Intestinal organoid as an in vitromodel in studying host-microbial interactions

Jun Sun

Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (2) : 94 -102.

PDF (1859KB)
Front. Biol. ›› 2017, Vol. 12 ›› Issue (2) : 94 -102. DOI: 10.1007/s11515-017-1444-4
REVIEW
REVIEW

Intestinal organoid as an in vitromodel in studying host-microbial interactions

Author information +
History +
PDF (1859KB)

Abstract

BACKGROUND: Organoid is an in vitro three-dimensional organ-bud that shows realistic microanatomy and physiological relevance. The progress in generating organoids that faithfully recapitulate humanin vivo tissue composition has extended organoid applications from being just a basic research tool to a translational platform with a wide range of uses. Study of host-microbial interactions relies on model systems to mimic thein vivo infection. Researchers have developed various experimental models in vitro and in vivo to examine the dynamic host-microbial interactions. For some infectious pathogens, model systems are lacking whereas some of the used systems are far from optimal.

OBJECTIVE: In the present work, we will review the brief history and recent findings using organoids for studying host-microbial interactions.

METHODS: A systematic literature search was performed using the PubMed search engine. We also shared our data and research contribution to the field.

RESULTS: we summarize the brief history of 3D organoids. We discuss the feasibility of using organoids in studying host-microbial interactions, focusing on the development of intestinal organoids and gastric organoids. We highlight the advantage and challenges of the new experimental models. Further, we discuss the future direction in using organoids in studying host-microbial interactions and its potential application in biomedical studies.

CONCLUSION: In combination with genetic, transcriptome and proteomic profiling, both murine- and human-derived organoids have revealed crucial aspects of development, homeostasis and diseases. Specifically, human organoids from susceptible host will be used to test their responses to pathogens, probiotics, and drugs. Organoid system is an exciting tool for studying infectious disease, microbiome, and therapy.

Keywords

bacteria / colonoids / enteroids / gastric organoids / host-microbial interactions / H. pylori / inflammation / intestinal organoids / microbiome / organoids / tight junctions / Salmonella / stem-cell differentiation / ZO-1

Cite this article

Download citation ▾
Jun Sun. Intestinal organoid as an in vitromodel in studying host-microbial interactions. Front. Biol., 2017, 12(2): 94-102 DOI:10.1007/s11515-017-1444-4

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

References

[1]

Aoki-Yoshida ASaito  SFukiya S Aoki RTakayama  YSuzuki C Sonoyama K  (2016). Lactobacillus rhamnosus GG increases Toll-like receptor 3 gene expression in murine small intestine ex vivo and in vivo. Benef Microbes7(3): 421–429

[2]

Arnold J WRoach  JAzcarate-Peril M A  (2016). Emerging technologies for gut microbiome research. Trends Microbiol24(11): 887–901

[3]

Barrandon YGreen  H (1987). Three clonal types of keratinocyte with different capacities for multiplication. Proc Natl Acad Sci USA84(8): 2302–2306

[4]

Bartfeld SBayram  Tvan de Wetering  MHuch M Begthel H Kujala P Vries R Peters P J Clevers H  (2015). In vitro expansion of human gastric epithelial stem cells and their responses to bacterial infection. Gastroenterology148(1): 126–136.e6

[5]

Bartfeld SClevers  H (2015). Organoids as model for infectious diseases: Culture of human and murine stomach organoids and microinjection of Helicobacter pyloriJ Vis Exp43(105):816–818

[6]

Bertaux-Skeirik NFeng  RSchumacher M A Li JMahe  M MEngevik  A CJavier  J EPeek  R M Jr, Ottemann  KOrian-Rousseau V Boivin G P Helmrath M A Zavros Y  (2015). CD44 plays a functional role in Helicobacter pylori-induced epithelial cell proliferation. PLoS Pathog11(2): e1004663

[7]

Crosnier CStamataki  DLewis J  (2006). Organizing cell renewal in the intestine: stem cells, signals and combinatorial control. Nat Rev Genet7(5): 349–359

[8]

D’Aiuto LDi Maio  RHeath B Raimondi G Milosevic J Watson A M Bamne M Parks W T Yang LLin  BMiki T Mich-Basso J D Arav-Boger R Sibille E Sabunciyan S Yolken R Nimgaonkar V  (2012). Human induced pluripotent stem cell-derived models to investigate human cytomegalovirus infection in neural cells. PLoS One7(11): e49700

[9]

Dedhia P HBertaux-Skeirik  NZavros Y Spence J R  (2016). Organoid models of human gastrointestinal development and disease. Gastroenterology150(5): 1098–1112nbsp;PMID:26774180

[10]

Dingli DNowak  M A (2006). Cancer biology: infectious tumour cells. Nature443(7107): 35–36

[11]

Engevik M AAihara  EMontrose M H Shull G E Hassett D J Worrell R T  (2013). Loss of NHE3 alters gut microbiota composition and influences Bacteroides thetaiotaomicron growth. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol305(10): G697–G711

[12]

Ettayebi KCrawford  S EMurakami  KBroughman J R Karandikar U Tenge V R Neill F H Blutt S E Zeng X L Qu LKou  BOpekun A R Burrin D Graham D Y Ramani S Atmar R L Estes M K  (2016). Replication of human noroviruses in stem cell-derived human enteroids. Science353(6306): 1387–1393

[13]

Fang S BSchüller S, Phillips A D (2013). Human intestinal in vitro organ culture as a model for investigation of Bacteriae-host interactions. J Exp Clin Med5(2): 43–50

[14]

Fatehullah ATan  S HBarker  N (2016). Organoids as an in vitro model of human development and disease. Nat Cell Biol18(3): 246–254

[15]

Finkbeiner S R Zeng X L Utama B Atmar R L Shroyer N F Estes M K  (2012). Stem cell-derived human intestinal organoids as an infection model for rotaviruses. MBio3(4): e00159–e12

[16]

Forbester J L Goulding D  (2014). Intestinal organoids are a novel system to study Salmonella enterica Serovar Typhimurium interaction with the intestinal epithelial barrier. Immunology143: 111–112

[17]

Forbester J L Goulding D Vallier L Hannan N Hale CPickard  DMukhopadhyay S Dougan G  (2015). Interaction of Salmonella enterica Serovar Typhimurium with intestinal organoids derived from human induced pluripotent stem cells. Infect Immun83(7): 2926–2934

[18]

Foulke-Abel JIn  JKovbasnjuk O Zachos N C Ettayebi K Blutt S E Hyser J M Zeng X L Crawford S E Broughman J R Estes M K Donowitz M  (2014). Human enteroids as an ex-vivo model of host-pathogen interactions in the gastrointestinal tract. Exp Biol Med (Maywood)239(9): 1124–1134

[19]

Garcez P PLoiola  E CMadeiro da Costa  RHiga L M Trindade P Delvecchio R Nascimento J M Brindeiro R Tanuri A Rehen S K  (2016). Zika virus impairs growth in human neurospheres and brain organoids. Science352(6287): 816–818

[20]

Gjorevski NSachs  NManfrin A Giger S Bragina M E Ordóñez-Morán PClevers H Lutolf M P  (2016). Designer matrices for intestinal stem cell and organoid culture. Nature539(7630): 560–564

[21]

Harrison R G (1907). Observations on the living developing fiber. Proc Soc Exp Biol Med4(1): 140–143

[22]

Heuberger JKosel  FQi J Grossmann K S Rajewsky K Birchmeier W  (2014). Shp2/MAPK signaling controls goblet/paneth cell fate decisions in the intestine. Proc Natl Acad Sci USA111(9): 3472–3477

[23]

Hilleman M R (1990). History, precedent, and progress in the development of mammalian cell culture systems for preparing vaccines: safety considerations revisited. J Med Virol31(1): 5–12

[24]

Huang GYe  SZhou X Liu DYing  Q L (2015a). Molecular basis of embryonic stem cell self-renewal: from signaling pathways to pluripotency network. Cell Mol Life Sci72(9): 1741–1757

[25]

Huang J YSweeney  E GSigal  MZhang H C Remington S J Cantrell M A Kuo C J Guillemin K Amieva M R  (2015b). Chemodetection and destruction of host urea allows Helicobacter pylori to locate the epithelium. Cell Host Microbe18(2): 147–156

[26]

Huch MKoo  B K (2015). Modeling mouse and human development using organoid cultures. Development142(18): 3113–3125

[27]

In J GFoulke-Abel  JEstes M K Zachos N C Kovbasnjuk O Donowitz M  (2016). Human mini-guts: new insights into intestinal physiology and host-pathogen interactions. Nat Rev Gastroenterol Hepatol13(11): 633–642

[28]

Jung PSato  TMerlos-Suárez ABarriga F M Iglesias M Rossell D Auer HGallardo  MBlasco M A Sancho E Clevers H Batlle E  (2011). Isolation and in vitro expansion of human colonic stem cells. Nat Med17(10): 1225–1227

[29]

Klotz CAebischer  TSeeber F  (2012). Stem cell-derived cell cultures and organoids for protozoan parasite propagation and studying host-parasite interaction. Int J Med Microbiol302(4-5): 203–209

[30]

Kristin WWeitz  J (2016). Organoids as model systems for gastrointestinal diseases: tissue engineering meets. Curr Pathobiol Rep4(1): 1–9

[31]

Leslie J LHuang  SOpp J S Nagy M S Kobayashi M Young V B Spence J R  (2015). Persistence and toxin production by Clostridium difficile within human intestinal organoids result in disruption of epithelial paracellular barrier function. Infect Immun83(1): 138–145

[32]

Mahe M MAihara  ESchumacher M A Zavros Y Montrose M H Helmrath M A Sato TShroyer  N F (2013). Establishment of gastrointestinal epithelial organoids. Curr Protoc Mouse Biol3(4): 217–240

[33]

Mahe M MSundaram  NWatson C L Shroyer N F Helmrath M A  (2015). Establishment of human epithelial enteroids and colonoids from whole tissue and biopsy. J Vis Exp, (97): e52483-e52483 

[34]

McCracken K W Catá E M Crawford C M Sinagoga K L Schumacher M Rockich B E Tsai Y H Mayhew C N Spence J R Zavros Y Wells J M  (2014). Modelling human development and disease in pluripotent stem-cell-derived gastric organoids. Nature516(7531): 400–404

[35]

Miyoshi HStappenbeck  T S (2013). In vitro expansion and genetic modification of gastrointestinal stem cells in spheroid culture. Nat Protoc8(12): 2471–2482

[36]

Ng SSchwartz  R EMarch  SGalstian A Gural N Shan JPrabhu  MMota M M Bhatia S N  (2015). Human iPSC-derived hepatocyte-like cells support Plasmodium liver-stage infection in vitro. Stem Cell Rep4(3): 348–359

[37]

Ootani ALi  XSangiorgi E Ho Q T Ueno HToda  SSugihara H Fujimoto K Weissman I L Capecchi M R Kuo C J  (2009). Sustained in vitro intestinal epithelial culture within a Wnt-dependent stem cell niche. Nat Med15(6): 701–706

[38]

Penkert R RKalejta  R F (2013). Human embryonic stem cell lines model experimental human cytomegalovirus latency. MBio4(3): e00298–e13

[39]

Roelandt PObeid  SPaeshuyse J Vanhove J Van Lommel A Nahmias Y Nevens F Neyts J Verfaillie C M  (2012). Human pluripotent stem cell-derived hepatocytes support complete replication of hepatitis C virus. J Hepatol57(2): 246–251

[40]

Salama N RHartung  M LMüller  A (2013). Life in the human stomach: persistence strategies of the bacterial pathogen Helicobacter pylori. Nat Rev Microbiol11(6): 385–399

[41]

Sato TStange  D EFerrante  MVries R G Van Es J H Van den Brink S Van Houdt W J Pronk A Van Gorp J Siersema P D Clevers H  (2011a). Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett’s epithelium. Gastroenterology141(5): 1762–1772

[42]

Sato Tvan Es  J HSnippert  H JStange  D EVries  R Gvan den Born  MBarker N Shroyer N F van de Wetering M Clevers H  (2011b). Paneth cells constitute the niche for Lgr5 stem cells in intestinal crypts. Nature469(7330): 415–418

[43]

Sato TVries  R GSnippert  H Jvan de Wetering  MBarker N Stange D E van Es J H Abo AKujala  PPeters P J Clevers H  (2009). Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature459(7244): 262–265

[44]

Saxena KBlutt  S EEttayebi  KZeng X L Broughman J R Crawford S E Karandikar U C Sastri N P Conner M E Opekun A R Graham D Y Qureshi W Sherman V Foulke-Abel J In JKovbasnjuk  OZachos N C Donowitz M Estes M K  (2015). Human intestinal enteroids: a new model to study human rotavirus infection, host restriction, and pathophysiology. J Virol90(1): 43–56

[45]

Schlaermann PToelle  BBerger H Schmidt S C Glanemann M Ordemann J Bartfeld S Mollenkopf H J Meyer T F  (2016). A novel human gastric primary cell culture system for modelling Helicobacter pylori infection in vitro. Gut65(2): 202–213

[46]

Schumacher M A Feng RAihara  EEngevik A C Montrose M H Ottemann K M Zavros Y  (2015). Helicobacter pylori-induced Sonic Hedgehog expression is regulated by NFkB pathway activation: the use of a novel in vitro model to study epithelial response to infection. Helicobacter20(1): 19–28

[47]

Schwank GKoo  B KSasselli  VDekkers J F Heo IDemircan  TSasaki N Boymans S Cuppen E van der Ent C K Nieuwenhuis E E Beekman J M Clevers H  (2013). Functional repair of CFTR by CRISPR/Cas9 in intestinal stem cell organoids of cystic fibrosis patients. Cell Stem Cell13(6): 653–658

[48]

Schwartz R ETrehan  KAndrus L Sheahan T P Ploss A Duncan S A Rice C M Bhatia S N  (2012). Modeling hepatitis C virus infection using human induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci USA109(7): 2544–2548

[49]

Shlomai ASchwartz  R ERamanan  VBhatta A de Jong Y P Bhatia S N Rice C M  (2014). Modeling host interactions with hepatitis B virus using primary and induced pluripotent stem cell-derived hepatocellular systems. Proc Natl Acad Sci USA111(33): 12193–12198

[50]

Sigal MRothenberg  M ELogan  C YLee  J YHonaker  R WCooper  R LPassarelli  BCamorlinga M Bouley D M Alvarez G Nusse R Torres J Amieva M R  (2015). Helicobacter pylori activates and expands Lgr5(+) stem cells through direct colonization of the gastric glands. Gastroenterology148(7): 1392–404.e21

[51]

Spence J RMayhew  C NRankin  S AKuhar  M FVallance  J ETolle  KHoskins E E Kalinichenko V V Wells S I Zorn A M Shroyer N F Wells J M  (2011). Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro. Nature470(7332): 105–109

[52]

Unsworth B RLelkes  P I (1998). Growing tissues in microgravity. Nat Med4(8): 901–907

[53]

VanDussen K L Marinshaw J M Shaikh N Miyoshi H Moon CTarr  P ICiorba  M AStappenbeck  T S (2015). Development of an enhanced human gastrointestinal epithelial culture system to facilitate patient-based assays. Gut64(6): 911–920

[54]

Wang XYamamoto  YWilson L H Zhang T Howitt B E Farrow M A Kern FNing  GHong Y Khor C C Chevalier B Bertrand D Wu LNagarajan  NSylvester F A Hyams J S Devers T Bronson R Lacy D B Ho K Y Crum C P McKeon F Xian W (2015). Cloning and variation of ground state intestinal stem cells. Nature522(7555): 173–178

[55]

Wilson S STocchi  AHolly M K Parks W C Smith J G  (2015). A small intestinal organoid model of non-invasive enteric pathogen-epithelial cell interactions. Mucosal Immunol8(2): 352–361

[56]

Wroblewski L E Peek R M  Jr,  Wilson K T  (2010). Helicobacter pylori and gastric cancer: factors that modulate disease risk. Clin Microbiol Rev23(4): 713–739

[57]

Wu XRobotham  J MLee  EDalton S Kneteman N M Gilbert D M Tang H (2012). Productive hepatitis C virus infection of stem cell-derived hepatocytes reveals a critical transition to viral permissiveness during differentiation. PLoS Pathog8(4): e1002617

[58]

Yin YBijvelds  MDang W Xu Lvan der Eijk  A AKnipping  KTuysuz N Dekkers J F Wang Yde Jonge  JSprengers D van der Laan L J Beekman J M Ten Berge D Metselaar H J de Jonge H Koopmans M P Peppelenbosch M P Pan Q (2015). Modeling rotavirus infection and antiviral therapy using primary intestinal organoids. Antiviral Res123: 120–131

[59]

Yoshida TTakayama  KKondoh M Sakurai F Tani HSakamoto  NMatsuura Y Mizuguchi H Yagi K (2011). Use of human hepatocyte-like cells derived from induced pluripotent stem cells as a model for hepatocytes in hepatitis C virus infection. Biochem Biophys Res Commun416(1-2): 119–124

[60]

Yui SNakamura  TSato T Nemoto Y Mizutani T Zheng X Ichinose S Nagaishi T Okamoto R Tsuchiya K Clevers H Watanabe M  (2012). Functional engraftment of colon epithelium expanded in vitro from a single adult Lgr5+ stem cell. Nat Med18(4): 618–623

[61]

Zhang Y GWu  SXia Y Sun J (2014). Salmonella-infected crypt-derived intestinal organoid culture system for host-bacterial interactions. Physiol Rep2(9): e12147

RIGHTS & PERMISSIONS

Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

AI Summary AI Mindmap
PDF (1859KB)

890

Accesses

0

Citation

Detail

Sections
Recommended

AI思维导图

/