REVIEW ARTICLE

Valorisation of protein waste: An enzymatic approach to make commodity chemicalsŽ 

  • Madura B. A. Kumar 1 ,
  • Yuan Gao 2 ,
  • Wei Shen 1 ,
  • Lizhong He , 1
Expand
  • 1. Department of Chemical Engineering, Monash University, Clayton, VIC 3800, Australia
  • 2. Manufacturing Flagship, Commonwealth Scientific and Industrial Research Organization, Bayview Avenue, Clayton, VIC 3168, Australia

Received date: 10 May 2015

Accepted date: 05 Aug 2015

Published date: 30 Sep 2015

Copyright

2014 Higher Education Press and Springer-Verlag Berlin Heidelberg

Abstract

Protein-rich waste is an abundantly available resource that is currently used mainly as animal feed and fertilizers. Valorisation of protein waste to higher value products, particularly commodity chemicals such as precursors for polymers, has attracted significant research efforts. Enzyme-based approaches, being environmentally-friendly compared to their chemical counterparts, promise sustainable processes for conversion of protein waste to valuable chemicals. This review provides a general overview on valorisation of protein waste and then further summarises the use of enzymes in different stages of the valorisation process—protein extraction and hydrolysis, separation of individual amino acids and their ultimate conversion into chemicals. Case studies of enzymatic conversion are presented for different amino acids including glutamic acid, lysine, phenylalanine, tyrosine, arginine and aspartic acid. The review compares the different enzyme reactors and operation modes for amino acid conversion. The emerging opportunities and challenges in the field are discussed: engineering powerful enzymes and integrating innovative processes for industrial application at a low cost.

Cite this article

Madura B. A. Kumar , Yuan Gao , Wei Shen , Lizhong He . Valorisation of protein waste: An enzymatic approach to make commodity chemicalsŽ [J]. Frontiers of Chemical Science and Engineering, 2015 , 9(3) : 295 -307 . DOI: 10.1007/s11705-015-1532-4

Acknowledgement

L. H. acknowledges support of seed funding provided by Faculty of Engineering and Faculty of IT, Monash University.
1
Tuck C O, Pérez E, Horváth I T, Sheldon R A, Poliakoff M. Valorization of biomass: Deriving more value from waste. Science, 2012, 337(6095): 695–699

DOI

2
Lammens T M, Franssen M C R, Scott E L, Sanders J P M. Availability of protein-derived amino acids as feedstock for the production of bio-based chemicals. Biomass and Bioenergy, 2012, 44: 168–181

DOI

3
Sanders J, Scott E, Weusthuis R, Mooibroek H. Bio-refinery as the bio-inspired process to bulk chemicals. Macromolecular Bioscience, 2007, 7(2): 105–117

DOI

4
Nyachoti C M, House J D, Slominski B A, Seddon I R. Energy and nutrient digestibilities in wheat dried distillers’ grains with solubles fed to growing pigs. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2005, 85(15): 2581–2586

DOI

5
Gunkel G, Kosmol J, Sobral M, Rohn H, Montenegro S, Aureliano J. Sugar cane industry as a source of water pollution—Case study on the situation in Ipojuca river, Pernambuco, Brazil. Water, Air, and Soil Pollution, 2007, 180(1-4): 261–269

DOI

6
Regulation (EC) No 1069/2009 of the European Parliament and of the Council, <day>21</day> <month>October</month> 2009. Laying down health rules as regards animal by-products and derived products not intended for human consumption and repealing Regulation (EC) No 1774/2002 (Animal by-products Regulation)

7
Bals B D, Dale B E. Developing a model for assessing biomass processing technologies within a local biomass processing depot. Bioresource Technology, 2012, 106: 161–169

DOI

8
Simon R D, Weathers P. Determination of the structure of the novel polypeptide containing aspartic acid and arginine which is found in cyanobacteria. BBA—Protein Structure, 1976, 420(1): 165–176

9
Obst  M,  Steinbüchel  A.  Microbial  degradation  of  poly  (amino acid)s. Biomacromolecules, 2004, 5(4): 1166–1176

DOI

10
Könst P M, Turras P M C C D, Franssen M C R, Scott E L, Sanders J P M. Stabilized and immobilized Bacillus subtilis arginase for the biobased production of nitrogen-containing chemicals. Advanced Synthesis & Catalysis, 2010, 352(9): 1493–1502

DOI

11
Yasmin A, Sadiq Butt M, Sameen A, Shahid M. Physicochemical and amino acid profiling of cheese whey. Pakistan Journal of Nutrition, 2013, 12(5): 455–459

DOI

12
Sari Y W, Alting A C, Floris R, Sanders J P M, Bruins M E. Glutamic acid production from wheat by-products using enzymatic and acid hydrolysis. Biomass and Bioenergy, 2014, 67: 451–459

DOI

13
Karr-Lilienthal L K, Grieshop C M, Spears J K, Fahey G C Jr. Amino acid, carbohydrate, and fat composition of soybean meals prepared at 55 commercial U.S. soybean processing plants. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2005, 53(6): 2146–2150

DOI

14
Latshaw J D, Musharaf N, Retrum R. Processing of feather meal to maximize its nutritional value for poultry. Animal Feed Science and Technology, 1994, 47(3-4): 179–188

DOI

15
Chang S K, Ismail A, Yanagita T, Esa N M, Baharuldin M T H. Biochemical characterisation of the soluble proteins, protein isolates and hydrolysates from oil palm (Elaeis guineensis) kernel. Food Bioscience, 2014, 7: 1–10

DOI

16
Han J, Liu K. Changes in composition and amino acid profile during dry grind ethanol processing from corn and estimation of yeast contribution toward DDGS proteins. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2010, 58(6): 3430–3437

DOI

17
Meussen B J, van Zeeland A N T, Bruins M E, Sanders J P M. A fast and accurate UPLC method for analysis of proteinogenic amino acids. Food Analytical Methods, 2014, 7(5): 1047–1055

DOI

18
Scott E, Peter F, Sanders J. Biomass in the manufacture of industrial products-the use of proteins and amino acids. Applied Microbiology and Biotechnology, 2007, 75(4): 751–762

DOI

19
Hu C, Reddy N, Luo Y, Yan K, Yang Y. Thermoplastics from acetylated zein-and-oil-free corn distillers dried grains with solubles. Biomass and Bioenergy, 2011, 35(2): 884–892

DOI

20
Lammens T M, Nôtre J L, Franssen M C R, Scott E L, Sanders J P M. Synthesis of biobased succinonitrile from glutamic acid and glutamine. ChemSusChem, 2011, 4(6): 785–791

DOI

21
Ogata K, Uchiyama K, Yamada H. Microbial formation of cinnamic acid from phenylalanine. Agricultural and Biological Chemistry, 1966, 30(3): 311–312

DOI

22
Schneider J, Wendisch V F. Biotechnological production of polyamines by Bacteria: Recent achievements and future perspectives. Applied Microbiology and Biotechnology, 2011, 91(1): 17–30

DOI

23
Schneider J, Wendisch V F. Putrescine production by engineered Corynebacterium glutamicum. Applied Microbiology and Biotechnology, 2010, 88(4): 859–868

DOI

24
Arifin B, Bono A, Farm Y Y, Ling A L L, Fui S Y. Protein extraction from palm kernel meal. Journal of Applied Sciences, 2009, 9(17): 2996–3004

DOI

25
Bals B, Teachworth L, Dale B, Balan V. Extraction of proteins from switchgrass using aqueous ammonia within an integrated biorefinery. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2007, 143(2): 187–198

DOI

26
Gu Z, Glatz C E. Aqueous two-phase extraction for protein recovery from corn extracts. Journal of Chromatography. B, Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences, 2007, 845(1): 38–50

DOI

27
Fountoulakis M, Lahm H W. Hydrolysis and amino acid composition analysis of proteins. Journal of Chromatography. A, 1998, 826(2): 109–134

DOI

28
Ozols J. Amino acid analysis. Methods in Enzymology, 1990, 182: 587–601

DOI

29
Provansal M M P, Cuq J L A, Cheftel J C. Chemical and nutritional modifications of sunflower proteins due to alkaline processing formation of amino acid cross-links and isomerization of lysine residues. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1975, 23(5): 938–943

DOI

30
Sari Y W, Bruins M E, Sanders J P M. Enzyme assisted protein extraction from rapeseed, soybean, and microalgae meals. Industrial Crops and Products, 2013, 43(1): 78–83

DOI

31
Bals B, Brehmer B, Dale B, Sanders J. Protease digestion from wheat stillage within a dry grind ethanol facility. Biotechnology Progress, 2011, 27(2): 428–434

DOI

32
Brandelli A, Daroit D J, Riffel A. Biochemical features of microbial keratinases and their production and applications. Applied Microbiology and Biotechnology, 2010, 85(6): 1735–1750

DOI

33
Tavano O L. Protein hydrolysis using proteases: An important tool for food biotechnology. Journal of Molecular Catalysis. B, Enzymatic, 2013, 90: 1–11

DOI

34
O’Loughlin I B, Murray B A, Kelly P M, FitzGerald R J, Brodkorb A. Enzymatic hydrolysis of heat-induced aggregates of whey protein isolate. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2012, 60(19): 4895–4904

DOI

35
Hara Y. The separation of amino acids with an ion-exchange membrane. Bulletin of the Chemical Society of Japan, 1963, 36(11): 1373–1376

DOI

36
Sandeaux J, Fares A, Sandeaux R, Gavach C. Transport properties of electrodialysis membranes in the presence of arginine I. Equilibrium properties of a cation exchange membrane in an aqueous solution of arginine chlorhydrate and sodium chloride. Journal of Membrane Science, 1994, 89(1-2): 73–81

DOI

37
Kattan Readi O M, Gironès M, Nijmeijer K. Separation of complex mixtures of amino acids for biorefinery applications using electrodialysis. Journal of Membrane Science, 2013, 429: 338–348

DOI

38
Readi O M K, Gironès M, Wiratha W, Nijmeijer K. On the isolation of single basic amino acids with electrodialysis for the production of biobased chemicals. Industrial & Engineering Chemistry Research, 2013, 52(3): 1069–1078

DOI

39
Teng Y, Scott E L, Van Zeeland A N T, Sanders J P M. The use of L-lysine decarboxylase as a means to separate amino acids by electrodialysis. Green Chemistry, 2011, 13(3): 624–630

DOI

40
Kattan Readi O M, Rolevink E, Nijmeijer K. Mixed matrix membranes for process intensification in electrodialysis of amino acids. Journal of Chemical Technology and Biotechnology (Oxford, Oxfordshire), 2014, 89(3): 425–435

DOI

41
Yvon M, Rijnen L. Cheese flavour formation by amino acid catabolism. International Dairy Journal, 2001, 11(4–7): 185–201

DOI

42
Lammens T M, De Biase D, Franssen M C R, Scott E L, Sanders J P M. The application of glutamic acid α-decarboxylase for the valorization of glutamic acid. Green Chemistry, 2009, 11(10): 1562–1567

DOI

43
De Biase D, Tramonti A, John R A, Bossa F. Isolation, overexpression, and biochemical characterization of the two isoforms of glutamic acid decarboxylase from Escherichia coli. Protein Expression and Purification, 1996, 8(4): 430–438

DOI

44
Kang T J, Ho N A T, Pack S P. Buffer-free production of gamma-aminobutyric acid using an engineered glutamate decarboxylase from Escherichia coli. Enzyme and Microbial Technology, 2013, 53(3): 200–205

DOI

45
Thu Ho N A, Hou C Y, Kim W H, Kang T J. Expanding the active pH range of Escherichia coli glutamate decarboxylase by breaking the cooperativeness. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2013, 115(2): 154–158

DOI

46
Dinh T H, Ho N A T, Kang T J, McDonald K A, Won K. Salt-free production of γ-aminobutyric acid from glutamate using glutamate decarboxylase separated from Escherichia coli. Journal of Chemical Technology and Biotechnology (Oxford, Oxfordshire), 2014, 89(9): 1432–1436

DOI

47
Park H, Ahn J, Lee J, Lee H, Kim C, Jung J K, Lee H, Lee E G. Expression, immobilization and enzymatic properties of glutamate decarboxylase fused to a cellulose-binding domain. International Journal of Molecular Sciences, 2012, 13(1): 358–368

48
Hossain G S, Li J, Shin H D, Chen R R, Du G, Liu L, Chen J. Bioconversion of L-glutamic acid to α-ketoglutaric acid by an immobilized whole-cell biocatalyst expressing L-amino acid deaminase from Proteus mirabilis. Journal of Biotechnology, 2014, 169(1): 112–120

DOI

49
Ödman P, Wellborn W B, Bommarius A S. An enzymatic process to α-ketoglutarate from L-glutamate: The coupled system L-glutamate dehydrogenase/NADH oxidase. Tetrahedron, Asymmetry, 2004, 15(18): 2933–2937

DOI

50
Pukin A V, Boeriu C G, Scott E L, Sanders J P M, Franssen M C R. An efficient enzymatic synthesis of 5-aminovaleric acid. Journal of Molecular Catalysis. B, Enzymatic, 2010, 65(1-4): 58–62

DOI

51
Liu P, Zhang H, Lv M, Hu M, Li Z, Gao C, Xu P, Ma C. Enzymatic production of 5-aminovalerate from L-lysine using L-lysine monooxygenase and 5-aminovaleramide amidohydrolase. Scientific Reports, 2014, 4: 5657

52
Nishi K, Endo S, Mori Y, Totsuka K, Hirao Y. US Patent, 0003497, 2005-<month>01</month>-<day>06</day>

53
Ben-Bassat A, Huang L L, Lowe D J, Patnaik R, Sariaslani F S. US Patent, 8003356, 2011-<month>08</month>-<day>23</day>

54
Xue Z, McCluskey M, Cantera K, Ben-Bassat A, Sariaslani F S, Huang L. Improved production of p-hydroxycinnamic acid from tyrosine using a novel thermostable phenylalanine/tyrosine ammonia lyase enzyme. Enzyme and Microbial Technology, 2007, 42(1): 58–64

DOI

55
Nakamura N, Fujita M, Kimura K. Purification and properties of Larginase from Bacillus subtilis. Agricultural and Biological Chemistry, 1973, 37(12): 2827–2833

DOI

56
Könst P M, Franssen M C R, Scott E L, Sanders J P M. A study on the applicability of L-aspartate α-decarboxylase in the biobased production of nitrogen containing chemicals. Green Chemistry, 2009, 11(10): 1646–1652

DOI

57
Williamson J M, Brown G M. Purification and properties of L-aspartate-α-decarboxylase, an enzyme that catalyzes the formation of β-alanine in Escherichia coli. Journal of Biological Chemistry, 1979, 254(16): 8074–8082

58
Shen Y, Zhao L, Li Y, Zhang L, Shi G. Synthesis of β-alanine from L-aspartate using L-aspartate-α-decarboxylase from Corynebacterium glutamicum. Biotechnology Letters, 2014, 36(8): 1681–1686

DOI

59
Zisapel N. Drugs for insomnia. Expert Opinion on Emerging Drugs, 2012, 17(3): 299–317

DOI

60
Le Nôtre J, Scott E L, Franssen M C R, Sanders J P M. Biobased synthesis of acrylonitrile from glutamic acid. Green Chemistry, 2011, 13(4): 807–809

DOI

61
Lammens T M, Franssen M C R, Scott E L, Sanders J P M. Synthesis of biobased N-methylpyrrolidone by one-pot cyclization and methylation of γ-aminobutyric acid. Green Chemistry, 2010, 12(8): 1430–1436

DOI

62
Bhattacharya R, Vijayaraghavan R. Promising role of α-ketoglutarate in protecting against the lethal effects of cyanide. Human and Experimental Toxicology, 2002, 21(6): 297–303

DOI

63
Aussel C, Coudray-Lucas C, Lasnier E, Cynober L, Ekindjian O G. α-Ketoglutarate uptake in human fibroblasts. Cell Biology International, 1996, 20(5): 359–363

DOI

64
Barrett D G, Yousaf M N. Poly(triol α-ketoglutarate) as biodegradable, chemoselective, and mechanically tunable elastomers. Macromolecules, 2008, 41(17): 6347–6352

DOI

65
Ueno H. Enzymatic and structural aspects on glutamate decarboxylase. Journal of Molecular Catalysis. B, Enzymatic, 2000, 10(1-3): 67–79

DOI

66
Zweers J C, Barák I, Becher D, Driessen A J M, Hecker M, Kontinen V P, Saller M J, Vavrová L, van Dijl J M. Towards the development of Bacillus subtilis as a cell factory for membrane proteins and protein complexes. Microbial Cell Factories, 2008, 7(1): 10

DOI

67
Park S J, Kim E Y, Noh W, Park H M, Oh Y H, Lee S H, Song B K, Jegal J, Lee S Y. Metabolic engineering of Escherichia coli for the production of 5-aminovalerate and glutarate as C5 platform chemicals. Metabolic Engineering, 2013, 16(1): 42–47

DOI

68
Kind S, Wittmann C. Bio-based production of the platform chemical 1,5-diaminopentane. Applied Microbiology and Biotechnology, 2011, 91(5): 1287–1296

DOI

69
Kaneko T, Thi T H, Shi D J, Akashi M. Environmentally degradable, high-performance thermoplastics from phenolic phytomonomers. Nature Materials, 2006, 5(12): 966–970

DOI

70
Sariaslani F S. Development of a combined biological and chemical process for production of industrial aromatics from renewable resources. Annual Review of Microbiology, 2007, 61(1): 51–69

DOI

71
Könst P M, Franssen M C R, Scott E L, Sanders J P M. Stabilization and immobilization of Trypanosoma brucei ornithine decarboxylase for the biobased production of 1,4-diaminobutane. Green Chemistry, 2011, 13(5): 1167–1174

DOI

72
Mateo C, Palomo J M, Fernandez-Lorente G, Guisan J M, Fernandez-Lafuente R. Improvement of enzyme activity, stability and selectivity via immobilization techniques. Enzyme and Microbial Technology, 2007, 40(6): 1451–1463

DOI

73
Sheldon R A. Enzyme immobilization: The quest for optimum performance. Advanced Synthesis & Catalysis, 2007, 349(8-9): 1289–1307

DOI

74
Weetall H H, Pitcher W H Jr. Scaling up an immobilized enzyme system. Science, 1986, 232(4756): 1396–1403

DOI

75
Rios G M, Belleville M P, Paolucci D, Sanchez J. Progress in enzymatic membrane reactors—A review. Journal of Membrane Science, 2004, 242(1-2): 189–196

DOI

76
Howaldt M W, Kulbe K D, Chmiel H. Choice of reactor to minimize enzyme requirement: 1. Mathematical model for one-substrate Michaelis-Menten type kinetics in continuous reactors. Enzyme and Microbial Technology, 1986, 8(10): 627–631

DOI

77
Safdar M, Sproß J, Jänis J. Microscale immobilized enzyme reactors in proteomics: Latest developments. Journal of Chromatography. A, 2014, 1324: 1–10

DOI

78
Zhang Z, Donaldson A A, Ma X. Advancements and future directions in enzyme technology for biomass conversion. Biotechnology Advances, 2012, 30(4): 913–919

DOI

79
Teng Y, Scott E L, Sanders J P M. The selective conversion of glutamic acid in amino acid mixtures using glutamate decarboxylase—A means of separating amino acids for synthesizing biobased chemicals. Biotechnology Progress, 2014, 30(3): 681–688

DOI

80
Bornscheuer U T, Huisman G W, Kazlauskas R J, Lutz S, Moore J C, Robins K. Engineering the third wave of biocatalysis. Nature, 2012, 484(7397): 185–194

DOI

81
Agyei D, Shanbhag B K, He L. Enzyme engineering (immobilization) for food applications. In: Improving and Tailoring Enzymes for Food Quality and Functionality. Amsterdam: Elsevier, 2015, 213–235

82
Bornscheuer U T, Huisman G W, Kazlauskas R J, Lutz S, Moore J C, Robins K. Engineering the third wave of biocatalysis. Nature, 2012, 485(7397): 185–194

DOI

Outlines

/