrito IPollex TMurphy NHupé PBarillot EBelmont A SHeard E (2011). Live-cell chromosome dynamics and outcome of X chromosome pairing events during ES cell differentiation. Cell145(3): 447–458

[72]

Meaburn K JMisteli T (2007). Cell biology: chromosome territories. Nature445(7126): 379–781

[73]

Meldi LBrickner J H (2011). Compartmentalization of the nucleus. Trends Cell Biol21(12): 701–708

[74]

Miyanari Y (2014). TAL effector-mediated genome visualization (TGV). Methods69(2): 198–204

[75]

Miyanari YZiegler-Birling CTorres-Padilla M E (2013). Live visualization of chromatin dynamics with fluorescent TALEs. Nat Struct Mol Biol20(11): 1321–1324

[76]

Nelles D AFang M YO’Connell M RXu J LMarkmiller S JDoudna J AYeo G W (2016). Programmable RNA tracking in live cells with CRISPR/Cas9. Cell165(2): 488–496

[77]

Noordermeer DLeleu MSplinter ERougemont JDe Laat WDuboule D (2011). The dynamic architecture of Hox gene clusters. Science334(6053): 222–225

[78]

Nora E PLajoie B RSchulz E GGiorgetti LOkamoto IServant NPiolot Tvan Berkum N LMeisig JSedat JGribnau JBarillot EBlüthgen NDekker JHeard E (2012). Spatial partitioning of the regulatory landscape of the X-inactivation centre. Nature485(7398): 381–385

[79]

O’Connell M ROakes B LSternberg S HEast-Seletsky AKaplan MDoudna J A (2014). Programmable RNA recognition and cleavage by CRISPR/Cas9. Nature516(7530): 263–266

[80]

Ochiai HSugawara TYamamoto T (2015). Simultaneous live imaging of the transcription and nuclear position of specific genes. Nucleic Acids Res43(19): e127

[81]

Pederson T (2014). Repeated TALEs: visualizing DNA sequence localization and chromosome dynamics in live cells. Nucleus5(1): 28–31

[82]

Pope B DRyba TDileep VYue FWu WDenas OVera D LWang YHansen R SCanfield T KThurman R ECheng YGülsoy GDennis J HSnyder M PStamatoyannopoulos J ATaylor JHardison R CKahveci TRen BGilbert D M (2014). Topologically associating domains are stable units of replication-timing regulation. Nature515(7527): 402–405

[83]

Qin PParlak MKuscu CBandaria JMir MSzlachta KSingh RDarzacq XYildiz AAdli M (2017). Live cell imaging of low- and non-repetitive chromosome loci using CRISPR-Cas9. Nat Commun8: 14725

[84]

Ran F ACong LYan W XScott D AGootenberg J SKriz A JZetsche BShalem OWu XMakarova K SKoonin E VSharp P AZhang F (2015). In vivo genome editing using Staphylococcus aureus Cas9. Nature520(7546): 186–191

[85]

Reddy K LZullo J MBertolino ESingh H (2008). Transcriptional repression mediated by repositioning of genes to the nuclear lamina. Nature452(7184): 243–247

[86]

Ren RDeng LXue YSuzuki KZhang WYu YWu JSun LGong XLuan HYang FJu ZRen XWang STang HGeng LZhang WLi JQiao JXu TQu JLiu G H (2017). Visualization of aging-associated chromatin alterations with an engineered TALE system. Cell Res27(4): 483–504

[87]

Ricci M AManzo CGarcía-Parajo M FLakadamyali MCosma M P (2015). Chromatin fibers are formed by heterogeneous groups of nucleosomes in vivo. Cell160(6): 1145–1158

[88]

Ried TSchröck ENing YWienberg J (1998). Chromosome painting: a useful art. Hum Mol Genet7(10): 1619–1626

[89]

Robinett C CStraight ALi GWillhelm CSudlow GMurray ABelmont A S (1996). In vivo localization of DNA sequences and visualization of large-scale chromatin organization using lac operator/repressor recognition. J Cell Biol135(6 Pt 2): 1685–1700

[90]

Roukos VVoss T CSchmidt C KLee SWangsa DMisteli T (2013). Spatial dynamics of chromosome translocations in living cells. Science341(6146): 660–664

[91]

Saad HGallardo FDalvai MTanguy-le-Gac NLane DBystricky K (2014). DNA dynamics during early double-strand break processing revealed by non-intrusive imaging of living cells. PLoS Genet10(3): e1004187

[92]

Salic AMitchison T J (2008). A chemical method for fast and sensitive detection of DNA synthesis in vivo. Proc Natl Acad Sci USA105(7): 2415–2420

[93]

Schermelleh LCarlton P MHaase SShao LWinoto LKner PBurke BCardoso M CAgard D AGustafsson M GLeonhardt HSedat J W (2008). Subdiffraction multicolor imaging of the nuclear periphery with 3D structured illumination microscopy. Science320(5881): 1332–1336

[94]

Segal D JDreier BBeerli R RBarbas C F 3rd (1999). Toward controlling gene expression at will: selection and design of zinc finger domains recognizing each of the 5′-GNN-3′ DNA target sequences. Proc Natl Acad Sci USA96(6): 2758–2763

[95]

Shachar SVoss T CPegoraro GSciascia NMisteli T (2015). Identification of Gene Positioning Factors Using High-Throughput Imaging Mapping. Cell162(4): 911–923

[96]

Shalem OSanjana N EZhang F (2015). High-throughput functional genomics using CRISPR-Cas9. Nat Rev Genet16(5): 299–311

[97]

Shao S (2017). Multiplexed sgRNA Expression Allows Versatile Single Non-repetitive DNA Labeling and Endogenous Gene Regulation. bioRxiv

[98]

Shao SZhang WHu HXue BQin JSun CSun YWei WSun Y (2016). Long-term dual-color tracking of genomic loci by modified sgRNAs of the CRISPR/Cas9 system. Nucleic Acids Res44(9):  e86

[99]

Shechner D MHacisuleyman EYounger S TRinn J L (2015). Multiplexable, locus-specific targeting of long RNAs with CRISPR-Display. Nat Methods12(7): 664–670

[100]

Simonis MKlous PSplinter EMoshkin YWillemsen Rde Wit Evan Steensel Bde Laat W (2006). Nuclear organization of active and inactive chromatin domains uncovered by chromosome conformation capture-on-chip (4C). Nat Genet38(11): 1348–1354

[101]

Smeets DMarkaki YSchmid V JKraus FTattermusch ACerase ASterr MFiedler SDemmerle JPopken JLeonhardt HBrockdorff NCremer TSchermelleh LCremer M (2014). Three-dimensional super-resolution microscopy of the inactive X chromosome territory reveals a collapse of its active nuclear compartment harboring distinct Xist RNA foci. Epigenetics Chromatin7(1): 8

[102]

Solovei ICremer M (2010). 3D-FISH on cultured cells combined with immunostaining. Methods Mol Biol659: 117–126

[103]

Soutoglou EDorn J FSengupta KJasin MNussenzweig ARied TDanuser GMisteli T (2007). Positional stability of single double-strand breaks in mammalian cells. Nat Cell Biol9(6): 675–682

[104]

Strack R LDisney M DJaffrey S R (2013). A superfolding Spinach2 reveals the dynamic nature of trinucleotide repeat-containing RNA. Nat Methods10(12): 1219–1224

[105]

Tagarro IFernández-Peralta A MGonzález-Aguilera J J (1994). Chromosomal localization of human satellites 2 and 3 by a FISH method using oligonucleotides as probes. Hum Genet93(4): 383–388

[106]

Takei YShah SHarvey SQi L SCai L  (2017). Multiplexed dynamic imaging of genomic loci in single cells by combined CRISPR imaging and DNA sequential FISH. Biophy J, 112(9): 1773–1776

[107]

Tanenbaum M EGilbert L AQi L SWeissman J SVale R D (2014). A protein-tagging system for signal amplification in gene expression and fluorescence imaging. Cell159(3): 635–646

[108]

Tang ZLuo O JLi XZheng MZhu J JSzalaj PTrzaskoma PMagalska AWlodarczyk JRuszczycki BMichalski PPiecuch EWang PWang DTian S ZPenrad-Mobayed MSachs L MRuan XWei C LLiu E TWilczynski G MPlewczynski DLi GRuan Y (2015). CTCF-Mediated Human 3D Genome Architecture Reveals Chromatin Topology for Transcription. Cell163(7): 1611–1627

[109]

Thanisch KSchneider KMorbitzer RSolovei ILahaye TBultmann SLeonhardt H (2014). Targeting and tracing of specific DNA sequences with dTALEs in living cells. Nucleic Acids Res42(6): e38

[110]

Therizols PIllingworth R SCourilleau CBoyle SWood A JBickmore W A (2014). Chromatin decondensation is sufficient to alter nuclear organization in embryonic stem cells. Science346(6214): 1238–1242

[111]

Tsukamoto THashiguchi NJanicki S MTumbar TBelmont A SSpector D L (2000). Visualization of gene activity in living cells. Nat Cell Biol2(12): 871–878

[112]

Verdaasdonk J SVasquez P ABarry R MBarry TGoodwin SForest M GBloom K (2013). Centromere tethering confines chromosome domains. Mol Cell52(6): 819–831

[113]

Viollier P HThanbichler MMcGrath P TWest LMeewan MMcAdams H HShapiro L (2004). Rapid and sequential movement of individual chromosomal loci to specific subcellular locations during bacterial DNA replication. Proc Natl Acad Sci USA101(25): 9257–9262

[114]

Vogel M JPeric-Hupkes Dvan Steensel B (2007). Detection of in vivo protein-DNA interactions using DamID in mammalian cells. Nat Protoc2(6): 1467–1478

[115]

Wäldchen SLehmann JKlein Tvan de Linde SSauer M (2015). Light-induced cell damage in live-cell super-resolution microscopy. Sci Rep5: 15348

[116]

Waldman F MChew KLjung B MGoodson WHom JDuarte L ASmith H SMayall B (1991). A comparison between bromodeoxyuridine and 3H thymidine labeling in human breast tumors. Mod Pathol4(6): 718–722

[117]

Wan HFeng CTeng FYang SHu BNiu YXiang A PFang WJi WLi WZhao XZhou Q (2015). One-step generation of p53 gene biallelic mutant Cynomolgus monkey via the CRISPR/Cas system. Cell Res25(2): 258–261

[118]

Wang SSu J HBeliveau B JBintu BMoffitt J RWu C TZhuang X (2016). Spatial organization of chromatin domains and compartments in single chromosomes. Science353(6299): 598–602

[119]

Wang WLi G WChen CXie X SZhuang X (2011). Chromosome organization by a nucleoid-associated protein in live bacteria. Science333(6048): 1445–1449

[120]

Wijchers P JKrijger P HGeeven GZhu YDenker AVerstegen M JValdes-Quezada CVermeulen CJanssen MTeunissen HAnink-Groenen L CVerschure P Jde Laat W (2016). Cause and Consequence of Tethering a SubTAD to Different Nuclear Compartments. Mol Cell61(3): 461–473

[121]

Wu YZhou HFan XZhang YZhang MWang YXie ZBai MYin QLiang DTang WLiao JZhou CLiu WZhu PGuo HPan HWu CShi HWu LTang FLi J (2015). Correction of a genetic disease by CRISPR-Cas9-mediated gene editing in mouse spermatogonial stem cells. Cell Res25(1): 67–79

[122]

Zalatan J GLee M EAlmeida RGilbert L AWhitehead E HLa Russa MTsai J CWeissman J SDueber J EQi L SLim W A (2015). Engineering complex synthetic transcriptional programs with CRISPR RNA scaffolds. Cell160(1-2): 339–350

[123]

Zhou YWang PTian FGao GHuang LWei WXie X S (2017). Painting a specific chromosome with CRISPR/Cas9 for live-cell imaging. Cell Res27(2): 298–301

[124]

Zuleger NBoyle SKelly D Ade las Heras J ILazou VKorfali NBatrakou D GRandles K NMorris G EHarrison D JBickmore W ASchirmer E C (2013). Specific nuclear envelope transmembrane proteins can promote the location of chromosomes to and from the nuclear periphery. Genome Biol14(2): R14

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (4097KB)

1078

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/